An efficient procedure for the preparation of 7,8-dichloro-6-nitro-1H-1,5-benzodiazepine-2,4-(3H, 5H)-dione(7) as a potential lead compound for the NMDA receptor glycine binding site antagonist, starting from readily available 4,5-dichloro-2-nitroaniline(8), is described. The key step in the synthesis involves the cyclization of malonic ester amide 10 to compound 11.
The present study was designed to examine whether the co-application of morphine with $Ca^{2+}$ channel antagonist $(Mn^{2+},\;verapamil)$, N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor antagonist (2-amino-5-phosphonopentanoic acid$[AP_5]$, $Mg^{2+}$) or protein kinase C inhibitor (H-7) causes the potentiation of morphine-induced antinociceptive action by using an in vivo electrophysiological technique. A single iontophoretic application of morphine or an antagonist alone induced weak inhibition of wide dynamic range (WDR) cell responses to iontophoretically applied NMDA and C-fiber stimulation. Although there was a little difference in the potentiating effects, the antinociceptive action of morphine was potentiated when morphine was iontophoretically applied together with $Mn^{2+}$, verapamil, $AP_5$, $Mg^{2+}$ or H-7. However, the potentiating action between morphine and each antagonist was not apparent, when the antinociceptive action evoked by morphine or the antagonist alone was too strong. These results suggest that the potentiating effect can be caused by the interaction between morphine and each antagonist in the spinal dorsal horn.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1994.04a
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pp.305-305
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1994
It has been shown that there are several subtypes of $\kappa$ opioid receptor, We have evaluated the properties of non-${\mu}$, non-$\delta$ binding of 〔$^3$H〕DIP, a nonselective opioid antagonist, in rat cortex membranes. Binding to ${\mu}$ and $\delta$ sites was inhibited by the use of an excess of competing selective agonists (DAMGO, DPDPE) for these sites. (-)Ethylketocyclazocine(EKC) inhibited 〔$^3$H〕DIP binding with Ki. of 70 nM. However, arylacetamides (U69593 and U50488H) gave little inhibition. Also, we have examined the opioid modulation of K$\^$+/(30 mM)-induced histamine release in rat frontal cortex slices labeled with 1-〔$^3$H〕histidine. The 〔$^3$H〕histamine release from cortex slices was inhibited by EKC, a $\kappa$$_1$-and $\kappa$$_2$-agonist, in a concentration-dependent manner(10 to 10,000 nM). The IC$\sub$50/ of EKC was 107 ${\pm}$ 6 nM. However, the $\delta$ receptor selective agonists, DPDPE and deltorphine II, ${\mu}$ receptor agonists, DAMGO and TAPS, $\kappa$$_1$-agonists, U69593 and U50488H, and $\varepsilon$-agonist, ${\beta}$-endorphin, did not inhibit histamine release even in micromoiar dose, indicating that ${\mu}$, $\delta$ or $\kappa$$_1$ receptors are not involved. The concentration-response curve of EKC was shifted to right in the presence of naloxone (300 nM), a ${\mu}$ preferential antagonist, norbinaltorphimine(300 nM), a $\kappa$$_1$ preferential antagonist and bremazocine(1 nM), a $\kappa$$_1$-agonist and $\kappa$$_2$-antagonist. These results suggest that $\kappa$$_2$ opioid receptor regulates histamine release in the frontal cortex of the rat.
Active cardiovascular anaphylactic response was induced in ovalbumin-sensitized, pithed Sprague-Dawley and Wistar rats. On intravenous administration of the antigen, ovalbumin, marked tachycardia and pressor responses were immediately elicited. Thereafter, a delayed long-lasting severe hypotensive response was observed. These anaphylactic cardiovascular responses were maximal 2-3 weeks after the sensitization, and the response was slightly diminished 6 weeks after sensitization. The immediate pressor response was blocked by a non-selective serotonin antagonist methysergide at a dose-dependent manner, but not by histamine receptor antagonists mepyramine (pyrilamine) or cimetidine. The delayed hypotension was reduced either by histamine $H_1$ receptor antagonist mepyramine or $H_2$ receptor antagonist cimetidine, both in a dose-dependent manner. The tachycardic response was not influenced by serotonin or histamine receptor antagonists examined in this study. Differently from the cardiovascular responses, there was no observable bronchial contraction in Sprague-Dawley rat trachea in contrast to Wistar rat where the trachea contracted to in vitro antigen challenge. The cardiovascular anaphylactic model seems to be useful for studying cardiovascular events that occur exclusively in peripheral heart-blood vessel systems. The involvement of two major anaphylactic mediators, serotonin and histamine, is partially demonstrated.
