We present a high-throughput continuous cell separation chip using hydrodynamic dielectrophoresis (DEP) process. The continuous cell separation chip uses three planar electrodes in a separation channel, where the positive DEP cells are moved away from the central streamline while the negative DEP cells remain in the central streamline. In the experimental study, we use the mixture of viable (live) and nonviable (dead) yeast cells in order to obtain the continuous cell separation conditions. For the conditions of the electric fields frequency of 5MHz and the medium conductivity of $5{\mu}S/cm$, the fabricated chip performs a continuous separation of the yeast cell mixture at the varying flow-rate in the range of $0.1{\sim}{\mu{\ell}/min$.; thereby, resulting in the purity ranges of $95.9{\sim}97.3\%\;and\;64.5{\sim}74.3\%$ respectively for the viable and nonviable yeast cells. present chip demonstrates the constant cell separation performance for varying mixture flow-rates.
To determine whether the toxicity of Bacillus cereus would be seen in human cell lines and mice, we screened B. cereus B-38B, B. cereus B-50B, and B. cereus KCCM40935 for genes that coded for 5 enterotoxins using the polymerase chain reaction and cultivated them for 17 hr, by whose time they had grown to $10^7-10^8$ colony-forming units (CFU) per milliliter. Cell-free supernatant was added to make up 1% of the total reaction solution. Human cells from normal lung, lung carcinoma, embryonic kidney, and cervical adenocarcinoma cell lines were grown in culture. The cytotoxicity induced by adding the reaction solution was indicated by cell death rates of 0 to 70%, depending on the bacterial strain involved and the cell line. A lethality of 20% was observed when B. cereus cultures containing $10^7-10^8$ viable cells were administrated orally to mice. Therefore, the culture of B. cereus containing $10^7-10^8$ viable cells seems to have high cytotoxicity on human cell lines and lethality on mice.
오징어의 품질을 평가하기 위한 여러 항목 들이 있으나 현장에서 소비자 및 유통업자들의 경우 주관적인 관능평가에 의존하고 있으며 소비자의 어류 구매의사 결정에 부패취가 직접적인 영향을 미칠 수 있다. 따라서 관능적 평가를 입증 할 수 있는 과학적인 품질인자를 제시하고자 하였으며, 온도와 저장시간에 따른 상호관계를 분석하였다. 과학적 품질인자로는 TVC, Pseudomonas spp., pH, VBN 으로 선정하였으며 세 가지 온도 조건에서 보관하였다. 이취발생검지시점은 R-index를 이용해 측정하고 kinetic 모델링을 진행하였다. 모델링 결과 활성화 에너지는 이취발생검지 시간이 51.210 kJ/mol, TVC는 42.888 kJ/mol, Pseudomonas spp.는 50.283 kJ/mol, VBN은 72.594 kJ/mol, pH는 41.990kJ/mol 으로 나타났다. Pseudomonas spp., TVC, pH, VBN 순으로 이취발생검지 시간의 활성화 에너지에 근사하였으며, 특히 Pseudomonas spp.는 이취발생검지 시간의 활성화 에너지와 가장 유사하였다. 따라서 오징어의 이취발생 indicator는 이취발생시간과 가장 유사한 양상을 나타내는 Pseudomonas spp.로 판단 할 수 있었다.
균체 생산성 실험과 chitinase 생산성 실험을 비교해 볼 때, chitinase만을 생산하는 조건 에서는 배지성분에 chitin을 첨가해 주는 것이 좋으나, 해충 방제용으로 살균력을 증진시키기 위하여 균체량과 chitinase의 생성량 및 산업적, 경제적 사용이 용이한 배지를 고려할 때에는 쌀겨와 밀기울이 첨가된 배지가 좋은 배지임을 알 수 있었다. 또한 이 배지를 이용하였을 경우 균체는 1X$10^8$ cfu/g, chitinase는 370mU/g로 생산되었으며 생물검정결과 53-64%의 탁월한 살충효과를 확인 할 수 있었다.
막여과 약주의 저장 중 품질변화를 관찰하기 위하여 여러 가지 종류의 여과막으로 여과한 약주를 $25^{\circ}C$에서 50일간 저장하면서 약주의 pH, 적정산도, 탁도 및 총균수, 젖산균수, 효모수를 측정하였다. 비살균 약주는 저장 중 적정산도, 탁도, 생균수가 증가한 반면 pH는 감소하였다. 막여과 약주의 경우 적정산도와 탁도의 변화가 관찰되지 않았으며 약주내 미생물들이 관찰되지 않아 높은 저장성을 보여주었다. 키토산을 0.1% (w/v) 첨가하였을 경우에는 생균수의 급격한 감소현상을 나타내어 높은 살균력을 지니고 있음을 알 수 있었다.
