The 2,4-D + BA combination in MS medium showed high regenerating ability and induced compact callus from leaf and petiole segments of three strawberry cultivars, 'Bokyo', 'Suhong', whereas the NAA + BA combination resulted in friable callus. Band of RAPD products obtained with primer 212 from the callus was different from the band of mother plant when callus induced from leaf segment of 'Suhong' cultivar was maintained in MS medium containing NAA or BA for 8 months. The RAPD bands obtained from mother plants of 'Bokyo' and 'Yeobong' were different from that of callus maintained in the presence of MS liquid medium containing 2,4-D(0.2 mg/$\ell$) subcultured every two weeks for 6 months(12 subcultures).
Lee Soon-Gu;Lee Tae-Ho;Choi Yong-Chull;Cho Yong-Sup
Korean journal of applied entomology
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v.18
no.2
s.39
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pp.73-76
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1979
Two different isolates of Xanthomonas oryzae, KB 7785 of pathotype I and JN 7721 of pathotype III, that had been the most virulent isolates in the previous inoculation test, were reisolated from cultivar 'Milyang 23' and serially transferred to 10 times. They were inoculated to the 3 cultivars; 'Milyang 23' in Kinmaze group, 'Yushin' in Kogyoku group and 'Tongil' in Rantai-emas group cultivars. It was observed that the virulence of the isolate JN 7721 was more attenuated by the serial transfer on the Wakimoto's agar than the isolate KB 7785. The attenuation of virulence of the isolate JN 7721 was more significant at the cultivar 'Milyang23' than at the other cultivars. This suggests that the host-pathogen interactions and differences of the pathogenicity-maintenance ability among the pathogenic strains may be involved.
Subculture is the most common method for preservation fungi, but has a disadvantage of accumulation of spontaneous mutations during the repeated subculture. To reduce the subculture frequency, the effect of preservation period at $4^{\circ}C$ in a slant culture was examined on the mycelia growth and lignocellulolytic enzyme activities of various basidiomycetes. Mushrooms, including Stereum ostrea, Coprinellus micaeus, Trametes versicolor, Hypholoma fasciculare, Wolfiporia extensa, Pleurotus pulmonarius, Piptoporus betulinus and Ganoderma applanatum were not affected by the preservation period more than two years, indicating that they can be maintained by subculture every two years. Some other tested fungal strains showed a significant decrease in both viability and enzyme activity when they were maintained for two years, suggesting that they should be subcultured at least once in a year. A little correlation was found between the recovery of mycelial growth and extracellular enzyme activity. In conclusion, mycelial activity and enzyme activity according to storage period is expected to be a way of deciding on subculture times for fungal preservation.
Callus growth and shoot regeneration of Solanum and Lycopersicon depended on genotype, growth regulators, and thiamine concentration. L. peruvianum LA 1277 and L. peruvianum LA 1373 and PI 251301 had the greatest callus growth while L hirsutum LA 1777, L.esculentum 'Diego'and 'Red Plum' had the least callus growth. Lycopersicon penvianum genotypes were superior to L. esculentur genotypes in regenerating plants. MG medium was more effective in regenerating shoots than MS medium. A low level of IAA (0.2mg/L) and high level of BA (2 mg/L) resulted in the greatest shoot regeneration. Shoot growth varied depending on thiamine concentration and genotype. Shoot proliferation of Solanum ptycathum, Solanum nigrum, and L. peruvianum PI 199380 was best on medium with 20 mg/L thiamine. Regeneration of L. peruvianum PI 251301 and PI 128652 was better on medium with 30 and 10mg/L thiamine, respectively.
Using a cellulose macroporous microcarrier, HeLa cells were cultivated in 100mL spinner flask(Bellco Co., USA) and confluent cell laden microcarriers were subcultured by bead-to-bead cell transfer method. In macroporous mcirocarrier-HeLa system viable suspended cells played an important role in bead-to-bead cell transfer and that could be increased by use of RPMI-1640, a calcium-ion-reduced-media and high speed agitation. Successful bead-to-bead cell transfers were performed continuously three time in spinner flask. We applied this technique to produce recombinant Vaccinia virus which express $\beta$-galactosidase. Recombinant protein yield of bead-to-bead transferred culture was comparable to conventional microcarrier cultures that were inoculated by cells detached from T-flask. Although trypsinization is a useful method for subculturing microcarriers in some cases, that process adds quality control problem and handling steps to large scale cell production. There fore, bead-to-bead cell transfer technique offers another convenient and efficient scale-up method for continuous microcarrier cultures.
Park, Sung-Chul;Park, Su Hyun;Kim, Soyoung;Jeong, Yu Jeong;Kim, Cha Young;Jeong, Jae Cheol
Journal of Plant Biotechnology
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v.49
no.3
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pp.187-192
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2022
The repeated monthly or weekly subculture of plant callus is labor intensive and increases the risk of somaclonal variation from the parental callus line. The most effective method for preserving plant callus is cryopreservation, which involves storage in liquid nitrogen. However, this method cannot be applied to the callus of different plant species in the same manner, so it is difficult to develop a standardized cryopreservation method. In addition, the survival rate of the frozen callus after thawing and the regeneration rate after survival are uncertain. Therefore, it is necessary to develop a method to extend the subculture interval of plant callus in an active state. In this study, active plant calli of various species without freezing was incubated at 15℃ for 4 to 12 weeks without subculture. After 12 weeks, 8 lines of plant callus grew less than 2-fold when cultured at 25℃, but at least 2 times as much when cultured at 15℃. Moreover, total antioxidant activity did not differ significantly between plant callus recovered at 25℃ after culturing at 15℃ or at 25℃. These results show that the subculture interval can be extended at a temperature of 15℃ without need for modified medium composition or additional processes. In addition, positive results in all calli of several plant species are expected to reduce labor as well as somaclonal variation by increasing the subculture.
