The potential utility of the rockbream (Oplegnathus fasciatus) $\beta$-actin 5'-upstream sequence as a regulatory element for DNA vaccination was evaluated based on in vitro and in vivo heterologous expression assays. In the in vitro transfection experiment, the efficacy of the rockbream $\beta$-actin promoter to drive the expression of a downstream lacZ gene was significantly higher (more than fourfold) than that of the human cytomegalovirus (hCMV) promoter in two fish cell lines (grunt Haemulon plumierii fin and bluegill Lepomis macrochirus fry cell lines). In contrast, the functional activity of the rockbream $\beta$-actin promoter was hardly detectable in a mammalian mouse embryonic fibroblast cell line. Rockbream skeletal muscles injected in vivo with a GFP reporter construct driven by the $\beta$-actin promoter displayed the significantly higher expression of a GFP protein (more than threefold) than did those injected with hCMV promoter driven construct. Data from this study suggest that the homologous rockbream $\beta$-actin promoter could be used as a potential regulator for DNA vaccination in this species.
미꾸라지를 대상으로 어류 유전자 이식을 위한 유용 model system으로 개발하기 위한 연구의 일환으로 잉어의$\beta$-actin 유전자의 promoter와 CAT 유전자가 융합되어 있는 외래 유전자 (pFV4CAT)를 미꾸라지에 이식, transgenic founder 미꾸라지를 생산하였다. PCR 분석결과, 이식된 외래 유전자는 부화 후 9개월된 성어에서 7.4-37.0%의 빈도로 존재하였으며 Southern blot 분석에 의해서 염색체 상의 삽입 가능성을 나타내었다. In situ immunohistochemical analysis 결과 이식된 외래 유전자는 미꾸라지 세포내에서 비교적 높은 빈도로 발현하였으며 그 발현 양상은 개체마다 다양하게 나타났다.
We characterized the cytoskeletal beta-actin (${\beta}$-ACT) gene (actb) and its 5'-upstream regulatory region in the Javanese ricefish Oryzias javanicus. The gene and protein structures were deduced from amino acid sequences of the actb gene and conserved in the teleost lineage. The O. javanicus actb gene has common transcription factor binding motifs in its regulatory region found in teleostean orthologues. Following quantitative reverse transcription-PCR, actb gene transcripts were detected in all tissues examined; however, the basal expression levels were different. During early development, O. javanicus actb mRNA levels showed a gradual increase and peaked between late somitogenesis and the heartbeat stage. Microinjection of O. javanicus embryos with the actb gene promoter-driven red fluorescent protein (RFP) gene reporter vector showed a ubiquitous distribution of RFP signals, although most exhibited a mosaic pattern of transgene expression. A small number of microinjected embryos displayed a wide distribution of RFP signals over their entire body, which resembled the expression pattern of endogenous actb. Data from this study provide a basis to develop a transgenic system with ubiquitous expression of foreign genes in O. javanicus.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제39권1호
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pp.22-28
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2019
We previously isolated 9 clones that show stronger signal compared to Bombyx mori cytoplasmic actin gene (BmA3) by using a dot blot hybridization. In this study, we focused on one clone among these clones which has high amino acid similarity with ${\beta}$-tubulin gene of B. mori. This clone was ubiquitously expressed in all tissues and developmental stage of B. mori. As result of promoter assay using dual luciferase assay system, we found the highest transcription activity region (-750/-1) in the 5'-flanking region of ${\beta}$-tubulin gene, which has about 47 fold more intensive promoter activity than BmA3 promoter. Moreover, the ${\beta}$-tubulin promoter was normally regulated in Bm5, Sf9, and S2 cells. Therefore, we suggest that ${\beta}$-tubulin promoter may be used more powerful and effectively for transgene expression in various insects containing B. mori as a universal promoter.
