Preparation of Poly(L-lactic acid) Scaffolds by Melt Extrusion Foaming

용융 압출 발포에 의한 폴리락틱산 지지체 가공

  • Lee Jong Rok (Center for Advanced Functional Polymers, Dept. of Polymer Sci. and Eng., Dankook University) ;
  • Kang Ho-Jong (Center for Advanced Functional Polymers, Dept. of Polymer Sci. and Eng., Dankook University)
  • 이종록 (기능성 고분자 신소재연구센터, 단국대학교 고분자공학과) ;
  • 강호종 (기능성 고분자 신소재연구센터, 단국대학교 고분자공학과)
  • Published : 2005.03.01

Abstract

Melt extrusion foaming process for the preparation of poly(L-lactic acid) (PLLA) scaffolds was carried out and the effects of foaming conditions on the pore structure of PLLA scaffolds and their mechanical properties were investigated. The porosity and mechanical properties of fabricated scaffolds were compared with the scaffolds obtained from the salt leaching method as well. It was found that the optimum pore structure was achieved when the PLLA melt was kept in extruder for the maximum decomposition time of blowing agent. In order to maintain the proper scaffolds structure, the blowing agent content should be less than $10\;wt\%$. It can be concluded that melt extrusion foaming process allows for the production of scaffold having higher mechanical properties with reasonable pore size and open cell structure for hard tissue regeneration even though it has less porosity than scaffolds made by salt leaching process.

용융 압출 발포에 의하여 폴리락틱산(PLLA) 지지체를 제조하고 발포 조건이 지지체의 구조와 기계적 특성에 미치는 영향을 살펴보고 이를 염 추출법에 의하여 제조된 지지체와 비교하였다. 발포제를 함유한 PLLA 용융체가 압출기 및 다이에서 체류하는 시간이 발포제의 무게를 최대로 감소시키는 시간과 일치하여야 최적의 PLLA 지지체의 구조를 얻을 수 있음을 확인하였다. PLLA지지체의 구조를 유지하기 위해서는 발포제의 함량을 $10\;wt\%$ 이하로 조절해야 하며 PLLA 지지체의 다공도는 PLLA의 압출기에서의 체류시간에 가장 큰 영향을 받음을 알 수 있었다. 용융 압출 발포에 의하여 얻어진 지지체는 일반적으로 염 추출법에 의하여 제조된 지지체보다 다소 낮은 다공도를 갖지만 발포 조건의 조절에 의하여 적절한 다공 크기와 다공의 연결성을 가지며 동시에 우수한 기계적 특성을 가져 경조직 재생(hard tissue regeneration)용으로 사용이 가능할 것으로 사료된다.

Keywords

References

  1. D. W. Hutmacher, Biotechnology, 12, 689 (1994) https://doi.org/10.1038/nbt1094-994
  2. R. Langer and J. P. Vacanti, Science, 260, 920 (1993)
  3. L. G. Cima, J. P. Vacanti, D. Ingber, D. Mooney, and R. Langer, J. Biomech. Eng., 113, 143 (1991)
  4. D. L. Wise, Biopolymeric Controlled System, Vol. 1, CRS Press, Boca Raton, Ch. 8, 1985
  5. Y. Bae, L. G. Cima, D. Ingber, J. P. Vacanti, and R. Langer, J. Biomed. Mater. Res., 27, 183 (1993)
  6. S. Gogolewski and A. J. Pennings, Colloid Polym. Sci., 261, 477 (1983)
  7. A. G. Mikos, A. J. Sarakinos, S. M. Leite, J. P. Vacanti, and R. Langer, Biomaterials, 14, 323 (1993)
  8. A. G. Mikos, A. J. Thorsen, L. A. Czerwonka, Y. Bae, R. Langer, D. N. Winslow, and J. P. Vacanti, Polymer, 35, 1068 (1994) https://doi.org/10.1016/0032-3861(94)90953-9
  9. L. E. Freed, J. C. Marquis, A. Nohria, J. Emmanual, A. Mikos, and R. Langer, J. Biomed. Mater. Res., 11, 27 (1993)
  10. Y. S. Nam and T. G. Park, Biomaterials, 20, 1783 (1999)
  11. L. D. Harris, B. S. Kim, and D. J. Mooney, J. Biomed. Mater. Res., 42, 396 (1998)
  12. K. Whang, C. H. Tomas, K. E. Healy, and G. Nuber, Polymer, 36, 837 (1995)
  13. K. P. Andriano, Y. Tabata, Y. Ikada, and Y. Heller, J. Biomed. Mater. Res., 48, 602 (1999)
  14. A. Park, B. Wu, and L. G. Griffith, J. Biomater. Sci. Polym. Ed., 9, 89 (1998)
  15. T. Hayashi, Prog. Polym. Sci., 19, 663 (1994)
  16. K. P. Andriano, T. Pohojonen, and P. Tormala, J. Appl. Biomater., 5, 133 (1994)
  17. C. M. Agrawal, G. G. Niederauer, and K. A. Athanasiou, Tissu Eng., 1, 24 (1995)
  18. M. E. Gomes, A. S. Ribeiro, P. B. Malafaya, R. L. Reis, and A. M. Cunha, Biomaterials, 22, 883 (2001) https://doi.org/10.1016/S0142-9612(00)00074-0
  19. A. J. Salgado, M. E. Gomes, A. Chou, O. P. Coutinho, R. L. Reis, and D. W. Hutmacher, Mater. Sci. Eng., C20, 27 (2002)
  20. M. E. Gomes, J. S. Godinho, D. Tchalamov, A. M. Cunha, and R. L. Reis, Mater. Sci. Eng., C20, 19 (2002)
  21. J. F. Mano, C. M. Vaz, S. C. Mendes, R. L. Reis, and A. M. Cunha, J. Mater. Sci. Mater. Med., 10, 857 (1999)
  22. R. C. Thomson, M. J. Yaszemski, J. M. Powers, and A. G. Mikos, J. Biomater. Sci. Polym. Ed., 7, 23 (1995)