For the probiotic feed production, aerobic liquid fermentation of pulverized food wastes was attempted with a yeast Kluyveromyces marxianus. After grinding finely, optimal fermentation conditions of the substrate was investigated by shaking culture. The most active growth of the yeast was shown at solid content of 10%. The proper addition of urea(0.5g/l), o-phosphate(0.4g/l), molasses(4g/l), and yeast extract (1g/1) increased cell growth rate and viable cell count. For optimizing, the nutrients were all added to substrate and fermentation was carried in 2 litre jar fermenter. For the stimulation of hydrolyzing enzyme excretion, mixed culture with Aspersillus oryzae was also conducted. In 12 hours of fermentation, viable cell count of the yeast Kluyveromyces marxianus amounted to the number of 1.4 $\times$10$^{10}$ /1 in the culture medium.
One hundred and eighty-seven water samples were collected from 23 of spring water, 2 of ground water, 1 of tap water in Pusan area and 3 of natural mineral waters. Total coliform group, fecal coliform, viable cell count and microflora were investigated to evaluate water quality of drinking water. The results were as follows: range and geometric mean value of total coliform and fecal coliform MPN's of spring water were 0~1,500/100 ml, 85/100 ml and 0~460/100 ml, 24/100 ml but coliform group was not detected in the samples of tap water and natural mineral water. Viable cell count of spring water, ground water and tap water were lower as 100 cell than the criteria for drinking water but that of natural mineral water was higher as 6.5X 10$^2$~7.4X 10$^3$ /ml. Predominant speces among the 219 strains isolated from the samples were 19.6% Aeromonas spp., 19.2% Enterobacteriaceae, 16% Acinetobacter spp. Especially, spring water and vessels were contaminated by Hafnia spp. and Providencia Spp, inhabitant of the oral cavity.
A classical technique to study somitic cell fate is to employ the cross-transplantation of quail somites into a chick host. The densely stained nucleoli of the quail cells makes it possible to assess the fate of the donor quail cells in the chick host. Classical somite transplantation techniques have been hampered by the necessity of a small opening in the chick eggshell, difficulty in hatching the offspring and interspecies post-hatch graft rejection. With the advent of transgenic chicken technology, it is now possible to use embryos from transgenic chickens expressing reporter genes in somite cross-transplantation techniques to remove any possibility of interspecies graft rejection. This report describes using a surrogate eggshell system in conjunction with transgenic chick:chick somitic cell cross-transplantation to generate viable chimeric embryos and offspring. Greater than 40% of manipulated embryos survive past 10 days of incubation, and ~80% of embryos successfully cultured past 10 days of incubation hatched to produce viable offspring.
구기자-맥문동 막걸리의 미생물 분포와 최적 저장 기간을 확립하기 위하여 먼저 구기자-맥문동 막걸리를 제조한 후 $4^{\circ}C$와 $20^{\circ}C$에 저장하면서 효모, 총 세균 그리고 젖산균의 생균 수 변화를 조사하였다. 발효가 완료되어 $4^{\circ}C$에서 15일간 저장하는 동안 효모 수는 큰 변화가 없었다. 하지만 30일간 저장한 후에는 약 62%가 감소되었다. $20^{\circ}C$에서 수행한 저장 실험에서는 15일간 저장한 후 초기 효모균수의 87%가 감소하였으며 30일간 저장한 후에는 약 95.2%가 감소되었다. 구기자-맥문동 막걸리의 DGGE 분석에 의해 S. cerevisiae와 미동정의 Saccharomyces sp.가 동정되었는데 $20^{\circ}C$에서 저장하였을 때Saccharomyces sp.가 더 빨리 사멸하였다. 저장 기간 중 총 세균 수와 젖산균의 변화 양상은 유사하였다. $4^{\circ}C$에서 저장 하였을 때 저장 15일 시점에서 총 세균 수는 약 64%가 감소하였으나 그 이후 저장 30일까지 총 세균수의 변화는 크게 없었다. $20^{\circ}C$에서 저장하였을 경우에는 초기 세균 수가 저장 15일 시점에서 총 세균수의 약 95%가 감소하였으며 그 이후 저장 30일 시점까지 총 세균수는 크게 변화하지 않았다. DGGE분석을 통해 발효 개시 시점에서는 W. cibaria가 우점균이었다가 점차 L. fermentum과 P. acidilactici가 증가하여 저장 기간 동안 이들이 우점균으로 존재 함을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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