Cho, Young Sun;Lee, Sang Yoon;Vu, Nguyen Thanh;Kim, Dong Soo;Nam, Yoon Kwon
Fisheries and Aquatic Sciences
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제18권2호
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pp.183-193
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2015
Several transgenic marine medaka Oryzias dancena strains harboring a green fluorescent protein (GFP) reporter construct regulated by an endogenous ${\beta}$-actin promoter were established and their expression characteristics in relation to transgene copy numbers were examined in 21 transgene genotypes. Most of the transgenic strains displayed transgene insertion patterns typical of microinjection-mediated introduction of foreign DNA into fish embryos, characterized by the random integration of multiple transgene copies (ranging from 1 - 282 copies per cell), often accompanied by the formation of concatemer(s), as assessed by genomic Southern blot hybridization analysis and qPCR. Transgenic strains showed ubiquitous and continued temporal and spatial expression patterns of the transgenic GFP during most of their life cycle, from the embryonic stage to adulthood, enabling assessment of the expression pattern of the endogenous ${\beta}$-actin gene. However, a comparative evaluation of transgene copy numbers and expression levels showed that copy number-dependent expression, the stability of the ubiquitous distribution and expression efficiency per transgene copy varied among the transgenic strains. Fluorescence expression levels were positively correlated with absolute transgene copy numbers, whereas the expression efficiency per transgene copy was inversely related to the number of transgene integrant copies. Data from this study will guide the selection of potentially desirable transgenic strains with ubiquitous expression of a fluorescent transgene, not only in this marine medaka species but also in other related model fish species.
Transgenic 양서류를 만들기 위한 연구의 일환으로 bacterial $\beta$-galactosidase 유전자를 cytopalsmic actin promoter에 연결시킨 plasmid를 xenopus 수정란에 미세주입하여 외부 DNA의 발현을 조사하였다. $\beta$-gal DNA를 20nl당 1ng에서 2ng의 농도로 미세주입하는 경우, 이 농도는 배발생에 크게 영향을 미치지 않는 것으로 나타났다. 또한 유전자 산물인 $\beta$-galactosidase는 양서류의 모든 배엽성 세포에서 발현 가능하고, 정상적인 활성을 나타내므로 외부 DNA의 발현여부를 in situ 상태에서 판명할 수 있었다. 주입된 외부 DNA는 낭배기 시기에 최초로 발현되고, 적어도 올챙이 시기까지 유지 및 발현 가능하며, 초기 발생동안 extrachromosomal 상태에서 발현되는 것으로 나타났다. 그러나 발현의 정도는 주입된 개체는 물론 매 실험마다 차이를 보였고, 또한 기질인 X-Gal에 반응하는 부위가 전체 배에 분포하는 겅우는 거의 없으며, 일정 부위에 한정되어 있음이 관찰되었다. 이는 세포막을 통해서 DNA가 다른 할구로 이동하지 못하는 사실에 비추어 미세주입된 DNA가 난할시 각 할구로 균등하게 분포되지 못하고 국부적으로 나뉘어 들어가기 때문인 것으로 사료된다.
To determine the patterns and the levels of expression of the cauliflower mosaic virus (CaMV 35S) promoter and the rice actin 1 (Act1) promoter in rice, transgenic rice plants containing CaMV 35S-$\beta$-glucuronidase (GUS) and Act1-GUS constructs were generated and examined by fluorometric and histochemical analyses. The fluorometric analysis of stably transformed calluses showed that the activity of the rice Act1 promoter was stronger than that of the CaMV 35S promoter in rice cells. In a histochemcial study of the transgenic rices, it was shown that the GUS activity directed by the CaMV 35S promoter was localized mainly in parenchymal cells of vascular tissues of leaves and roots and mesophyll cells of leaves. These results are similar to those of potato, a dicot plant. In contrast, rice plant transformed with Act1-GUS fusion construct revealed strong GUS activity in parenchymal cells of vascular tissue, mesophyll cells, epidermal cells, bulliform cells, guard subsidiary cells of leaves and most cells of the root, suggesting that the rice Act1 promoter is more constitutive than the CaMV 35S promoter. It was also confirmed that in both types of transgenic rice little or no staining was localized in metaxylen tracheary elements of vascular tissue from leaves or roots. These results indicate that the rice Act1 promoter can be utilized more successfully for expression of a variety of foreign gene in rice than the CaMV 35S promoter.
Growth hormone (GH) transgenesis in fish has the potential to improve aquaculture efficiency and capacity. However, many fast-growing transgenic fish have experienced side effects caused by excess GH expression. To overcome this unwanted issue associated with several GH transgenic mud loach Misgurnus mizolepis lines carrying GH construct driven by a strong ${\beta}$-actin regulator ($pml{\beta}$-actGH), we performed an alternative version of GH autotransgenesis using a weaker but more stable regulator, the mud loach lectin promoter. GH transgenesis with a pmlectGH construct consisting of the mud loach GH gene driven by the 2.3-kb lectin promoter exhibited significant growth stimulation. However, the extent of the growth acceleration in pmlectGH transgenics (six times maximum when assessed 2 months post hatching) was much less than that in transgenic individuals carrying the $pml{\beta}$-actGH construct. Additionally, the extraordinary gigantism that was common in $pml{\beta}$-actGH-transgenic mud loaches was diminished in transgenic loaches harboring the pmlectGH construct. Transgenic founders (pmlectGH) successfully transmitted their transgene into the next generation with up to 41% frequency. Growth stimulation also persisted in the transgenic F1 strains, with a seven-fold increase in maximum body weight at 6 months of age.
