Prions are proteinaceous infectious particles that cause neurodegenerative diseases, such as scrapie in sheep, bovine spongiform encephalopathy in cattle and Creutzfeldt-Jakob disease (CJD) in humans. Although the detailed process, regarding the abnormal conversion of prion proteins (PrP), remains to be fully elucidated, a number of environmental factors appear to affect the formation of misfolded PrP, termed PrPSc. Because oceanic algae contain mycosporine-like amino acids (MAAs), which exhibit cellular defensive activities under a variety of stress conditions, we investigated the level of PrPSc in prion-infected neuroblastoma cells using mycosporine-glycine, porphyra-334 and shinorine. When judged by the level of protease-resistant PrPSc in western blots, porphyra-334 and shinorine increased the level of PrPSc in cells, but mycosporine-glycine did not. The current results indicate that the MAAs tested in this study enhance the formation of PrPSc.
In prion pathogenesis, the structural conversion of the cellular prion protein $(PrP^c)$ to its abnormal isomer $(PrP^{Sc})$ is believed to be a major event. The susceptibility or resistance to natural sheep scrapie is associated with polymorphisms of host PrP gene (PRNP) at amino acid residues 136, to a lesser extent 154. The 112 residue in ovine PrP displays a natural polymorphism, Methionine to Threonine, which has not been thoroughly investigated. However the cell-free conversion assay showed that ARQ with Thr112 $(T_{112}ARQ)^{1)}$ presents lower convertibility to $PrP^{Sc}$than wild type ARQ $(M_{112}ARQ)$ [1] In this study we generated ovine recombinant PrPs of 112 allelic variants by metal chelate affinity chromatography and cation exchange chromatography. The final purity of the ovine PrP ARQ was more than $95\%$. These variants showed similar immunoreactivity against anti-PrP monoclonal antibodies in Western blot and ELISA. The refolded $M_{112}ARQ$ and $M_{112}ARQ$ presented the secondary structural content to similar extent via CD spectroscopy analysis. The inherited structural features of $M_{112}ARQ$ and $M_{112}ARQ$ under the different biophysical conditions are in the middle of investigation.
The conformational change of cellular prion protein ($PrP^C$) to its misfolded counterpart, termed $PrP^{Sc}$, is mediated by a hypothesized cellular cofactor. This cofactor is believed to interact directly with certain amino acid residues of $PrP^C$. When these are mutated into cationic amino acid residues, $PrP^{Sc}$ formation and prion replication halt in a dominant negative (DN) manner, presumably due to strong binding of the cofactor to mutated $PrP^C$, designated as DN PrP mutants. Previous studies demonstrated that plasminogen and its kringle domains bind to PrP and accelerate $PrP^{Sc}$ generation. In this study, in vitro binding analysis of kringle domains of plasminogen to Q167R DN mutant PrP (PrPQ167R) was performed in parallel with the wild type (WT) and Q218K DN mutant PrP (PrPQ218K). The binding affinity of PrPQ167R was higher than that of WT PrP, but lower than that of PrPQ218K. Scatchard analysis further indicated that, like PrPQ218K and WT PrP, PrPQ167R interaction with plasminogen occurred at multiple sites, suggesting cooperativity in this interaction. Competitive binding analysis using $\small{L}$-lysine or $\small{L}$-arginine confirmed the increase of the specificity and binding affinity of the interaction as PrP acquired DN mutations. Circular dichroism spectroscopy demonstrated that the recombinant PrPs used in this study retained the ${\alpha}$-helix-rich structure. The ${\alpha}$-helix unfolding study revealed similar conformational stability for WT and DN-mutated PrPs. This study provides an additional piece of biochemical evidence concerning the interaction of plasminogen with DN mutant PrPs.
Titlow, William B.;Waqas, Muhammad;Lee, Jihyun;Cho, Jae Youl;Lee, Sang Yeol;Kim, Dae-Hwan;Ryou, Chongsuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.9
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pp.1657-1660
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2016
Prion diseases are incurable neurodegenerative disorders. Our previous study demonstrated that polylysine was effective in prolonging the incubation period in a rodent model and in alleviating the scrapie prion protein (PrPSc) burden in the brain at the terminal stage of the disease. Here, we report that intraperitoneal administration of polylysine suppresses the accumulation of prions in the spleen during the early stages of the disease. This study supports the congruence of PrPSc inhibition by polylysine in both the spleen and brain.