Background : The purpose of this study was to develop, implement and evaluate the pharmacist intervention program designed to identify and correctly adjust the dosage of $H_2$-receptor antagonists ($H_2RA$) in renally impaired patients and promote timely conversion of $H_2RA$ from IV to PO therapy. Methods : The study population consisted of renally impaired patients who received $H_2RA$ therapy from April 9 to May 8, 2001 at Hallym Medical Center. Each morning a specifically developed software program identified patients with serum creatinine (Scr) greater than 1.2 mg/dl or age greater than 65 years. The pharmacist, then screened the pharmacy profiles of the identified patients to determine if the patient was on $H_2RA$. For these patients on $H_2RA$ with renal impairement the creatinine clearance (CrCl) was calculated using Cockroft & Gault equation. The pharmacist determined the proper dosage for each identified patients based on the calculated CrCl and the oral dosage that would be appropriate for whom IV therapy was no longer indicated. Result : A total of 149 cases (101 patients) were monitored during the study period. The dosage was inappropriately prescribed for renal function in 61 of 149 cases (41%), and of those, pharmacist made recommendations for 58 cases of which 33 cases (57%) were accepted by the physicians. The administration route of H2RA was inappropriately used as IV in 22 of 53 cases (42%), and pharmacist made recommendations for those 22 cases of which 15 cases (68%) were accepted. Conclusion : Monitoring of patients with renal dysfunction by a pharmacist improved the dosing of $H_2RA$ and a dosing program of patients with renal impairment would be of benefit to other clinicians and institutions seeking to optimize patient care.
Background: Cynara scolymus has bioactive constituents and has been used for therapeutic actions. The present study was undertaken to investigate the mechanisms underlying pain-relieving effects of the hydroethanolic extract of C. scolymus (HECS). Methods: The antinociceptive activity of HECS was assessed through formalin and acetic acid-induced writhing tests at doses of 50, 100 and 200 mg/kg intraperitoneally. Additionally, naloxone (non-selective opioid receptors antagonist, 2 mg/kg), atropine (non-selective muscarinic receptors antagonist, 1 mg/kg), chlorpheniramine (histamine H1-receptor antagonist, 20 mg/kg), cimetidine (histamine H2-receptor antagonist, 12.5 mg/kg), flumazenil (GABAA/BDZ receptor antagonist, 5 mg/kg) and cyproheptadine (serotonin receptor antagonist, 4 mg/kg) were used to determine the systems implicated in HECS-induced analgesia. Impact of HECS on locomotor activity was executed by open-field test. Determination of total phenolic content (TPC) and total flavonoid content (TFC) was done. Evaluation of antioxidant activity was conducted employing 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) free radical scavenging assay. Results: HECS (50, 100 and 200 mg/kg) significantly indicated dose dependent antinociceptive activity against pain-related behavior induced by formalin and acetic acid (P < 0.001). Pretreatment with naloxone, atropine and flumazenil significantly reversed HECS-induced analgesia. Antinociceptive effect of HECS remained unaffected by chlorpheniramine, cimetidine and cyproheptadine. Locomotor activity was not affected by HECS. TPC and TFC of HECS were 59.49 ± 5.57 mgGAE/g dry extract and 93.39 ± 17.16 mgRE/g dry extract, respectively. DPPH free radical scavenging activity (IC50) of HECS was 161.32 ± 0.03 ㎍/mL. Conclusions: HECS possesses antinociceptive activity which is mediated via opioidergic, cholinergic and GABAergic pathways.
The N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor-ion channel complex is activated by the simultaneous presence of L-glutamate and glycine, allowing the binding of MK-801 to the phencyclidine (PCP) site of the receptor. The $[^3H]$MK-801 binding assay system was established for determination of pharmacological functions of test compounds acting at the glycine site of the receptor. The binding in the presence of 0.1 $\mu$M L-glutamate was increased by an agonist (glycine) in a dose-dependent fashion, while decreased by either partial agonist (R-(+)-HA-966) or antagonist (5,7-dichlorokynurenic acid: 5,7-DCKA). To distinguish partial agonism from antagonism, various concentrations of 7-chlorokynurenic acid (7-CKA) were added in the assay to eliminate the interference of the endogenous glycine present in the membrane preparations. The bindings in the presence of L-glutamate (0.1$\muM$) and 7-CKA (1, 5, or 10$\muM$) were increased by R-(+)-HA-966. Being a weak partial agonist, the extent of potentiation was much less than that by the agonist. These binding profiles were clearly distinguishable from those by the antagonist, 5,7-DCKA, which exhibited no intrinsic activity. The binding assays established in the present study are a useful system to classify ligands acting at the glycine site of the NMDA receptor by their pharmacological functions.