본 연구는 수정란을 수란우에 이식하기 이전에 형질전환가능 수정란을 선발할 수 있다면 형질전환동물의 생산에 크게 도움이 되므로 3.2 kb $\beta$-actin promoter (lacZ/n대) DNA를 미세주입하여 배반포기배에서의 발현을 확인하여 이들을 선발할 수 있는가를 규명하고자 하엿다. 채란된 난포란은 10%FBS, 5$\mu\textrm{g}$/ml LH, 0.5$\mu\textrm{g}$/ml FSH, 100 unit/ml penicillin 및 100 $\mu\textrm{g}$/ml streptomycin이 함유된 TCM199에 22~24 시간동안 체외성숙을 유도후 5$\mu\textrm{g}$/ml heparin으로 수정능획득을 유도한 1$\times$106 sperm/ml의 정자로 체외수정을 시켰다. 체외수정후 18~20시간째에 vortexing에 의해 과립막세포를 제거하고 원심분리시켜 자/웅전핵이 확인되는 수정란의 핵에 3~4 ng/${\mu}\ell$ lacZ/neo DNA를 미세주입하였다. 모든 수정란의 배양은 3 mg/ml BSA, 20${\mu}\ell$/ml NEM AMINO acids 및 40${\mu}\ell$/ml BME amino acids가 함유되어 있는 CR1aa 배양액에 neo/DNA로 transfected 된 BRL 단층에서 실시하였다. G418에 대한 적정농도를 찾기 위하여 정상적인 수정란에 0, 50, 100 및 200 $\mu\textrm{g}$/ml G418를 첨가하여 배양한 결과 8일째에 30.3%(44/145), 8.7%(13/150), 0.7%(1/151) 및 0% (0/134)의 수정란이 배반포기까지 발달하였다. 그래서 본 실험에서는 일정하게 100$\mu\textrm{g}$/ml G418을 첨가하여 배양하였다. 총 1,127개의 수정란을 미세주입후 G418 없는 배양액에서 710개 (63.0%)가 분할하였다. 미세주입후 48시간째에 2-세포기이상 분할된 수정란을 대조구 및 100$\mu\textrm{g}$/ml G418처리구를 무작위로 할당하여 배양하였으며, 또한 740개의 정상수정란도 같은 반복수로 배양을 실시하였다. 미세주입한 수정란은 8일 후 11.6%(26/255) 및 5.2% (14/267)가 대조구 및 G418 처리구에서 배반포기까지 발달하였으며 정상수정란은 27.2% (151/740)가 배반포기 배까지 발달하였다. 미세주입후 대조구에서는 23.1$\pm$2.6/70.7$\pm$4.7 (32.7%)의 할구가 $\beta$-Gal 활력을 보였고, 반면에 100$\mu\textrm{g}$/ml G418 처리구에서는 40.3$\pm$4.1/48.8$\pm$7.5 (82.6%)가 $\beta$-Gal 활력을 보였다. 비록 mosaic 형태로 외래유전자가 발현되었지만 대조구에서 87.0% (26/30개) 배반포기가 $\beta$-Gal 활력을 보인 반면, G418 처리구에서는 모든 배반포기가 $\beta$-Gal 활력을 보였다 (P<0.05). 그러나 대조구 및 G418 처리구의 ICM colony에서는 영양배엽과 내배엽을 제외한 epiblast에서는 확인되지 않았다. 그러나 이 결과로부터 $\beta$-actin promoter/lacZ gene이 integration되지 않는 것인지 또는 다만 염색 확인이 되지 않는 것인지를 판단할 수는 없다. 이상의 결과는 미세주입후 G418에서 배양한 배반포기배에서는 대부분의 할구에서 주입된 gene을 발현하고 있었으나 ICM colony에서는 특히 epiblast에서는 발현되지 않거나 침묵하고 있었다. 비록 G418 처리구에서 훨씬 더 높은 비율로 주입된 gene이 발현되고 있으나 총세포수는 유의적으로 감소하여 이후 형질전환동물의 생산과 ES like-cell의 설립에는 감소될 것으로 사려된다. 그러나 형질전환 수정란의 선발 및 형질전환동물의 생산능력에 관해서는 더 많은 연구가 필요하다고 사려된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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