A new moderate thermophilic bacterial strain DG-22 which produces thermostable xylanase was isolated from a timber yard soil in Kyungju, Korea. On the basis of morphological, biochemical and phylogenetic studies the new isolate was identified as a Paenibacillus species. Production of xylanase in this strain was strongly induced by adding xylan to the growth medium and repressed by glucose or xylose. No cellulase activity was detected. The temperature and pH for optimum activity were 8$0^{\circ}C$ and 5.0-5.5, respectively. The crude xylanase was stable at $60^{\circ}C$ and retained 60% of initial activity after 2h at $70^{\circ}C$. Zymogram analysis of the culture supernatant showed two xylanase active bands with molecular masses of 22 and 30 kDa.
Bacillus licheniformis was grown in minimal nutrient medium containing 1% (w/v) of distillers dried grain with soluble (DDGS), palm kernel meal (PKM), wheat bran (WB) or copra meal (CM), and the enzyme activity of endoglucanase, ${\beta}$-glucosidase, xylanase and reducing sugars was measured to investigate a possibility of using cost-effective agricultural residues in producing cellulolytic and hemicellulolytic enzymes. The CM gave the highest endoglucanase activity of 0.68 units/mL among added substrates at 48 h. CM yielded the highest titres of 0.58 units/ml of ${\beta}$-glucosidase, compared to 0.33, 0.23, and 0.16 units/mL by PKM, WB, and DDGS, respectively, at 72 h. Xylanase production was the highest (0.34 units/mL) when CM was added. The supernatant from fermentation of CM had the highest reducing sugars than other additional substrates at all intervals (0.10, 0.12, 0.10, and 0.11 mg/mL respectively). It is concluded that Bacillus licheniformis is capable of producing multiple cellulo- and hemicellololytic enzymes for bioethanol production using cost-effective agricultural residues, especially CM, as a sole nutrient source.
A filamentous microorganism was isolated from completely rotten wood for the production of cellulolytic enzyme. The Trichoderma sp. FJ1 produced a large amount of cellulolytic enzymes, such as CMC, xylanase, ${\beta}-glucosidase$, and avicelase. For the production of the enzymes, when cellulolsic wastes were used as carbon sources of strain FJ1, rice straw showed higher enzyme activities than sawdust and pulp. The activities of CMC, xylanase, ${\beta}-glucosidase$, and avicelase were 2.95, 5.89, 0.45, and 0.12 U/ml in use of rice straw, respectively. To enhance production of the enzymes, the mixture substrate of rice straw and commercial cellulosic materials was investigated as carbon sources. The highest activities of CMCase, ${\beta}-glucosidase$, and avicelase were found in the mixture of rice straw and avicel, particularly rice straw:avicel (50:50), and the highest xylanase was obtained in the mixture ratio of 71:29. Bacto peptone addition of 0.1% showed enhanced production of the cellulolytic enzymes in which the activities of CMCase, xylanase ${\beta}-glucosidase$, and avicelase were 19.23, 27.18, 1.28, and 0.53 U/ml, respectively. The production of the enzymes using rice straw was efficiently induced in present of avicel and pulp containing high content of cellulose. Consequently, the filamentous microorganism, strain FJ1 utilized various cellulosic wastes as carbon sources and cellulases productivities were excellent compared to those of others strains reported previously, suggesting that the strain FJ1 will be expected as a favorable candidate for biological saccharification of cellulosic wastes in further.
Xylanase is a class of enzymes that hydrolyze the linear polysaccharide ${\beta}$-1,4-xylan into xylose. This enzyme is applied in the process of paper making and may be used for the process of biofuel production in the future. The Paenibacillus donghaensis JH8, isolated from Donghae deepsea sediment and reported as a novel bacterium, was known to degrade xylan and its xylanase was characterized in this study. The enzyme was maximally induced in the presence of 0.1% xylan. The production of xylanase was started at early logarithmic phase and reached about 55 miliunit at stationary phase of growth. The optimal temperature and pH of extracellular xylanase were found to be $40^{\circ}C$ and pH 6.0, respectively. The activity of xylanase was inhibited by the presence of $Ca^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Fe^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Al^{3+}$ or EDTA, and activated by $K^+$, $Ag^+$ or DTT. This xylanase was stable at $40^{\circ}C$ for 120 min, but lost almost their activity in 30 min at $60^{\circ}C$. Zymography analysis of concentrated culture supernatant revealed one major band at 42 kDa and two faint bands at 68 and 120 kDa.
