Soybean transgenic plants with ectopically expressed AtABF3 were produced by Agrobacterium-mediated transformation and investigated the effects of AtABF3 expression on drought and salt tolerance. Stable Agrobacterium-mediated soybean transformation was carried based on the half-seed method (Paz et al. 2006). The integration of the transgene was confirmed from the genomic DNA of transformed soybean plants using PCR and the copy number of transgene was determined by Southern blotting using leaf samples from $T_2$ seedlings. In addition to genomic integration, the expression of the transgenes was analyzed by RT-PCR and most of the transgenic lines expressed the transgenes introduced. The chosen two transgenic lines (line #2 and #9) for further experiment showed the substantial drought stress tolerance by surviving even at the end of the 20-day of drought treatment. And the positive relationship between the levels of AtABF3 gene expression and drought-tolerance was confirmed by qRT-PCR and drought tolerance test. The stronger drought tolerance of transgenic lines seemed to be resulted from physiological changes. Transgenic lines #2 and #9 showed ion leakage at a significantly lower level (P < 0.01) than ${\underline{n}}on-{\underline{t}}ransgenic$ (NT) control. In addition, the chlorophyll contents of the leaves of transgenic lines were significantly higher (P < 0.01). The results indicated that their enhanced drought tolerance was due to the prevention of cell membrane damage and maintenance of chlorophyll content. Water loss by transpiration also slowly proceeded in transgenic plants. In microscopic observation, higher stomata closure was confirmed in transgenic lines. Especially, line #9 had 56% of completely closed stomata whereas only 16% were completely open. In subsequent salt tolerance test, the apparently enhanced salt tolerance of transgenic lines was measured in ion leakage rate and chlorophyll contents. Finally, the agronomic characteristics of ectopically expressed AtABF3 transgenic plants ($T_2$) compared to NT plants under regular watering (every 4 days) or low rate of watering condition (every 10 days) was investigated. When watered regularly, the plant height of drought-tolerant line (#9) was shorter than NT plants. However, under the drought condition, total seed weight of line #9 was significantly higher than in NT plants (P < 0.01). Moreover, the pods of NT plants showed severe withering, and most of the pods failed to set normal seeds. All the evidences in the study clearly suggested that overexpression of the AtABF3 gene conferred drought and salt tolerance in major crop soybean, especially under the growth condition of low watering.
Two human lactoferrin expression vectors(pCChcLf and pCChcLf-1) were constructed using rat $\beta$-casein gene and human lactoferrin cDNA. The recombinant DNAs containing human lactoferrin cDNA were microinjected into the fertilized eggs of hybrid mice (BDF1 : C57BL$\times$DBA) and the DNA-injected eggs were treansferred into the oviducts of foster mothers. Genomic DNAs were isolated from the tails of mice born from the microinjected eggs and analyzed by Southern blot analysis. As a result, 5 and 9 transgenic mice with CChcLf and CChcLf-1 gene were produced, respectively. To determine tissue-specificity of transgene expression, Northern blot analysis was performed. Female transgenic mice were killed at day 10 of lactation and total RNAs from various tissues were isolated. Based on Northern blot analysis, it was shown that transgene was mainly expressed in the mammary glands of transgenic mice. In addition, the human lactoferrin in milk was detected by enzyme-linked immunosorbent assay. For this study, milk was obtained from the mammary glands of the transgenic mice at day 10 of lactation. In line #2 of CChcLf and line #7 of CChcLf-1 transgenic mice, human lactoferrin was secreted into the milk at concentration levels of 340ng/ml and 60ng/ml, respectively.
Many trials have been made to produce transgenic animals using sperm cells as a vector transferring foreign DNA into eggs, but reliable results are yet to be obtained (Brinster et al., 1989; Lavitrano et al., 1989; Bachiller et al., 1991; Sato et al., 1994). Recently, one of author(SO) demonstrated that mouse blastocysts derived from eggs fertilized by spermatozoa of male mice single injected with liposome-DNA complexes within the testis expressed thegene (Ogawa et al., 1995.) Here we report that a single injection of liposome-encapsulated DNAs into the testis of either male rats or mice resulted in successfully gene transfer to the postpartum progeny. The expression of mRNA derived from transgenes was also demonstrated in transgenic animals thus obtained. Further, the transmission of the exogenous gene to the descedants was confirmed in one line of transgenic rat up to F4 generation, indicating that the gene was stably incorporated into the germ line. Thus, direct single injection of foreign DNA into the testis provides a novel and convenient means to generate transgenic animals.
