Helices 4 and 5 of the Bacillus thuringiensis Cry4Ba $\delta$-endotoxin have been shown to be important determinants for mosquito-larvicidal activity, likely being involved in membrane-pore formation. In this study, the Cry4Ba mutant protein containing an additional engineered tryptic cleavage site was used to produce the $\alpha4$-$\alpha5$ hairpin peptide by an efficient alternative strategy. Upon solubilization of toxin inclusions expressed in Escherichia coli and subsequent digestion with trypsin, the 130-kDa mutant protoxin was processed to protease-resistant fragments of ca. 47, 10 and 7 kDa. The 7-kDa fragment was identified as the $\alpha4$-loop-$\alpha5$ hairpin via N-terminal sequencing and mass spectrometry, and was successfully purified by size-exclusion FPLC and reversed-phase HPLC. Using circular dichroism spectroscopy, the 7-kDa peptide was found to exist predominantly as an $\alpha$-helical structure. Membrane perturbation studies by using fluorimetric calcein-release assays revealed that the 7-kDa helical hairpin is highly active against unilamellar liposomes compared with the 65-kDa activated full-length toxin. These results directly support the role of the $\alpha4$-loop-$\alpha5$ hairpin in membrane perturbation and pore formation of the full-length Cry4Ba toxin.
Porphyromonas gingivalis, the gram-negative anaerobic oral bacterium, initiates periodontal disease by binding to saliva-coated oral surface. The cholera toxin B subunit (CTB) genetically linked to FimA1 (1-200 aa) or FimA2 (201-337 aa) of the P. gingivalis fimbrial antigen were introduced into Solanum tuberosum cells by Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation method. The integration of CTB-FimA1 or CTB-FimA2 fusion genes were confirmed in the chromosome of transformed leaves by genomic DNA PCR amplification method. Synthesis and assembly of the CTB-FimA fusion proteins into oligomeric structures with pentamer size was detected in transformed tuber extracts by immunoblot analysis. The binding activities of CTB-FimA fusion proteins to intestinal epithelial cell membrane receptors were confirmed by GM1-ganglioside enzyme-linked immunosorbent assay (GM1-ELISA). The ELISA showed that the expression levels of the CTB-FimA1 or CTB-FimA2 fusion proteins were 0.0019, 0.002% of the total soluble protein in transgenic tuber tissues, respectively The synthesis of CTB-FimA monomers and their assembly into biologically active oligomers in transformed potato tuber tissues demonstrates the feasibility of using edible plants for the production of enterocyte targeted fimbrial antigens that could elicit mucosal immune responses.
Foreign proteins, $endo-{\beta}-1,4-glucanase$ of Bacillus subtilis, preS1+S2 region of hepatitis B virus large surface antigen, human ${\beta}_2-adrenergic$ receptor ($h{\beta}_{2}AR$), and bovine growth hormone (bGH) were expressed in Saccharomyces cerevisiae and secreted into the medium. These proteins were expressed using the alcohol dehydrogenase I (ADH1) promoter of Saccharomyces cerevisiae and secreted by signal sequence of the 97 K killer toxin gene of doublestranded linear DNA plasmid (pGKL1) of S. cerevisiae. All these proteins underwent severe modifications; in particular, N-glycosylation in the case of $endo-{\beta}-1,4-glucanase$, $h{\beta}_2AR$, and preS1+S2. Seventy four percent of the expressed $endo-{\beta}-1,4-glucanase$ was secreted into the culture medium. Highly modified proteins were detected in the culture medium and in the cell. Expressed $h{\beta}_2AR$, which has seven transmembrane domains, remained in the cell. The degrees of secretion and modification and the states of proteins in the culture medium and in the cell were quite different. These results indicated that the nature of the protein has a critical role in its secretion and modifications.
