Background and Objective : Chungsangboha-tang (CSBHT) has analgesic, sedative, anti-convulsive and anti-histamine effects, so it alleviates the symptoms of asthma. For the comparison of anti-inflammatory effect(s) on CSBHT, PD098059 was used as a negative control. Materials and Methods : This study emphasized THP-1 cells, which had been well characterized as a human monocytic leukemic cell line. The cells resemble monocytes with respect to several criteria and can be differentiated into macrophage-like cells by treatment with PMA. By using the MTS assay, it was possible to prove the safety of CSBHT. Results : Results shows that the CSBHT did not affected cell survival within $10^{1}$ ng/ml to $10^{5}$ ng/ml. Especially, $10^{5}$ ng/ml CSBHT treated cells show 70% deduction of $TNF-{\alpha}$ gene expression against that of LPS treated group. Furthermore, $IL-1{\beta}$, IL-6, IL-8, IL-10 and $TNF-{\alpha}$ levels are down-regulated when treated with CSBHT with concentrations up to 100 ug/ml on monocyte-derived macrophages. Interestingly, CSBHT-treated samples showed that overall transcriptional activities were down-regulated to 20% of that of PD098059 ($TNF-{\alpha}$ inhibitor). At protein level, the expression of $TNF-{\alpha}$ showed similar results as that of transcriptional activity. Results show that the protein level decreased more in the CSBHT-treated group (487 ${\pm}$ 87 pg/ml) than in the LPS-treated group (703 ${\pm}$ 103 pg/ml). In addition, the protein level of IL-8 in the CSBHT treated-group (9.84 ${\pm}$ 3.28 ng/ml) decreased similar as the expression of the control and PD098059-treated groups. Conclusion : CSBHT affects immune response, especially allergic responses and suppression of inflammatory reaction. The results provide us an alternative way to care for clinical inflammatory diseases, not only asthma but also the other possible general inflammatory and allergic diseases.
Background : NF-${\kappa}B$ is the most important transcriptional factor in IL-8 gene expression. Triptolide is a new compound that recently has been shown to inhibit NF-${\kappa}B$ activation. The purpose of this study is to investigate how triptolide inhibits NF-${\kappa}B$-dependent IL-8 gene transcription in lung epithelial cells and to pilot the potential for the clinical application of triptolide in inflammatory lung diseases. Methods : A549 cells were used and triptolide was provided from Pharmagenesis Company (Palo Alto, CA). In order to examine NF-${\kappa}B$-dependent IL-8 transcriptional activity, we established stable A549 IL-8-NF-${\kappa}B$-luc. cells and performed luciferase assays. IL-8 gene expression was measured by RT-PCR and ELISA. A Western blot was done for the study of $I{\kappa}B{\alpha}$ degradation and an electromobility shift assay was done to analyze NF-${\kappa}B$ DNA binding. p65 specific transactivation was analyzed by a cotransfection study using a Gal4-p65 fusion protein expression system. To investigate the involvement of transcriptional coactivators, we perfomed a transfection study with CBP and SRC-1 expression vectors. Results : We observed that triptolide significantly suppresses NF-${\kappa}B$-dependent IL-8 transcriptional activity induced by IL-$1{\beta}$ and PMA. RT-PCR showed that triptolide represses both IL-$1{\beta}$ and PMA-induced IL-8 mRNA expression and ELISA confirmed this triptolide-mediated IL-8 suppression at the protein level. However, triptolide did not affect $I{\kappa}B{\alpha}$ degradation and NF-$_{\kappa}B$ DNA binding. In a p65-specific transactivation study, triptolide significantly suppressed Gal4-p65T Al and Gal4-p65T A2 activity suggesting that triptolide inhibits NF-${\kappa}B$ activation by inhibiting p65 transactivation. However, this triptolide-mediated inhibition of p65 transactivation was not rescued by the overexpression of CBP or SRC-1, thereby excluding the role of transcriptional coactivators. Conclusions : Triptolide is a new compound that inhibits NF-${\kappa}B$-dependent IL-8 transcriptional activation by inhibiting p65 transactivation, but not by an $I{\kappa}B{\alpha}$-dependent mechanism. This suggests that triptolide may have a therapeutic potential for inflammatory lung diseases.
Chemerin is a novel adipokine which is abundant in adipose tissue to promote adipocyte differentiation and with significant relativity to BMI and insulin sensitivity. We report here the molecular characterization of porcine chemerin and its receptors ChemR23 and GPR1, as well as their transcriptional regulation during lipogenesis. Chemerin was mainly expressed in liver, intestine, kidney and adipose tissue, consistent with the expression pattern of GPR1, but not ChemR23, which was predominantly present in spleen and temperately in adipose tissue. We further investigated the lipogenesis-related transcriptional activation of $PPAR{\gamma}$ and KLF15 on chemerin and its receptors. The data showed that KLF15, but not $PPAR{\gamma}$, can up-regulate the mRNA level of chemerin, ChemR23 and GPR1, which was consistent with the results of luciferase assay that confirmed the effect of KLF15 on ChemR23 promoter. Taken together, our data provide basic molecular information for the further investigation on the function of chemerin in lipogenesis.