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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v.44
no.3
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pp.350-357
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2017
The purpose of this study was to evaluate the difference of differentiation potential in each passage of dental pulp stem cells from supernumerary tooth (sDPSCs). The sDPSCs were obtained from a healthy 6-year-old male patient under the guidelines and got the informed consent. Cells were cultured until passage number 16 and divided into two groups; 1 - 8 passages as a young group and 9 - 16 passages as an old group. It was taken $2.25{\pm}0.46days$ in a young group and $3.25{\pm}0.46days$ in an old group to propagate cells of each passage until confluence and there were statistically significant differences between two groups (p < 0.05). In every passage, cell morphology was observed with microscope and evaluated the capacity to form high levels of minerals by alizarin red solution staining after treating differentiation medium. Fibroblast-like, spindle shaped, elongated cells and a few nodules were found in uninduced cultures of passage number 1, 8 and 9. But at 16 passage culture, cell size became larger and broader and observed with more nodules. After inducing differentiation, mineralized nodules were detected at the first passage of 7th day culture whereas at the 8 passage culture, nodules were seen clearly at 14th day culture. In addition, the amount of mineralized nodules were remarkably decreased after passage 9. From the data presented in this study, it is recommended to use sDPSCs of passage number within 8 for utilizing as stem cells.
생쥐 배반포로부터 내부세포괴(inner cell mass, ICM)를 outgrowth로 분리하여 증식 시킴으로써 배아주(embryonic stem, ES)세포를 확립하고자 본 실험을 실시하였다. 과배란처리와 교미에 의해 생산된 ICR 생쥐의 3.5일 배반포를 sDMEM내의 배아성 섬유아단흥배양층에 배양하여 ICM세포의 증식을 조사한 결과, 3.5일부터 분리한 ICM세포들은 배양 7, 8일에 각각 1,500 및 3,200세포의 미분화세포로 증식하였다. 이들 세포의 계대배양에 의해 잠정적인 ES세포 colony를 얻었으며 10회의 계대배양후에도 그 형태가 변하지 않았다. 이들 세포는 다능성의 분화능을 보여 전형적인 ES세포 형태를 보였다. 이 같은 결과는 ICR배반포에서 outgrowth로 분리한 ICM으로부터 ES세포 확립이 가능함을 보여준 것이다.
본 연구는 NCSU-23과 PZM-3 배양액에 EGF, $\beta-ME$와 glucose의 첨가가 돼지 난자의 체외성숙에 미치는 영향과 배양조건을 다르게 하여 계대배양한 섬유아세포를 이용한 핵이식배를 다른 배양액과 산소조건에서 배양하였을 때 체외발생율에 미치는 영향을 조사하였다. 핵이식 배를 20ng/ml EGF를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $12.0\pm1.3\%,\;9.6\pm1.9\%,\;10.9\pm2.1\%,\;9.1\pm2.3\%$였다. 핵이식 배를 $25{\mu}M\;\beta-ME$를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 144시간 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $9.6\pm1.7\%,\;7.3\pm2.3\%,\;11.9\pm1.8\%$와 $7.4\pm2.1\%$였다. $\beta-ME$를 첨가한 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 $\beta-ME$를 첨가하지 않은 배양액에서 배양한 배보다 높은 체외발생율을 나타냈다. (p<0.05). 핵이식 배를 1.5mM glucose를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $9.4\pm2.2\%,\;6.8\pm2.7\%,\;10.9\pm2.4\%$와$8.9\pm2.6\%$였다. Glucose를 첨가한 NCSU-23과 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 glucose를 첨가하지 않은 배양액에서 배양한 배보다 높은 체외 발생율을 나타냈다. 핵이식 배를 NCSU-23 및 PZM-3 배양액과 $5\%$ 및 $20\%$ 산소 조건에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $11.1\pm1.8\%,\;9.8\pm1.4\%,\;12.5\pm1.6\%$와$10.9\pml.5\%$였다. NUSU-23과 PZM-3 배양액에서 $5\%$ 산소 조건에서 배양하였을 때 $20\%$산소 조건에서 배양한 난자보다 높은 체외 발생율을 나타났다. 섬유아세포를 NCSU-23 배양액에서 배양하여 공여자세포로 이용하여 10 및 $11\~15\;passage$ 이내로 계대배양하였을 때의 융합율은 $60.0\~73.3\%,\;52.5\%$였다. 섬유아세포를 PZM-3 배양액에서 배양하여 공여자세포로 이용하여 10 및 $11\~15passage$ 이내의 계대배양시의 융합율은 $60.4\~75.1\%$ 및 $58.7\%$였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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