Cha, In Ho;Kim kyoung Sook;Kim Sang Hyun;Kim Yong Hwan;Lee, Young Choon
Journal of Microbiology
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제34권2호
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pp.151-157
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1996
By PCR amplification using the sequence of the previously cloned shiga-like toxin II DNA, a gene encoding it has been cloned from an isolate of healthy Korean native bovine feces, Escherichia coli KSC109. The nucleotide sequence s included tow open reading frames coding for 319 and 89 amino acids corresponding to A and B subunits, respectively. Comparison of the nucleotide and predicted amino acid sequences of newly cloned gene (slt-II) with those of others in the SLT-II family revealed completely identical homology with SLT-II cloned previously from bacteriophabe DNA of E. coli 933 derived from a patient with hemorrhagic colities. In addition, the sequence homology of SLT-II with SLT-II variant form bovine was more than 95% at both the nucleotide and protein levels. Overexpression of SLT-II recombinant gene by induction with IPTG using an E, coli hostvector, system was conducted and the correctly processed products with active mature form exhibited 1000-fold higher cytotoxycity for Vero cells than that form original strain.
Actinobacillus pleuropneumoniae is the causative agent of a porcine contagious pleuropneumonia. Among several virulence factors including exotoxin (Apx toxins), LPS, transferrin-binding proteins, OMPs, and some proteases, Apx toxins have been major targets for the protection study. In this study, cloning and expression of A. pleuropneumoniae Apx I and Apx II toxin, which are produced by all highly virulent strains, were performed by Escherichia coli expression system. Genes coding Apx I and II toxin were amplified from the A. pleuropneumoniae serotype 5 genomic DNA using polymerase chain reaction and cloned to a prokaryotic expression vector, pRSET. Expression of the Apx I and Apx II coding sequences in E. coli resulted in the formation of insoluble inclusion bodies purified according to a denaturing purification protocol, which employs the use of guanidium. Recombinant proteins were purified using $Ni^{2+}$-charged resin affinity purification. This expression and purification system made it possible to produce Apx I and Apx II in large amounts for further immunologic studies.
Pasteurella multocida serogroup D strain, which produces P. multocida toxin (PMT), is a widespread and harmful pathogen of respiratory diseases such as pneumonia and progressive atrophic rhinitis (PAR) in swine. Vaccination has been considered the most desirable and effective approach for controlling the diseases caused by toxigenic P. multocida. To investigate the antigenicity and immunogenicity of partial fragments of recombinant PMT, recombinant proteins of the N-terminal (PMT-A), middle (PMT-B), C-terminal (PMT-C), and middle-C-terminal (PMT2.3) regions of PMT were successfully produced in an Escherichia coli expression system. The molecular masses of PMT-A, PMT-B, PMT-C, and PMT2.3 were ca. 53, 55, 35, and 84 kDa, respectively, purified by nickel-nitrilotriacetic acid (Ni-NTA) affinity column chromatography. All the recombinant proteins except for PMT-A showed immune responses to antisera obtained from a swine showing symptoms of PAR. Moreover, high titers of PMT-specific antibodies were raised from mice immunized with each of the recombinant proteins; however, the immunoreactivities of the antibodies to authentic PMT and heat-inactivated whole bacteria were different, respectively. In the protection study, the highest protection against homologous challenge was shown in the case of PMT2.3; relatively poor protections occurred for the other PMT fragments.
Tolaasin, a pore-forming peptide toxin, is produced by Pseudomonas tolaasii and causes brown blotch disease of the cultivated mushrooms. P. tolaasii 6264 was isolated from the oyster mushroom damaged by the disease in Korean. In order to isolate tolaasin molecules, the supernatant of bacterial culture was harvested at the stationary phase of growth. Tolaasin was prepared by ammonium sulfate precipitation and three steps of chromatograpies, including a gel permeation and two ion exchange chromatographies. Specific hemolytic activity of tolaasin was increased from 1.7 to 162.0 HU $mg^{-1}$ protein, a 98-fold increase, and the purification yield was 16.3%. Tolaasin preparation obtained at each purification step was analyzed by HPLC and SDS-PAGE. Two major peptides were detected from all chromatographic preparations. Their molecular masses were analyzed by MALDI-TOF mass spectrometry and they were identified as tolaasin I and tolaasin II. These results demonstrate that the method used in this study is simple, time-saving, and successful for the preparation of tolaasin.