$\gamma$-Glutamyl transpeptidase (GGT, EC 2.3.2.2.) catalyzes the transfer of the $\gamma$-glutamyl moiety from $\gamma$-glutamyl containing ompounds, notably glutathione (GSH), to acceptor amino acids and peptides. A second gene (GGTII) encoding GGT was previously isolated and characterized from the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. In the present work, the GGTII-lacZ fusion gene was constructed and used to study the transcriptional regulation of the S. pombe GGTII gene. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the GGTII-lacZ fusion gene was significantly enhanced by NO-generating SNP and hydrogen peroxide in the wild type yeast cells. The GGTII mRNA level was increased in the wild-type S. pombe cells treated with SNP. However, the induction by SNP was abolished in the Pap1-negative S. pombe cells, implying that the induction by SNP of GGTII is mediated by Pap1. Fermentable carbon sources, such as glucose (at low concentrations), lactose and sucrose, as a sole carbon source, enhanced the synthesis of $\beta$-galactosidase from the GGTII-lacZ fusion gene in wild type KP1 cells but not in Pap1-negative cells. Glycerol, a non-fermentable carbon source, was also able to induce the synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion gene, but other non-fermentable carbon sources such as acetate and ethanol were not. Transcriptional induction of the GGTII gene by fermentable carbon sources was also confirmed by increased GGTII mRNA levels in the yeast cells grown with them. Nitrogen starvation was also able to induce the synthesis of $\beta$-galactosidase from the GGTII-lacZ fusion gene in a Pap1-dependent manner. On the basis of the results, it is concluded that the S. pombe GGTII gene is regulated by oxidative and metabolic stress.
Li, Yue;Jiang, Zhao-Zhao;Chen, Hai-Xu;Leung, Wai-Keung;Sung, Joseph J.Y.;Ma, Wei-Jun
BMB Reports
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v.38
no.4
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pp.500-506
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2005
HOX11 encodes a homeodomain-containing transcription factor which directs the development of the spleen during embryogenesis. While HOX11 expression is normally silenced through an unknown mechanism in all tissues by adulthood, the deregulation of HOX11 expression is associated with leukemia, such as T-cell acute lymphoblastic leukemia. The elucidation of regulatory elements contributing to the molecular mechanism underlying the regulation of HOX11 gene expression is of great importance. Previous reports of HOX11 regulatory elements mainly focused on the 5'-flanking region of HOX11 on the chromosome related to transcriptional control. To expand the search of putative cis-elements involved in HOX11 regulation at the post-transcriptional level, we analyzed HOX11 mRNA 3'-untranslated region (3'UTR) and found an AU-rich region. To characterize this AU-rich region, in vitro analysis of HOX11 mRNA 3'UTR was performed with human RNA-binding protein HuR, which interacts with AU-rich element (ARE) existing in the 3'UTR of many growth factors' and cytokines' mRNAs. Our results showed that the HOX11 mRNA 3'UTR can specifically bind with human HuR protein in vitro. This specific binding could be competed effectively by typical ARE containing RNA. After the deletion of the AU-rich region present in the HOX11 mRNA 3'UTR, the interaction of HOX11 mRNA 3'UTR with HuR protein was abolished. These findings suggest that HOX11 mRNA 3'UTR contains cis-acting element which shares similarity in the action pattern with RE-HuR interactions and may involve in the post-transcriptional regulation of the HOX11 gene.
In this study, we report the identification and characterization of a novel C2H2 zinc finger protein, ZNF552, from a human embryonic heart cDNA library. ZNF552 is composed of three exons and two introns and maps to chromosome 19q13.43. The cDNA of ZNF552 is 2.3 kb, encoding 407 amino acids with an amino-terminal KRAB domain and seven carboxyl-terminal C2H2 zinc finger motifs in the nucleus and cytoplasm. Northern blotting analysis indicated that a 2.3 kb transcript specific for ZNF552 was expressed in liver, lung, spleen, testis and kidney, especially with a higher level in the lung and testis in human adult tissues. Reporter gene assays showed that ZNF552 was a transcriptional repressor, and overexpression of ZNF552 in the COS-7 cells inhibited the transcriptional activities of AP-1 and SRE, which could be relieved through RNAi analysis. Deletion studies showed that the KRAB domain of ZNF552 may be involved in this inhibition.
