Biomass is originally photosynthesized from inorgainic compounds such as $CO_2$, minerals, water and solar energy. Recent studies have shown that anaerobic bacteria have the ability to convert recalcitrant biomass such as cellullosic or chitinoic materials to useful compounds. The biomass containing agricultural waste, unutilized wood and other garbage is expected to utilize as feed, food and fuel by microbial degradation and other metabolic functions. In this study we isolated several anaerobic, cellulolytic and chitinolytic bacteria from rumen fluid, compost and soil to study their related enzymes and genes. The anaerobic and cellulolytic bacteria, Clostridium thermocellum, Clostridium stercorarium, and Clostridium josui, were isolated from compost and the chitinolytic Clostridium paraputrificum from beach soil and Ruminococcus albus was isolated from cow rumen. After isolation, novel cellulase and xylanase genes from these anaerobes were cloned and expressed in Escherichia coli. The properties of the cloned enzymes showed that some of them were the components of the enzyme (cellulase) complex, i.e., cellulosome, which is known to form complexes by binding cohesin domains on the cellulase integrating protein (Cip: or core protein) and dockerin domains on the enzymes. Several dockerin and cohesin polypeptides were independently produced by E. coli and their binding properties were specified with BIAcore by measuring surface plasmon resonance. Three pairs of cohesin-dockerin with differing binding specificities were selected. Two of their genes encoding their respective cohesin polypeptides were combined to one gene and expressed in E. coli as a chimeric core protein, on which two dockerin-dehydrogenase chimeras, the dockerin-formaldehyde dehydrogenase and the dockerin-NADH dehydrogenase are planning to bind for catalyzing $CO_2$ reduction to formic acid by feeding NADH. This reaction may represent a novel strategy for the reduction of the green house gases. Enzymes from the anaerobes were also expressed in tobacco and rice plants. The activity of a xylanase from C. stercorarium was detected in leaves, stems, and rice grain under the control of CaMV35S promoter. The digestibility of transgenic rice leaves in goat rumen was slightly accelerated. C. paraputrificum was found to solubilize shrimp shells and chitin to generate hydrogen gas. Hydrogen productivity (1.7 mol $H_2/mol$ glucos) of the organism was improved up to 1.8 times by additional expression of the own hydrogenase gene in C. paraputrficum using a modified vector of Clostridiu, perfringens. The hydrygen producing microflora from soil, garbage and dried pelletted garbage, known as refuse derived fuel(RDF), were also found to be effective in converting biomass waste to hydrogen gas.
Rice is one of the most important cereal crops as a model plant for functional genomics of monocotyledons and usually transformed using Agrobacterium tumefaciens. However, the transformation's process using previous method is still time consuming and uneconomical, low efficiency. In this study, we established a new method by modifying the general Agrobacterium protocol especially in the infection and co-cultivation, Agrobacterium elimination, infected calli's selection steps using liquid media. We directly inoculated Agrobacterium containing a ZjLsL gene under the control of constitutive promoter into the 1- to 3-week-old rice calli derived from mature seeds. After 3 days of co-cultivation, the infected calli were transferred onto liquid media of Agrobacterium elimination and calli's selection for 3 days. The calli were transferred to calli's growth solid media for 14 days and then the calli transferred to shoot induction and root induction media. Putative transformants were initially selected on the medium containing phosphinothricin, and the PAT protein verified by PAT strip test. This method in this study would lead to reduction of substantial labor and time to generate transgenic plants.
Oh, Sung-Dug;Park, Soo-Yun;Chang, Ancheol;Lim, Myung-ho;Park, Soon Ki;Suh, Sang Jae
Korean Journal of Breeding Science
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v.50
no.4
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pp.406-414
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2018
This study was conducted to develop environmental risk assessments and biosafety guides for insect-resistant genetically modified rice in an LMO (Living Modified Organism) isolation field. In the LMO quarantine area of Kyungpook National University, the species diversities and population densities of non-target insects found on insect-resistant genetically modified rice (Bt-T), rice resistant to Cnaphalocrocis medinalis, and non-GM rice (Dongjin-byeo and Ilmi-byeo) were investigated. The Bt-T plants were, therefore, evaluated under field conditions to detect possible impacts on above ground insects and spiders. In 2016 and 2017, the study compared transgenic rice and two non-GM reference rice, namely Dongjin-byeo and Ilmi-byeo, at Gunwi. A total of 9,552 individuals from 51 families and 11 orders were collected from the LMO isolation field. From the three types of rice fields, a total of 3,042; 3,212; and 3,297 individuals from the Bt-T, Dongjin-byeo, and Ilmi-byeo were collected, respectively. There was no difference between the population densities of the non-target insect pests, natural enemies, and other insects on the Bt-T compared to non-GM rice. The data on insect species population densities were subjected to principal component analysis (PCA) without distinguishing between the three varieties, namely GM, non-GM, and reference cultivar, in all cultivation years. However, the PCA clearly separated the samples based on the cultivation years. These results suggest that insect species diversities and population densities during plant cultivation are determined by environmental factors (growing condition and seasons) rather than by genetic factors.
