Glycosidase activities were tested from the grape berries, Vitis labruscana B. Takasumi. Among various glycosidases, $\alpha$-D-galactosidase was found to be the most active in the flesh and other glycosidases were considerably active in the order of the following: $\alpha$-D-mannosidase>$\alpha$-D-glucosidase>$\beta$-D-glucosidase>$\beta$-D-galactosidase. In the seeds, $\alpha$-D-glucosidase activity was the highest and other glycosidases such as $\alpha$-D-galactosidase, $\beta$-D-glucosidase, and $\beta$-D-galactosidase were still significantly active. The $\alpha$-D-galactosidase in the grape flesh was purified over 83-folds through salting-out with $(NH_4)_2SO_4$ and a series of chromatographies employing Sephadex G-50, Octyl-Sepharose, Q-Sepha- rose, and Biogel P-100. The enzyme was a monomer of 45 kDs as determined through SDS-PAGE and Sephacryl S-200 chromatography. The purified enzyme showed a preference of $\alpha$-D-galactose to $\beta$-D-galactose as a substrate about 5.4 times. Sulfhydryl specific reagents such as N-ethylmaleimide and iodoacetamide significantly inhibited the enzyme activity to the extents of 48 and 52% of its initial activity, respectively. The optimumpH range of $\alpha$-D-galactosidase was around 6.5-7.0. The enzyme activity increased by 46% in the presence of 1mM $Fe^{2+}$.
WB were screening the stele and the cortex of the ginseng roots (Panax ginseng C.A.Meyer) on the exo-0-glycosylhydrolase activities during vegetation period of 1999 year. The following p-nitrophenylglycosides were used to test exe-0-glycosylhydrolase activities: $\alpha$- and $\beta$-D-galactopyranosides,$\alpha$- and $\beta$-D-glucopyranosides, $\alpha$- and $\beta$-D-mannopyranosides, N-acetyl-$\beta$-D-glucosaminide, $\alpha$- and $\beta$-D-xylopyranosides $\alpha$- L-rhamnopyranoside, $\beta$-D-glucuronide, $\beta$-D-galacturonide, $\beta$-L-,$\alpha$-L- and $\beta$-D-fucopyranosides, $\alpha$-L-arabinopyranoside. Only $\beta$-D-galactosidase, $\alpha$-L-mannosi-dase , N- acetyl- ${\beta}$-D-slucosarninidase, $\alpha$-D-galacto sidase, $\alpha$-L-arabinosidase, and $\beta$-D-fuco sidase were found in both partsof ginseng roots. Their contents during the vegetation period were shown to differ considerably, being dependent not only on plant development stage but on plant tissue and environmental conditions too.
A strain YB-4 producing the extracellular $\alpha$-galactosidase was isolated from soil, and has been identified as Streptomyces sp. on the basis of its cultural, morphological and physiological properties. The partially purified $\alpha$-galactosidase was most active on paranitrophenyl-$\alpha$-D-galactopyranoside at pH 6.0 and 6$0^{\circ}C$. The enzyme retained 90% of its maximum activity between pH 4.0 and pH 10.0 after pre-incubation for 1 h. The enzyme was able to hydrolyze oligomeric substrates such as melibiose, raffinose and stachyose to liberate galactose residue, indicating that the $\alpha$-galactosidase of Steptomyces sp. YB-4 hydrolyzed $\alpha$-1,6 linkage.
Glycosidase activities in the grape flesh (Marguerite) were assayed, and the order of activity was marked as follows: ${\alpha}$-D-galactosidase>${\alpha}$-D-mannosidase>${\alpha}$-D-glucosidase>${\beta}$-D-galactosidase>${\beta}$-D-glucosidase. Of these glycosidases, ${\alpha}$- and ${\beta}$-D-galactosidases were prominently expressed by the treatment of gibberellic acid, resulting in 56 and 238% increase of activity, respectively. Most of ${\alpha}$-D-galactosidase was found in the flesh texture, and the activity increase by gibberellic acid occurred mostly in this tissue. The increase in ${\alpha}$-D-galactosidase activity was dependent on the concentration of gibberellic acid treated, showing a positive correlation. Gibberellic acid affected the content of total protein in the grape flesh, 49% increase by 75 ppm treatment. Above this concentration, higher gibberellic acid level did not influence the protein expression. Specific activity of the ${\alpha}$-D-galactosidase still increased, showing 24% increase in activity. Grape flesh subjected by gibberellic acid (100 ppm) resulted in the increased activity against a natural substrate, stachyose, showing 55% increase in activity from the grapes treated with 100 ppm of gibberellic acid. Other natural substrates, such as melibiose and raffinose, were also considerably hydrolyzed, and the extent was similar to that of stachyose hydrolysis. During postharvest storage, ${\alpha}$-D-galactosidase activity in the grape flesh increased by 51% after 20 days and then declined slowly.