Waqas, Muhammad;Trinh, Huyen Trang;Lee, Sungeun;Kim, Dae-hwan;Lee, Sang Yeol;Choe, Kevin K.;Ryou, Chongsuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.12
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pp.2141-2144
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2018
Based on previous studies reporting the anti-prion activity of poly-${\text\tiny{L}}$-lysine and poly-${\text\tiny{L}}$-arginine, we investigated cationic poly-${\text\tiny{L}}$-ornithine (PLO), poly-${\text\tiny{L}}$-histidine (PLH), anionic poly-${\text\tiny{L}}$-glutamic acid (PLE) and uncharged poly-${\text\tiny{L}}$-threonine (PLT) in cultured cells chronically infected by prions to determine their anti-prion efficacy. While PLE and PLT did not alter the level of $PrP^{Sc}$, PLO and PLH exhibited potent $PrP^{Sc}$ inhibition in ScN2a cells. These results suggest that the anti-prion activity of poly-basic amino acids is correlated with the cationicity of their functional groups. Comparison of anti-prion activity of PLO and PLH proposes that the anti-prion activity of poly-basic amino acids is associated with their acidic cellular compartments.
Conversion of the normal soluble form of prion protein, PrP ($PrP^C$), to proteinase K-resistant form ($PrP^{Sc}$) is a common molecular etiology of prion diseases. Proteinase K-resistance is attributed to a drastic conformational change from ${\alpha}$-helix to ${\beta}$-sheet and subsequent fibril formation. Compelling evidence suggests that membranes play a role in the conformational conversion of PrP. However, biophysical mechanisms underlying the conformational changes of PrP and membrane binding are still elusive. Recently, we demonstrated that the putative transmembrane domain (TMD; residues 111-135) of Syrian hamster PrP penetrates into the membrane upon the reduction of the conserved disulfide bond of PrP. To understand the mechanism underlying the membrane insertion of the TMD, here we explored changes in conformation and membrane binding abilities of PrP using wild type and cysteine-free mutant. We show that the reduction of the disulfide bond of PrP removes motional restriction of the TMD, which might, in turn, expose the TMD into solvent. The released TMD then penetrates into the membrane. We suggest that the disulfide bond regulates the membrane binding mode of PrP by controlling the motional freedom of the TMD.
In this article, the effect of the crystal structural environment of $Pr^{3+}$ ions on the photoluminescence (PL) characteristics of double tungstates, such as $A(M_{1-X}Pr_X)W_2O_8$ (A=Li, Cs, M = In, Y, Sc, La; $0.007{\leq}x{\leq}0.1$) and $La_{1.96}Pr_{0.04}W_3O_{12}$ are characterized. By varying the ion radius in A and M sites, the structural environment of $Pr^{3+}$ ions were modified. The structural criteria, that is, the point charge electrostatic potentials V around the $Pr^{3+}$ activator, were calculated using the crystal structural parameters. The point charge potential V can be a valid criterion for $^3P_o$ quenching in various double tungstates. When the calculated V values are large (> 6.0), the luminescence from the $^3P_0$ level becomes dominant. When the calculated V values are about 3.8, the $^1D_2$ line appears weakly but $^3P_0$-level luminescence is absent. When the calculated V values are small (< 2.0), the luminescence from the $^1D_2$ level becomes dominant and $^3P_0$-level luminescence is absent. At 2.0$^3P_o$ quenching to $^1D_2$ level occurs substantially in accordance with the structural criterion of the point charge potential model.
Shizandra chinensis(SC) and Pinus regida(PR) showed antimicrobial activity against 3 strains(B-5, D-1, A-1) of lactic acid bacteria(LAB) isolated from kimchi among eight kinds of plant extracts such as Shizandra chinensis, Phellodendron amurense, ornus officinalis, Pinus regida, Allium tuberosum, Machilus thunbergii, Cyperus rotundus and Schizonepeta tenuifloia. The growth of LAB was inhibited apparently in modified MRS broth containing 1% Schizandra chinensis at $35^{\circ}C$. Pinus regida showed weaker inhibitory effect on the growth of isolated LAB than Shizandra chinensis. pH of SC added kimchi did not change greatly compare with control during 25 days of fermentation. Degree of titratable acidity change and ratio of reducing sugar utilization in control were more higher than in SC added kimchi during fermentation. Growth of total bacteria and lactic acid bacteria was inhibited about 1 to 2 $log_10$ cycle by addition of SC extracts during kimchi fermentation for 10 days at $10^{\circ}C$. Fermentation of kimchi was delaved about 5 to 7 days by addition of 1 or 2% of SC. extract, but sensory quality (falvor, taste and overall acceptability) of SC added kimchi was lower than that of control (p>0.05).