The characterization of a partially purified, cellulase-free, thermostable alkaline xylanase from thermoalkalophilic Bacillus sp. JB-99 was investigated. The xylanase production was the highest when birchwood xylan was added to a medium containing finely powdered rice bran, showing 4,826 IU$ml^-1$ of activity for 15 h of incubation. The partially purified xylanase exhibited an optimum temperature and pH at $70^C{\circ}$ and 10, respectively. The enzyme was stable at pH 5-11 at $50^C{\circ}$. The xylanase activity was strongly inhibited by $Hg^2+$, while dithiothreitol, cysteine, and ${\beta}$-mercaptoethanol enhanced the activity.
A bacterial strain capable of hydrolyzing xylan and locust bean gum (LBG) was isolated from the Saemangeum tideland of Korea. Based on the biochemical properties and the 16S rRNA gene sequence, the isolate YB-30 was identified as Bacillus subtilis. Xylanase productivity was increased effectively when B. subtilis YB-30 was grown in the presence of wheat bran, while mannanase productivity was increased drastically when grown in the presence of konjac or LBG. Particularly, maximum mannanase and xylanase activities were detected in the culture filtrate of media containing 3.5% konjac and 1% wheat bran. Both enzyme productivities reached maximum levels in the stationary growth phase. The culture filtrate exhibited the highest activity at 60℃ and pH 6.0 for mannanase and at 55℃ and pH 5.5 for xylanase, respectively. Both enzymes were not stable at high temperatures and xylanase was less stable than mannanase. In addition, wheat bran was hydrolyzed to liberate reducing sugar to a greater extent than rice bran by the culture filtrate because the wheat bran contained more arabinoxylan than the rice bran. Hence, xylanase and mannanase produced by B. subtilis YB-30 have a potential use as feed additive enzymes.
Among the new yeast strains which were isolated from soils by incubating in the xylan containing minimal medium at 3$0^{\circ}C$, one strain(XB-33) was finally selected by the results of extracellular xylanase production test. The characteristics of XB-33 was almost consistent with those of the Cryptococcus ater. The formation of xylanase activity was induced by xylan and repressed by xylose or glucose. The xylanase was partially purified from the culture supernatant with DEAE-Sephadex A5O chromatography. The enzyme had a pH optimum for activity at 5.0 and its stability range was pH 5-7. The temperature optimum was at 5$0^{\circ}C$, but the enzyme activity was greatly lost by heating at 7$0^{\circ}C$ for 60 minutes. The hydrolysis products from xylan by crude enzyme detected by TLC, were xylose and n series of higher oligosaccharides. The Km value of xylanase was 20 (mg/ml).
Park, Yang-Sun;Gang, Seong-U;Lee, Jin-Seok;Kim, Seung-Uk
한국생물공학회:학술대회논문집
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2001.11a
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pp.337-340
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2001
The production of xylanase from Aspergillus niger mutant in SSF was optimized by' using statistical experimental designs. An inoculum size of $5{\times}10^5$ spores/g. initial moisture content of 65 %. cultivation time of 5 days and 10 times concentration of basal medium containing 50 times concentration of CSL were optimum for xylanase production ‘ Under the optimized conditions. the activity and productivity of xytanase obtained after 5 days of fermentation were 5.071 IU/gram of rice straw and 14.790 IU/l.h. respectively.
Lakshmi, G. Suvarna;Rajeswari, B. Uma;Prakasham, R.S.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.8
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pp.1084-1091
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2012
Xylooligosaccharides are functional foods mainly produced during the hydrolysis of xylan by physical, chemical, or enzymatic methods. In this study, production of xylobiose was investigated using oil palm empty fruit bunch fiber (OPEFB) as a source material, by chemical and enzymatic methods. Xylanase-specific xylan hydrolysis followed by xylobiose production was observed. Among different xylanases, xylanase from FXY-1 released maximum xylobiose from pretreated OPEFB fiber, and this fungal strain was identified as Aspergillus terreus and subsequently deposited under the accession Number MTCC- 8661. The imperative role of lignin on xylooligosaccharides enzymatic synthesis was exemplified with the notice of xylobiose production only with delignified material. A maximum 262 mg of xylobiose was produced from 1.0 g of pretreated OPEFB fiber using FXY-1 xylanase (6,200 U/ml) at pH 6.0 and $45^{\circ}C$. At optimized environment, the yield of xylobiose was improved to 78.67 g/100 g (based on xylan in the pretreated OPEFB fiber).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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