This study was carried out to find the effects of plant growth regulators on callus formation, rooting and shooting from cotyledon explant in oriental me]on. Various combinations of 0.1 mg/L auxins (IAA, NAA) and 0.5, 1.0. 1.5, 2.0 mg/L cytokinins (BA, kinetin, zeatin) were treated to the MS basal medium, respectively. Callus was induced mort effectively as 2,437.0 mg (FW)/explant in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 2.0 mg/L BA, but that was non-embryogenic callus as colored yellow white and broke easily. Root was induced most effectively at a frequency of 98.0% in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 0-5 mg/L kinetin. Shoots formed on cut part of vein at a frequency of 98.0% in MS medium supplemented with 0.1 mg/L IAA and 2.0 mg/L BA, that were multiple shoots. in case of its concentration, BA and lower concentration of IAA and NAA (0.01 and 0.05 mg/L). respectively. shooting ratio was not increased. The result of treatment with BA 0-5 mg/L and IAA 0.1 mg/L, callus induced at a week, and shoot start to form multiple shoots about 3 weeks after inoculation. After 2 times subculture as 2 weeks intervals, divided shoots rooted and developed into intact plantlets at 10 weeks and then that grown normally on pots after acclimatization.
Acifluorfen-tolerant cell lines of S, ptycanthum were isolated by stepwise selection using suspension culture. Growth of unselected line was completely inhibited at $0.5\;\mu\textrm{M}$, while some selected lines grew at $8\;\mu\textrm{M}$ acifluorfen. After subculturing on acifluorfen-free medium for 4 passages, six of the eleven cell lines screened and maintained their tolerance to $2\;\mu\textrm{M}$ acifluorfen. The regeneration capacity of selected cell lines in Solanum ptycanthum differed depending on the tell line. The acifluorfen tolerance of the somarclones regenerated from acifluorfen-tolerant cell lines differed depending on the somarclone. When plants were heated with $16\;\mu\textrm{M}$ acifluorfen, unselected control plane had over 75% phytotoxicity Many selected cell lines had less phytotoxicity than the seed-grown control plants. Tolerance to acifluorfen was inherited to the self-pollinated progenies. The inheritance patterns differed depending on the clone. Acifluorfen tolerance was inherited as a semidominant trait. Other segregation patterns were also observed. acifluorfen tolerance was recessive and acifluorfen sensitivity was dominant.
The explants of yacon (Polymnia sonchifolia Poeppig & Endlicher) were cultured to invest th8e dedifferentiation condition, and formative callus from leaf was cultured to find the regeneration and micro-crown bud formation. Basal MS medium was more effective to form callus than 1/2 MS and B$_{5}$ medium. Calli formations from leaf, petiole and lateral bud were more effective on MS medium supplemented with 1.0, 2.0 mg/L 2,4-D and 0.2, 0.4 mg/L kinetin or BA than 1.0, 2.0 mg/L NAA and 0.2, 0.4 mg/L kinetin or BA. Formative callus from leaf was proliferated about 70% on medium supplemented with 1.0 mg/L BA. When callus was proliferated, 63% regeneration rate was shown on medium supplemented with 1.0, 2.0 mg/L BA in case of subculture for 3~4 months but was not shown on medium supplemented with 1.0, 2.0 mg/L kinetin. Micro-crown bud formed as addition of BA at 3~4 months after callus culture and then was obtained many at 5~6 months, it was most formed about 82% on medium supplemented with 5 mg/L BA. Rate of micro-crown bud formation was increased as more over 5 mg/L BA concentration, when this time, however, shoot had thick leaves and short internodes, and then withered before long, Micro-crown bud was formed about 88.0% on medium supplemented with 5% sucrose, that was more increased 28% than with 3% sucrose. The buds of crown bud between harvested in field and formed in vitro were difference only in size, but both were similar in shape according to histological view.