The expression of Corynebacterium ammoniagenes purF was analyzed by utilizing a plasmid carrying a cat gene fused to the purF promoter region. Adenine and guanine repressed the expression of the purF gene by 20~30% but hypoxanthine did not exert such repressive effect. The expression purF was maximal at the late log phase and remained constant throughout the stationary phase. Promoter $P_{180}$ which was developed in C. glutamicum was also functional in C. ammoniagenes, achieving maximal activity at the late log phase. The promoter outperformed Escherichia coli $P_{tac}$ promoter by 40~50% level. DNA-affinity purification identified a protein which could bind to the promoter region of the purF gene. The protein showed high similarity to the CRP-family transcriptional regulator encoded by NCgl0120 in C. glutamicum. The size of the screened protein agreed with the expected protein size from the ORF NCgl0120. The corresponding gene in C. ammoniagenes encoded a 42 kDa polypeptide composed of 400 amino acids with expected pI of 4.9. The encoded protein showed 14.1% and 15.8% identity with E. coli and Bacillus subtilis PurR, respectively, suggesting that the isolated protein might be a novel type of regulatory protein involved in the regulation of purine metabolism.
A chicken clathrin-associated adaptor protein $3-{\delta}$ subunit 2 (AP3S2) is a subunit of AP3, which is involved in cargo protein trafficking to target membrane with clathrin-coated vesicles. AP3S2 may play a role in virus entry into host cells through clathrin-dependent endocytosis. AP3S2 is also known to participate in metabolic disease developments of progressions, such as liver fibrosis with hepatitis C virus infection and type 2 diabetes mellitus. Chicken AP3S2 (chAP3S2) gene was originally identified as one of the differentially expressed genes (DEGs) in chicken kidney which was fed with different calcium doses. This study aims to characterize the molecular characteristics, gene expression patterns, and transcriptional regulation of chAP3S2 in response to the stimulation of Toll-like receptor 3 (TLR3) to understand the involvement of chAP3S2 in metabolic disease in chicken. As a result, the structure prediction of chAP3S2 gene revealed that the gene is highly conserved among AP3S2 orthologs from other species. Evolutionarily, it was suggested that chAP3S2 is relatively closely related to zebrafish, and fairly far from mammal AP3S2. The transcriptional profile revealed that chAP3S2 gene was highly expressed in chicken lung and spleen tissues, and under the stimulation of poly (I:C), the chAP3S2 expression was down-regulated in DF-1 cells (P<0.05). However, the presence of the transcriptional inhibitors, BAY 11-7085 (Bay) as an inhibitor for nuclear factor ${\kappa}B$ ($NF{\kappa}B$) or Tanshinone IIA (Tan-II) as an inhibitor for activated protein 1 (AP-1), did not affect the expressional level of chAP3S2, suggesting that these transcription factors might be dispensable for TLR3 mediated repression. These results suggest that chAP3S2 gene may play a significant role against viral infection and be involved in TLR3 signaling pathway. Further study about the transcriptional regulation of chAP3S2 in TLR3 pathways and the mechanism of chAP3S2 upon virus entry shall be needed.
The effects of the thyroid hormone ($T_3$) on 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A (HMG-CoA) reductase activity were evaluated in a baby hamster kidney cell line, C100. The cells cultured in MEM were supplemented with 10% thyroid hormone-depleted fetal bovine serum (THDS-MEM) and had a 82.5% lower level of HMG-CoA reductase activity than the cells grown in a medium supplemented with fetal bovine serum (FBS-MEM). When $T_3$ was supplemented to THDS-MEM, the reduction of the reductase activity was blocked in a dose-dependent manner. In the cells grown in THDS-MEM containing $T_3$ at a concentration of $10^{-6}$ M, the level of HMG-CoA reductase activity was 91.8% relative to the cells grown in FBS-MEM. These changes in HMG-CoA reductase activity seemed to be at least partly due to the changes of HMG-CoA reductase mRNA levels. The level of HMG-CoA reductase mRNA in cells incubated in THDS-MEM decreased to 76.2% relative to the cells grown in FBS-MEM, while the level of reductase mRNA in cells incubated in THDS-MEM containing $T_3$ at a concentration of $10^{-6}$ M increased to 243.4% relative to the cells grown in FBS-MEM. The increase of HMG-CoA reductase mRNA level after $T_3$ treatment may have been due to the increased stability of reductase mRNA, because the transcriptional rate of the reductase gene did not change significantly in the presence or absence of $T_3$. These results indicate that $T_3$ stabilizes HMG-CoA reductase mRNA at the posttranscriptional level and regulates HMG-CoA reductase activity in a dose-dependent manner.
MicroRNAs (miRs) are endogenous ${\approx}22$-nt non-coding RNAs that participate in the regulation of gene expression at post-transcriptional level. MiR-1 is one of the muscle-specific miRs, aberrant expression of miR-1 plays important roles in many physiological and pathological processes. In this review, we focus on the recent studies about miR-1 in cardiac diseases and cancers. The findings indicate that miR-1 may be a novel, important biomarker, and a potential therapeutic target in cardiac diseases and cancers.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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