An $\alpha$-D-galactosidase ($\alpha$-D-galactoside galactohydrolase, EC 3. 2. 1. 22) from earthworm was purified by affinity chromatography using N-$\varepsilon$-aminocaproyl-$\alpha$-D-galactopyranosylamine coupled to sepharose and its properties were examined. The specific activity of the purified enzyme, tested with p-nitrophenyl-$\alpha$-D-galactopyranoside as substrate, was 314 units/mg protein, representing an 122-fold purification of the original crude extract. The final preparation obtained from by Sephadex G-25 chromatography showed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was determined to be 48,000 by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The purified galactosidase was showed maximum activity at pH 4.5 and 4$0^{\circ}C$, and was stable in the pH and temperature ranges from 4.0 to 5.5 and 30 to 5$0^{\circ}C$, respectively. The enzyme activity was inhibited by Zn2+, Hg2+ and Co2+. When the purified $\alpha$-galactosidase treated to guar gum for 6 hour, gel-promoting property was increased. It was clear that enzymatic elimination of galactose from guar gum by purified $\alpha$-galactosidase would lead to a significant increase in gelation ability.
A bacterium producing the $\alpha$-galactosidase was isolated from Korean soybean paste. The isolate YB-42 has been identified as Bacillus licheniformis on the basis on its 16S rRNA sequence, morphology and biochemical properties. The $\alpha$-galactosidase activity was detected in both the culture supernatant and the cell extract of B. licheniformis YB-42. The partially purified extracellular $\alpha$-galactosidase was obtained from the culture supernatant by DEAE-Sepharose column and Q-Sepharose column chromatography. The enzyme showed the maximum activity for hydrolysis of para-nitrophenyl-$\alpha$-D-galactopyranoside (pNP-$\alpha$Gal) at pH 6.5 and $45^{\circ}C$. It was able to hydrolyze oligomeric substrates such as melibiose, raffmose and stachyose to liberate galactose residue, indicating that the a-galactosidase of B. licheniformis YB-42 hydrolyzed $\alpha$-1,6 linkage. The hydrolyzing activity of $\alpha$-galactosidase for both pNP-$\alpha$Gal and melibiose was dramatically decreased by galactose. Both glucose and mannose inhibited the activity for pNP-$\alpha$Gal less than galactose.
[ ${\alpha}$ ]Galactosidase was purified from a culture filtrate of Mortierella sp. by CM-sephadex C-50, and subsequent Sephadex G-100 column chromatography. The final preparation thus obtained showed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was determined to be 56 kDa. $Gal^3Man^4$ ($6^3$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannotetraose), $Gal^{2,3}Man_5$ ($6^{2,3}$-di-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannopentaose), $Gal_2Man_3$ ($6^2$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannotriose), $Gal^2Man_6$ ($6^2$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannohexaose) and $Gal^2Man_5$ ($6^2$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannopentaose), prepared from 3 types of microbial ${\beta}$-mannnanase, were used as substrates. $Gal^3Man_4$ and $Gal^2Man_3$ had a stubbed ${\alpha}$-galactosyl residue on the $2^{nd}$ and $3^{rd}$ mannose from the reducing end of mannotetraose and mannotriose, thus ${\alpha}$-galactosidase showed a preference for stubbed ${\alpha}$-galactosyl residue. ${\alpha}$-Galactosidase hydrolyzed $Gal^3Man_4$ more rapidly than $Gal^2Man_3$. However, ${\alpha}$-galactosidase hardly acted on $Gal^{2,3}Man_5$, $Gal^2Man_6$ or $Gal^2Man_5$. The enzyme hydrolyzed melibiose to galactose and glucose, raffinose to galactose and sucrose, and also stachyose to galactose and raffinose.