The transmissible spongiform encephalopathies (TSEs) disease group are fatal neurodegenerative disorders affecting a wide range of hosts. The group includes kuru and Creutzfeldt-Jakob disease (CJD) in humans, scrapie in sheep and goats and Bovine spongiform encephalopathy (BSE) in cattle. The exact nature of the infectious agent involved in the transmission of these diseases remains controversial. However, a central event in their pathogenesis is the accumulation in infected tissues of an abnormal form of a host-encoded protein, the prion protein (PrP). Whereas the normal cellular protein is fully sensitive to protease ($PrP^{sen}$), the disease-associated prion protein ($PrP^d$) is only partly degraded ($PrP^{res}$), its amino-terminal end being removed. BSE was first reported in the mid-80s in the UK. Ten years later, a new form of human prion disease, variant CJD (vCJD) developed in the wake of the BSE epidemic, and there is now strong scientific evidence that vCJD was initiated by the exposure of humans to BSE-infected tissues, thus indicating a zoonotic disease. However, the ban on the feeding of animal-derived proteins to ruminants, and the apparent lack of vertical transmission of BSE, have led to a decline in the incidence of the disease within cattle herd and therefore, an assumed decreased risk for human contacting vCJD. The origin of the original case(s) of BSE still remains an enigma even though three hypotheses have been raised. Hypotheses are i) sheep- or goat-derived scrapie-infected tissues included in meat and bone meal fed to cattle, ii) a previously undetected sporadic or genetic bovine TSE contaminating cattle feed or iii) originating from a human TSE through animal feed contaminated with human remains. A host cellular membrane protein ($PrP^C$), which is abundant in central nervous system tissue, appear to be conformationally altered in the diseased host into a prion protein ($PrP^{Sc}$). This $PrP^{Sc}$ is detergent insoluble and partially protease-resistant ($PrP^{res}$). The term $PrP^{res}$ is normally used to describe the protein detected after protease treatment, in techniques such as Western immunoblotting, and enzyme-linked immunosorbant assay using fresh/frozen tissue. Immunohistochemistry may performed with formalin-fixed tissues. Also, clinical signs of the BSE are one of the major diagnostic indicators. Recently, atypical forms (known as H- and L-type) of BSE have appeared in several European countries, Japan, Canada and the United States. An unusual case was also reported in a miniature zebu. The atypical BSE fall into two groups based on the relative molecular mass (Mm) of the unglycosylated $PrP^{res}$ band relative to that of classical BSE, one of the higher Mm (H-type) and the other lower (L-type). Both types have been detected worldwide as rare cases in older animals, at a low prevalence consistent with the possibility of sporadic forms of prion diseases in cattle. This raises the unwelcome possibility that vCJD could increase in the human population. Now, active surveillance program against BSE is going on in Korea. In regional veterinary service lab, ELISA is applied to screen the BSE in slaughter and confirmatory tests by Western immunoblotting and immunohistochemisty are carried out if there are positive or suspect in the screening test. Also, the ruminant feed ban is rigorously enforced. Removal of specified risk materials such as brain and spinal cord from cattle is mandatory process at slaughter to prevent the infected material from entering the human food chain.
Prion diseases, often called transmissible spongiform encephalopathies (TSEs), are infectious diseases that accompany neurological dysfunctions in many mammalian hosts. Prion diseases include Creutzfeldt-Jakob disease (CJD) in humans, bovine spongiform encephalopathy (BSE, "mad cow disease") in cattle, scrapie in sheep, and chronic wasting disease (CWD) in deer and elks. The cause of these fatal diseases is a proteinaceous pathogen termed prion that lacks functional nucleic acids. As demonstrated in the BSE outbreak and its transmission to humans, the onset of disease is not limited to a certain species but can be transmissible from one host species to another. Such a striking nature of prions has generated huge concerns in public health and attracted serious attention in the scientific communities. To date, the potential transmission of prions to humans via foodborne infection and iatrogenic routes has not been alleviated. Rather, the possible transmission of human to human or cervids to human aggravates the terrifying situation across the globe. In this review, basic features about prion diseases including clinical and pathological characteristics, etiology, and transmission of diseases are described. Based on recently accumulated evidences, the molecular and biochemical aspects of prions, with an emphasis on the molecular interactions involved in prion conversion that is critical during prion replication and pathogenesis, are also addressed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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