Immunoglobulins (IgY) were isolated from egg yolk of hens immunized with bovine serum albumin(BSA). The stability of anti-BSA IgY against heat and pH was investigated. Antibody activity was measured by enzyme linked immunosorbent assay. IgY was relatively heat-stable and most of the antibody activity remained after heating up 65$^{\circ}C$ for 30 minutes. IgY was stable at pH 5-11. However, inactivation of IgY was observed below pH 4, or above pH 12. Inactivation of IgY proceeded rapidly at low pHs(pH 2-3). Most of the antigen binding activity was lost at low pHs probably because of some conformational changes.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.28
no.2
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pp.438-443
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1999
A livetin solution(LS) containing yolk immunoglobulins(IgY) was separated by treating the egg yolk with natural gum, carrageenan. Carrageenan has been used as a food ingredient. Relative absorbance of IgY LS after proteolysis was investigated. IgY LS was fairly stable to pepsin digestion at pH 3.0. However, IgY LS appeared to be susceptible to pepsin digestion at pH 2.0, showing 18% of relative absorbance and complete breakdown H chain after 30 min exposure. Relative absorbance of IgY LS was considerably high after exposure to trypsin and chymotrypsin for 8 hr. IgY LS showed especially good stability to chymotrypsin digestion.
Yolk immunoglobulins (yIgG) from hen's egg were purified. To investigate the stability of yIgG to digestive enzymes, the changes of antigen binding activities (ABC) after in vitro proteolysis were examined by competitive ELISA. After 30 min exposure to pepsin, the ABC of yIgG was lost. However, comparing with native yIgG, the ABC of pepsin digested yIgG was decreased, but considerable amount of ABC was remained after 30 min exposure to pepsin in 50% saccharose solution. Therefore, the stability of yIgG to pepsin digestion was improved by the addition of saccharose to yIgG solution. The ABC of yIgG was considerably remained after exposure to trypsin and chymotrypsin for 8 hr. YIgG showed especially good stability to chymotrypsin proteolysis.
Sanaullah Sajid;Sajjad ur Rahman;Mashkoor Mohsin;Zia ud Din Sindhu
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.50
no.3
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pp.430-435
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2022
The infectious bursal disease (IBD) is a highly contagious and acute poultry disease caused by Birnavirus. However, the vaccination is the only disease prevention, but several factors impeded vaccine development. Thus, a need for time to develop a novel technique for managing and treating respiratory diseases in poultry birds. Passive immunization is a hope and a possible alternative used in birds to meet this need. The current research attempted to produce egg yolk-based polyclonal antibodies against the IBD virus. The benefits of IgY include ease of extraction, lack of reaction with mammalian Fc receptors, and low production cost. Commercial layers were immunized with inactivated IBD virus subcutaneously according to the treatment regimen. The eggs were gathered daily, and yolk antibodies were extracted with the ammonium sulfate precipitation technique. The use of an indirect hemagglutination test demonstrated that IgY was IBD-specific. Until the end of the experiment, the specific IgY immunoglobulins did not lose activity when stored at 4℃. The specific immunoglobulin (IgY) treated challenged birds were demonstrated 92% recovery in comparison to the control group. The study implies that the IBDV specific IgY is an easily prepared and rich source of antibodies and offers an alternative therapeutic agent to cure IBD-infected birds.
Proceedings of the Korea Society of Poultry Science Conference
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2003.07b
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pp.37-54
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2003
It has been recognized that the hen. like its mammalian counterparts. provides young chicks with antibodies as protection against hostile invaders. This system facilitates the transfer of specific antibodies from serum to egg yolk. and provides a supply of antibodies called immunoglobulin Y(IgY) to the developing embryo and the hatched chick. The protection against pathogens that the relatively immuno-incompetent newly hatched chick has. is through transmission of antibodies from the mother via the egg. Egg yolk. therefore. can be loaded with a large amount of IgY against pathogens which can immobilize the existing or invading pathogens during the embryo development or in day-old chicks. Thus. the immunization of laying hens to various pathogens results in production of different antigen-specific IgY in eggs. Egg yolk contains 8~20 mg of immunoglobulins (IgY) per $m\ell$ or 136~340 mg per yolk suggesting that more than 30 g of IgY can be obtained from one immunized hen in a year. By immunizing laying hens with antigens and collecting IgY from egg yolk. low cost antibodies at less than $10 per g compared to more than $20.000 per g of mammalian IgG can be obtained. This IgY technology opens new potential market applications in medicine. public health veterinary medicine and food safety. A broader use of IgY technology could be applied as biological or diagnostic tool. nut-raceutical or functional food development. oral-supplementation for prophylaxis. and as pathogen-specific antimicrobial agents for infectious disease control. This paper has emphasized that when IgY-loaded chicken eggs are produced and consumed. the specific antibody binds. immobilizes and consequently reduces or inhibits the growth or colony forming abilities of microbial pathogens. This concept could serve as an alternative agent to replace the use of antibiotics. since today. more and more antibiotics are less effective in the treatment of infections. due to the emergence of drug-resistant bacteria.
The specificity of sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) to detect Salmonella in milk was determined in this study. The antibodies used in sandwich ELISA were egg yolk immunoglobulin G (IgY) obtained after immunization of hen with outer membrane protein (OMP) fraction from Salmonella typhimurium and rabbit IgG obtained after immunization of rabbit with the purified OMP with the molecular weight of 40,000. The immunoblot assay showed that the IgY reacted strongly with OMP with the molecular weight of 6,000 and the rabbit IgG reacted strongly with OMP with the molecular weights of 40,000, 35,000, and 6,000 from the bacteria including Salmonella which belongs to Enterobacteriaceae. The IgY and rabbit IgG also reacted with other proteins from Salmonella typhimurium in immunoblot assay. Competitive ELISA showed that IgY showed specifity to react with two strains of Salmonella typhimurium and Salmonella cholerasuis but not with Escherichia coli and Yersinia enterocolitica. Two strains of Salmonella typhimurium added to UHT milk showed the highest absorbance of all the bacteria used in the sandwich ELISA. Some strains of Salmonella cholerasuis showed higher absorbances than non-Salmonella bacteria.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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