Calli were induced from leaf explants of B.falcatum, and selected cell clumps of the calli (900-1, 000${\mu}{\textrm}{m}$) were cultured on MS medium supplemented with 0.1, 0.5, 1.0 or 2.0 mg/L 2, 4-D for 7 days, respectively: The clumps were subsequently transferred onto MS basal medium and subcultured for four weeks. In order to investigate the effect of 2, 4-D pretreatment, the selected clumps were cultured on MS medium supplemented with 0.1 mg/L 2, 4-D for 24, 48, 72, 96, 120 or 144 hours and then transferred to liquid MS basal medium, wherein they were cultured for 4 weeks. Histological observation showed that root initial cells were developed from cells on the surface of clumps or from cells in the inner region. Clumps on the basal medium produced mot within 5 days of culture. The rate of prutruding time was inversely proportional to the concentration of 2, 4-D. The number of adventitious roots per clump preheated with 0.1 mg/L 2, 4-D was an average of 5.2, which was the highest level. On MS medium as control, the clumps formed 3.3 adventitious roots each. As tile concentration of 2, 4-D increased, the number of adventitious roots were declined accordingly: The number of adventitious roots as the period of pretreatment increased upto 120 h.
Kim, Yong-Wook;Kim, Joon-Chul;Youn, Yang;Noh, Eu-Rae;Son, Sung-Ho
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.26
no.4
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pp.251-257
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1999
Adventitious buds were produced from the cultures of mature zygotic embryos of Larix leptolepis with the highest frequency of 91.7% in SH medium containing 1.0 mg/L zeatin. The most effective cytokinin combination for inducing adventitious buds was 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L thidiazuron (40.3%). The highest mean number of adventitious buds induced in 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L 2iP or 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L kinetin combined treatments. Elongation of the adventitious buds occurred the best on half strength LM salts medium, on which the buds elongated upto 27 mm. Also, the supplement of activated charcoal in medium suppressed the elongation of the adventitious buds. The highest frequency (23.3%) of rooting from elongated shoots was obtained on the medium containing 5.0 mg/L IBA and 0.2 mg/L NAA. The highest number (3.5) of roots was induced on the medium containing 5.0 mg/L IBA alone.
The effects of MS salt strength, sucrose, and cultural conditions on bulblet formation and growth were investigated to optimize the conditions for micropropagating bulblets from in vitro bulb scales of Lilium Oriental Hybrid 'Casa Blanca'. There was no difference on bulblet formation in the range of 1/2~2 $\times$ strength of MS salt, but it was inhibited remarkably in 3 $\times$ strength of MS salt. The growth of regenerated bulblets was most stimulated on MS basal medium. Favorable bulblet formation and its growth from bulb scales were achieved when grown on the media with 1 : 2 or 1 : 3 in the ratio of NH$_4$^+ : NO$_3$^- , as well as on MS basal medium (NH$_4$^+ : NO$_3$^- = about l : 2). Therefore, MS basal medium was very suitable for bulblet formation and growth from bulb scales. Bulblet formation was inhibited but its growth was stimulated with increase sucrose concentration in the medium. The growth of regenerated bulblets was very effective on the media with 9~12% sucrose. Addition of activated charcoal (AC) to the medium inhibited bulblet formation from bulb scales, but enhanced the growth of regenerated bulblets. Especially, the medium containing 1 g/L AC was most effective on the growth of bulblets. No difference was found on bulblet formation and growth from bulb scales under light and dark conditions. In vitro micropropagation of L. Oriental Hybrid 'Casa Blanca' was supposed very reasonable to enhance the growth of the bulblets after forming of bulblets from in vitro bulb scales, and then, subculture the bulb scales from the grown bulblets on MS medium with 9% sucrose and 1 g/L AC.
Cell volume and DNA contents of the fusants were similar to those of parents. Genetic stability of the fusants was increased when they were cultured on minimal medium (MM) rather than on complete medium (CM), and the fusants were stabilized by subculturing 7 generations each 7 day on MM agar. The finally selected fusants after being cultured for 6 months on CM were stable without segregation. The fusants could also form nuclein and ascospores, and show red and pink colors by the test of TTC colorization. Assimilability and fermentability of carbon sources of the fusants were similarto those of parents. The tolerance of KCl, NaCl, sodium propionate and cycloheximide showed the traits of one strain of parents. When the fusants were cultured for 72 hr and 60 hr in the medium containing 20% glucose and sucrose, respectively, the yield of ethanol for FWKS 260 was reached to 9.6 v/v% and 9.8v/v%, respectively. The sensitive strain Kyokai 7 was found to be killed entirely after cultivation of 48 hr by the killer toxin from the fusants. The recipient S 29 and Kyokai 7 were found to have neither L nor M dsRNA plasmid. However, K 52 and fusants had both L and M dsRNA plasmid of 4.7 kb and 2.5 kb, respectively. The curants treated by heat and cycloheximide did not contain M dsRNA plasmid, but had large amounts of L dsRNA plasmid of those of killer yeasts.