T0901317 is a potent synthetic ligand for liver X receptor (LXR, NR1H2/3), a member of the nuclear receptor superfamily that functions as a transcription factor. However, T0901317 has been also reported to modulate the activity at least four other nuclear receptors (NRs), acting as agonists for farnesoid X receptor (FXR, NR1H4) and pregnane X receptor (PXR, NR1I2) and as antagonists for androgen receptor (AR, NR3C4) and retinoid-related orphan receptor-${\alpha}$ (ROR-${\alpha}$, NR1F1). We report here that T0901317 can also function as an inhibitor for constitutive androstane receptor (CAR, NR1I3). Since CAR is a major player of xenobiotic and cholesterol metabolism in the liver, along with PXR, FXR and LXR, which are reported to be regulated by T0901317, this further complicates the interpretation of potential results with T0901317 in liver cells.
The effects of adenosine, adenosine A1 receptor antagonist (DPCPX), or NMDA receptor antagonist (APV) on the spontaneous release of $[^3H]-5-hydroxytryptamine$ ($[^3H]-5-HT$) during normoxic/normoglycemic or hypoxic/hypoglycemic period were studied in the rat hippocampal slices. The hippocampus was obtained from the rat brain and sliced $400\;{\mu}m$ thickness with the tissue slicer. After 30 min's preincubation in the normal buffer, the slices were incubated for 30 min in a buffer containing $[^3H]-5-HT$ ($0.1\;{\mu}M,\;74{\mu}Ci/8\;ml$) for uptake, and washed. To measure the release of $[^3H]-5-HT$ into the buffer, the incubation medium was drained off and refilled every ten minutes through sequence of 14 tubes. Induction of glucose/oxygen deprivation (GOD; medium depleting glucose and gassed with 95% $N_2/5%\;CO_2$) was done in 6th and 7th tube. The radioactivities in each buffer and the tissue were counted using liquid scintillation counter and the results were expressed as a percentage of the total radioactivities. When slices were exposed to GOD for 20 mins, the spontaneous release of $[^3H]-5-HT$ was markedly increased and this increase of $[^3H]-5-HT$ release was blocked by adenosine ($10\;{\mu}M$) or DL-2-amino-5-phosphonovaleric acid (APV; $30\;{\mu}M$). Adenosine $A_1$ receptor specific antagonist, 8-cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine (DPCPX) exacerbate GOD-induced increase of spontaneous release of $[^3H]-5-HT$. These results suggest that Adenosine may play a role in the GOD-induced spontaneous release of $[^3H]-5-HT$ through adenosine $A_1$ receptor activity.
We investigated the effect of ${\alpha}-adrenergic$ and cholinergic receptor agonists on $Ca^{2+}$ current in adult rat trigeminal ganglion neurons using whole-cell patch clamp methods. The application of acetylcholine, carbachol, and oxotremorine ($50\;{\mu}M\;each$) produced a rapid and reversible reduction of the $Ca^{2+}$ current by $17{\pm}6%,\;19{\pm}3%,\;and\;18{\pm}4%$, respectively. Atropine, a muscarinic antagonist, blocked carbachol- induced $Ca^{2+}$ current inhibition to $3{\pm}1%$. Norepinephrine ($50\;{\mu}M$) reduced $Ca^{2+}$ current by $18{\pm}2%$, while clonidine ($50\;{\mu}M$), an ${\alpha}2-adrenergic$ receptor agonist, inhibited $Ca^{2+}$ current by only $4{\pm}1%$. Yohimbine, an ${\alpha}2-adrenergic$ receptor antagonist, did not block the inhibitory effect of norepinephrine on $Ca^{2+}$ current, whereas prazosin, an ${\alpha}1-adrenergic$ receptor antagonist, attenuated the inhibitory effect of norepinephrine on $Ca^{2+}$ current to $6{\pm}1%$. This pharmacology contrasts with ${\alpha}2-adrenergic$ receptor modulation of $Ca^{2+}$ channels in rat sympathetic neurons, which is sensitive to clonidine and blocked by yohimbine. Our data suggest that the modulation of voltage dependent $Ca^{2+}$ channel by norepinephrine is mediated via an α1-adrenergic receptor. Pretreatment with pertussis toxin (250 ng/ml) for 16 h greatly reduced norepinephrine- and carbachol-induced $Ca^{2+}$ current inhibition from $17{\pm}3%\;and\;18{\pm}3%\;to\;2{\pm}1%\;and\;2{\pm}1%$, respectively. These results demonstrate that norepinephrine, through an ${\alpha}1-adrenergic$ receptor, and carbachol, through a muscarinic receptor, inhibit $Ca^{2+}$ currents in adult rat trigeminal ganglion neurons via pertussis toxin sensitive GTP-binding proteins.
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