Transgenesis is a very powerful tool not only to help understanding the basics of life science but also to improve the efficiency of animal production. Since the first transgenic mouse was born in 1980, rapid development and wide application of this technique have been made in laboratory animals as well as in domestic animals. Although pronuclear injection is the most widely used method and nuclear transfer using somatic cells broadens the choice of making transgenic domestic animals, the demand for precise manipulation of the genome leads to the utilization of gene targeting. To make this technique possible, a pluripotent embryonic cell line such as embryonic stem (ES) cell is required to carry genetic mutation to further generations. However, ES cell, well established in mice, is not available in domestic animals even though many attempt to establish the cell line. An alternate source of pluripotent cells is embryonic germ (EG) cells derived from primordial germ cells (PGCs). To make gene targeting feasible in this cell line, a better culture system would help to minimize the unnecessary loss of cells in vitro. In this review, general methods to produce transgenic domestic animals will be mentioned. Also, it will focus on germ cell engineering and methods to improve the establishment of pluripotent embryonic cell lines in domestic animals.
Proceedings of the Korea Society of Environmental Toocicology Conference
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1996.12a
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pp.64-64
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1996
Transgenic animal and cell line models which are recently developed in toxicology field combined with molecular biological technique, are powerful tools for studying of mutation in vivo and in vitro, respectively. The Big Blue mutagenesis assay system is one of the most widely used transgenic systems. Especially, for the study of direct acting mutagens, Big Blue cell line is very useful and powerful to evaluate mutagenicity because the mutation frequency and mutationspectrlun showed no distinct differences between cell line and animal. The Big Blue cell lines carry stably integrated copies of lambda shuttle vector containing lac I gene as a mutational target. These lambda shuttle vectors are useful for various mutagenesis related studies in eukaryotic system due to their ability to be exposed mutagen and then transfer a suitable target DNA sequence to it convenient organism for analysis. We tried to assess the mutagenic effect of 4-NQO with Big Blue cell line. After the treatment of 4-NQO, genomic DNA was isolated and lambda shuttle vector was packaged by in Vitro packaging and then these were plated on bacterial host in the presence of X-gal to screen mutation in the lac I. We determined MF as a ratio of blue plaques versus colorless plaques and now undergoing the mutation spectrum of 4-NQO in lac J gene sequence.
This study was conducted to examine the effect of IRES controlled reporter gene on screening and production of recombinant human erythropoietin (EPO) proteins from cultured CHO cells. The cDNA was cloned for EPO from human liver cDNA Using site-directed mutagenesis, we generated recombinant human EPO (rhEPO) with two additional N-glycosylations (Novel erythropoiesis-stimulating protein: NESP). Wild type hEPO and NESP were cloned into expression vectors with GFP reporter gene under regulatory control of CMV promoter and IRES so that the vectors could express both rhEPO and GFP. The expression vectors were transfected to cultured CHO-K1 cells. Under microscopy, expression of GFP was visible. Using supernatant of the culture, ELISA assay, immunocytochemistry and in vitro assay using EPO dependant cell line were performed to estimate biological activity to compare the production characteristics (secretion levels, etc.) between rhEPO and NESP. The activity of NESP protein, obtained by mutagenesis, was described and compared with its rhEPO counterpart produced under same conditions. Although NESP had less secretion level in CHO cell line, the biological activity of NESP was greater than that of rhEPO. These results are consistent with previous researches. We also demonstrated that rhEPO and GFP proteins expressed simultaneously from transfected CHO cell line. Therefore we conclude that use of GFP reporter gene under IRES control could be used to screen and produce rhEPO in cultured CHO cells.