Using mature seed-derived callus, optimal conditions for efficient callus growth and plant regeneration, and regeneration efficiency by callus type were investigated in zoysiagrass (Zoysia japonica steud.). Callus induction was highest when the seeds were cultured on MS medium containing 2 mg/L 2,4-D, 0.2 mg/L BAP, 4 mg/L thiamine-HCl and 100 mg/L $\alpha$-ketoglutaric acid. Callus growth was highest when callus were cultured on MS medium containing 0.5 mg/L 2,4-D, 0.05 mg/L BAP, 4 mg/L thiamine-HCl and 100 mg/L $\alpha$-ketoglutaric acid. Plant regeneration was highest when callus was transferred on MS medium containing 3% maltose and 1 mg/L BAP, or 1 mg/L thidiazuron (TDZ). The combinations and concentrations of 2,4-D and BAP were shown to be critical factors for both the frequency and the type of callus. And four morphologically distinct types of callus were induced from the 2,4-D and BAP treatment. Type I,II and III calli produced shoots upon subculture, while the watery callus, type IV produced roots without shoots. Of four types of callus, type I exhibited the maximum frequency (82%) of shoot regeneration and the minimum frequency (4%) of albinism.
This study was conducted to investigate the effect of electric fusion methods on cell fusion rate and embryo development by somatic cell nuclear transfer in Korean Native Cattle. The KNC ear cell was cultured in vitro for confluence in serum starvation condition(DMEM+0.05% FBS) for cell confluence. The zona pellucida of IVM oocytes were partially dissection using micro pipette. Ear cells were transferred into an enucleated oocyte. The reconstructed embryos were electrically fused with Zimmermann Cell Fusion Medium(ZCFM). Nuclear transfer embryos were activated with a combination of 10${\mu}{\textrm}{m}$ calcium ionophore(5 min) and 2.0mM 6-DMAP(3 hr). The activated embryos were cultured in CR1 -aa medium contains 0.3% BSA or 10% FBS at 37$^{\circ}C$, 90% $N_2$, and 5% $CO_2$in incubator for 6 days. The fusion rates were 51.6%(chamber) and 68.9%(needle), respectively and there were significantly difference between the fusion method(P<0.05). But, lysis rates were not significantly different(10.7%, 11.5%), respectively. The cleavage rates were significantly different between the chamber method(73.2%) and needle method(80.3%), respectively(P<0.05). The rates of early embryos(2∼4cells) and blastocysts of chamber and needle methods were 54.1%, 61.1% and 18.4%, 26.3% respectively, and needle method was significantly higher than chamber method(P<0.05). But, morulae formation rate were not significantly differences between the chamber(6.7%) and needle(6.2) method(P <0.05). These result suggest that electric fusion of needle method was to be profitable for nuclear transfer embryo fusion rate, blastocyst formation rate and reduce of oocyte lysis.
Park, Kang-Gyun;Yu, Young-Bin;Yook, Keundol;Kim, Sang-Ha;Kim, Sunghyun;Kim, Young Kwon
Korean Journal of Clinical Laboratory Science
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v.49
no.3
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pp.279-284
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2017
The results of rapid antimicrobial susceptibility test (AST) in blood cultures were obtained by inoculating the bacteria directly into the VITEK MS and the VITEK 2 systems without subculturing in the blood culture positive medium. The obtained results were compared with the results using a standard method to evaluate their reliability and accuracy. The direct AST results in blood culture positive specimens were 97.9% (1,936/1,978), consistent with the standard AST results. Gram-positive bacteria showed a concordance rate of 97.2% (1,051/1,081), a very major error rate of 0.5% (5/1,081), a major error rate of 0.1% (1/1,081), and a minor error rate of 2.2% (24/1,081). Staphylococcus epidermidis was the main cause of discordance, and gentamicin (N=9) and fusidic acid (N=8) showed high errors. The overall concordance rate and minor error among the Gram-negative bacteria were 98.6% (885/897) and 1.4% (12/897), respectively. Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa were the major causative bacteria of Gram-negative bacteria. Among them, amoxicillin/clavulanic acid (N=3) showed high error. Direct AST met the CLSI criteria and shortened the reporting time by 24 hours; however, we found that there was a need to perform an addition test via disk diffusion for antimicrobials with very large errors. These results suggest that the method of direct AST in blood culture positive medium may be very useful in efficiently treating patients.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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