Glutathione reductase (GR, E.C. 1.6.4.2) is an important enzyme that reduces glutathione disulfide (GSSG) to a sulfydryl form (GSH) in the presence of an NADPH-dependent system. This is a critical antioxidant mechanism. Owing to the significance of GR, this enzyme has been examined in a number of animals, plants, and microbes. We performed a study to evaluate the molecular properties of GR (OsGR) from rice (Oryza sativa). To determine whether heterologous expression of OsGR can reduce the deleterious effects of unfavorable abiotic conditions, we constructed a transgenic Saccharomyces cerevisiae strain expressing the GR gene cloned into the yeast expression vector p426GPD. OsGR expression was confirmed by a semiquantitative reverse transcriptase polymerase chain reaction (semiquantitative RT-PCR) assay, Western-blotting, and a test for enzyme activity. OsGR expression increased the ability of the yeast cells to adapt and recover from $H_2O_2$-induced oxidative stress and various stimuli including heat shock and exposure to menadione, heavy metals (iron, zinc, copper, and cadmium), sodium dodecyl sulfate (SDS), ethanol, and sulfuric acid. However, augmented OsGR expression did not affect the yeast fermentation capacity owing to reduction of OsGR by multiple factors produced during the fermentation process. These results suggest that ectopic OsGR expression conferred acquired tolerance by improving cellular homeostasis and resistance against different stresses in the genetically modified yeast strain, but did not affect fermentation ability.
The phytohormone abscisic acid (ABA) plays an important role in the adaptive response of plants to abiotic stresses. ABA also regulates many important processes, including seed dormancy, germination, inhibition of cell division, and stomatal closure. OsABF2 (Oryza sativa ABRE binding factor2) is one of the bZIP type transcription factors, which are involved in abiotic stress response and ABA signaling in rice. Expression of OsABF2 is induced by ABA and various stress treatments. Findings show that survival rates of OsABF2 over-expressing Arabidopsis lines were increased under drought, salt, and heat stress conditions. The germination ratio of OsABF2 over-expressing Arabidopsis lines was decreased in the presence of ABA. Results indicate that OsABF2 over-expressing Arabidopsis lines have enhanced abiotic stress tolerance and have increased ABA sensitivity.
Ac/Ds mutant lines of this study were transgenic rice plants, each of which harbored the maize transposable element Ds together with a GUS coding sequence under the control of a promoterless(Ds-GUS). We selected the mutants that were GUS expressed lines, because the GUS positive lines will be useful for identifying gene function in rice. One of these mutants was identified knock-out at Oszinc626(NP_001049991) gene, encoding a RING-H2 zinc-finger protein, by Ds insertion. In this mutant, while primary root development is normal, secondary root development from lateral root was very poor and seed development was incomplete compare with normal plant. RING zinc-finger proteins play important roles in the regulation of development in a variety of organisms. In the plant kingdom, a few genes encoding RING zinc-finger proteins have been documented with visible effects on plant growth and development. The consensus of the RING-H2(C3-H2-C3 type) domain for this group of protein is $Cys-X_2-Cys-X_{28}-Cys-X-His-X_2-His-X_2-Cys-X_{14}-Cys-X_2-Cys$. Oszinc626 encodes a predicted protein product of 445 amino acids residues with a molecular mass of 49 kDa, with a RING-zinc-finger motif located at the extreme end of the C-terminus. RT-PCR analysis indicated that the expression of Oszinc626 gene was induced by IAA, cold, dehydration, high-salinity and abscisic acid, but not by 2,4-D, and the transcription of Oszinc626 gene accumulated primarily in rice immature seeds, root meristem and shoots. The gene accumulation patterns were corresponded with GUS expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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