Nam, Ki Ho;Jang, Mi Soon;Park, Hee Yeon;Koneva, Elena
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
/
v.47
no.5
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pp.516-521
/
2014
A bacterium producing ${\alpha}$-galactosidase (${\alpha}$-$\small{D}$-galactoside galactohydrolase, EC 3.2.1.22) was isolated. The isolate, KM-1 was identified as Bacillus coagulans based on its 16S rRNA sequence, morphology, and biochemical properties. ${\alpha}$-Galactosidase activity was detected the culture supernatant of B. coagulans KM-1. The bacterium showed the maximum activity for hydrolyzing para-nitrophenyl-${\alpha}$-$\small{D}$-galactopyranoside (pNP-${\alpha}Gal$) at pH 6.0 and $50^{\circ}C$. It hydrolyzed oligomeric substrates such as melibiose, raffinose, and stachyose liberating a galactose residue, indicating that the B. coagulans KM-1 ${\alpha}$-galactosidase hydrolyzed ${\alpha}$-1,6 linkage. The results suggest that the decreased stachyose and raffinose contents in fermented soybean meal are due to the ${\alpha}$-galactosidase activity.
To elucidate enzymatic properties of a-glactosidase (EC 3.2.1.22) from Asp. niger, a-galactosidase from wheat bran culture was purified by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography and gel filtration. And then its enzymatic propeties were investigated. The highest level of $\alpha$-galactosidase activity was obtained when Asp. niger was grown on wheat bran medium at $30^{\circ}C$ for 96 hours. The $\alpha$-galactosidase was purified by 23.7 fold by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography on DEAE-Celluose and Sephadex A-50, and gel filtration on Sephadex G-150 and its specific activity was 1,229 Unitslmg protein and the yield was 14% of the total activity of wheat bran culture. The purified $\alpha$-galactosidase was found to be homogeneous by polyacrylamide gel electrophoresis and HPLC. The $\alpha$-galactosidase was a tetrameric glycoprotein which consisted of identical subunits with molelcular weight of 28,000 each by SDS-PAGE and isoelectric point was determined analytical isoelectric focusing to be pH 4.6. The optimal temperature and pH for the $\alpha$-galactosidase activity were $40^{\circ}C$ and pH 6.5, respectively, and 54% of its activity was lost by heating at $60^{\circ}C$ for 10 mins, It was appeared to have higher affinty to raffinose than to stachyose. The K, value and activation energy of $\alpha$-galactosidase were 5.0 mM and 8.515 Kcal per mole for p-nitrophenyl- $\alpha$--D-galactopyranoside, respectively.
To elucidate enzymatic properties of $\alpha$-galactosidases (EC3, 2, 1, 22) from germinated soybean and Aspergillus niger changes in the enzyme activities and oligosaccharide contents during germination of soybean were determined and $\alpha$-galactosidases from germinated soybean and wheat bran culture of Aspergillus niger were purified by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography and gel filtration. Their chemical and enzymatic properties were investigated and the results obtained were summarized as follows : 1. $\alpha$-Galactosidase activity of soybean was maximized when it was germinated at $25^{\circ}C$ for 120 hours. And raffinose and stachyose in soybean were decomposed completely after 96 hours and 120 hours of germination, respectively. 2. The highest level of $\alpha$-Galactosidase activity was obtained when Aspergillus niger was grown on wheat bran medium at $30^{\circ}C$ for 96 hours. 3. Soybean $\alpha$-galactosidase was purified by 6.6 fold by ammonium slufate fractionation, ion exchange chromatography on DEAE-Cellulose and Sephadex A-50., and gel filtration on Sephadex G-150. Its specific activity was 825 units/mg protein and the yield was 2.5% of the total activity of crude extracts. 4. Aspergillus niger $\alpha$-galactosidase was purified by 23.7 fold. Its specific activity was 1,229 units/mg protein and the yield was 14% of the total activity of wheat bran culture. 5. The purified $\alpha$-galactosidases of soybean and Aspergillus niger were found to be homogeneous by polyacrylamide gel electrophoresis and by HPLC. 6. Chemical properties of the purified $\alpha$-galactosidases were : 1) The soybean $\alpha$-galactosidase was monomeric and its molecular weight was estimated to be 30,000 by SDS-PAGE whereas the Aspergillus niger $\alpha$-galactosidase was a tetrameric glycoprotein which consisted of identical subunits with molecular weight of 28,000 each.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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