The human growth hormone (hGH) gene uder the control of the rat $\beta$-casein promoter gene was designed to produce transgenic mouse expressed hGH gene in only mammary gland. One hundred seventy two eggs microinjected were transferred to the oviducts of pseudopregnants and 43 offspring were delivered. By Southern blotting hybridization, 3 were transgenic with rat $\beta$-casein/hGH gene. The copy numbers of three transgenic founder were 1, 5, and 15, respectively. A radioimmunoassay was developed to quantitate the amount of expression of the hGH gene in mammary gland of transgenic mice. The amount of hGH was 13.3ng/ml in the lactating milk of one transgenic line, showing predominantly higher than 3.0ng/ml in milk of control mice. Therefore, our findings suggested that $\beta$-casein promoter may induce the tissue specific expression of structural gene.
A Study was conducted to investigate comparison of in vitro tuberization between normal and transgenic potato plantlets harboring adenosine deaminase gene in potato cultivar of Desiree. In time course study of in vitro tuberization, the rate of tuberization in four lines were increased till 6 weeks. but maintained stil after 7 weeks. Microtuber initiation of transgenic lines, 43 and 39 were faster than other lines, but no difference was observed after 5 weeks compared with normal plantlets. In all transgenic lines, the majoirty of microtubers produced were small(less than 100 mg) and medium(100-200mg) size rather than large size(more than 200 mg). Among 4 lines , line 9 produced the highest number of microtubers per each culture vessel. The results of this experiment suggest that there is no significant difference in microtuber production efficiency between normal and transgenic potatoes.
The transgenic mice were produced by microinjection of human growth hormone gene fused with mouse metallothionein Ⅰ promoter. They were mated with momal mice by backcross or brother-sister mating. The reproduction efficiencies of female and male n the FO transgenic mice were 17.6%(3/17 mice) and 31.2%(5/16 mice), respectively, and were very lower than that in normal mice(85.7% and 100%, respectively). Interestingly, a few of female transgenic mice were fertile which was different from the previous reports. Of 6 fertile transgenic mice, 2 mice were identified as mosaic type by the reduced frequency of genetic transmission to successive generation below Mendelian levle and the enhanced copy numbers of transgene in progeny mice compared with the transgenic parent. In the group of F1, F2, F3 transgenic mice the reproduction efficiencies of males were gradually improved, whereas females were absolutely infertile. It was consequently shown that the transgenic mice expressing human growth hormone gene were frequently infertile, but the genotypic and phenotypic characteristics of the fertile transgenic mice were normally passed on to the progeny through herm line. Therefore it must be considered wheter or not the products of foreign DNA introduced into animals will detrimentally affect their physiological aspects.
To examine the interrelationship between transgenic insertion patterns and transgene expression profiles in established transgenic fish lines, four stable transgenic marine medaka Oryzias dancena germlines harboring ${\beta}$-actin regulator-driven RFP reporter constructs were selected. The established transgenic strains were characterized with regard to their transgenic genotypes (insertion pattern, concatemer formation, and transgene copy number based on genomic Southern blot hybridization and qPCR assay) and expression characteristics at the mRNA (qRT-PCR), protein (western blot), and phenotypic (fluorescent appearance) levels. From comparative examinations, it was found that transgenic expression at both the transcription and translation levels could be significantly downregulated in transgenic strains, potentially through methylation-mediated transgene silencing that was particularly associated with the formation of a long tail-to-head tandem concatemer in the chromosomal integration site(s). When this occurred, an inverse relationship between the transgene copy number and fluorescence intensity was observed in the resultant transgenic fish. However, with the other transgenic genotype, transgenic individuals with an identical Southern blot hybridization pattern, containing a tandem concatemer(s), had very different expression levels (highly robust vs. low expression strengths), which was possibly related to the differential epigenetic modifications and/or degrees of methylation. The concatemer-dependent downregulation of transgene activity could be induced in transgenic fish, but the overall pattern was strain-specific. Our data suggest that neither a low (or single) transgene copy number nor tandem transgene concatemerization is indicative of strong or silenced transgene expression in transgenic fish carrying a ubiquitous transgene. Hence, a sufficient number of transgenic lineages, with different genotypes, should be considered to ensure the establishment of the best-performance transgenic line(s) for practical applications.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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