Our previous report has suggested that the decrease of fibronectin level during mvogenesis is due to the decreased Bvailabilitv of receptor (matrix assembly receptor) for 29-kDa fragment of fibronectin. In the present study, we demonstrate that G protein and adenvlate cvclase system are involved in the regulation of fibronectin matrix assembly and that when fibronectin level in extracellular matrix decreases, the postmitotic fusion-capable cells emerge more frequently from the proliferative population. This proposal is based on the following observations. (1) Cholers toxin, which increases intracellular CAMP, caused a decrease in the ability of mvoblasts to incorporate fibronectin into extracellular matrix. (2) Cholera toxin decreased the proliferation of mvoblasts and Induced the precocious fusion. (3) decAMP, which was found to induce the precocious fusion and decrease the proliferation of myoblasts, decreased the fibronectin level in extracellular matrix and matrix assembly receptor for fibronectin- (4) RGOS, whlh inhibits the incorporation of fibronectin into extracellular matrix, induced the precocious fusion and reduced the proliferaton of mvoblasts. These results suggest that CAMP regulates the fibronectin levels in extracellular matrix and that the alteration of fibronectin level is involved in regulation of the proliferation and differentiation of chick embryonic mvoblasts.
Kim, Jin-Sook;Seong, Hye-Young;Kim, Mi-Wha;Ku, Jong-Seo;Choi, Soon-Yong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제13권2호
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pp.287-291
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2003
Botulinum neurotoxin type A (BONT/A) is an extremely potent toxin, which is produced by Clostridium botulinum. The light chain of this protein (BONT/A LC), which is known as a zinc endopeptidase, cleaves SNAP-25 involved in the exocytosis process. In this work, the expression of recombinant BoNT/A LC in E. coli is described. The BONT/A LC gene of C. botulinum contains a high frequency of the arginine AGA and isoleucine ATA codons that are rarely used in genes of E. coli, hampering the translation of recombinant protein. The argD and ilex tRNA genes were cloned into pACYC184 vector, resulting in pAAD131X plasmid. The translational stress of the toxin gene related to codon bias was reversed by fupplernentation of the AGA arginyl tRNA of T4 phage and AUA isoleucyl tRNA of E. coli. This system may be applicable for the expression of a variety of AT-rich heterologous genes in E. coli.
Tryptic activation of the 130-kDa Bacillus thuringiensis Cry4B $\delta$-endotoxin produced protease-resistant products of ca. 47 kDa and ca. 21 kDa. The 21-kDa fragment was identified as the N-terminal five-helix bundle (${\alpha}1-{\alpha}5$,) which is a potential candidate for membrane insertion and pore formation. In this study, we constructed the recombinant clone over-expressing this putative pore-forming (PPF) fragment as inclusion bodies in Escherichia coli. The partially purified inclusions were composed of a 23-kDa protein, which cross-reacted with Cry4B antibodies, and whose N-terminus was identical to that of the 130-kDa protein. Dissimilar to protoxin inclusions, the PPF inclusions were only soluble when the carbonate buffer, pH 9.0, was supplemented with 6 M urea. After renaturation via a stepwise dialysis, the refolded PPF protein appeared to exist as an oligomer and was structurally stable upon trypsin treatment. Unlike the 130kDa protoxin, the refolded protein was able to release entrapped glucose from liposomes, and showed comparable activity to the full-length activated toxin, although it lacks larvicidal activity These results, therefore, support the notion that the PPF fragment that consists of ${\alpha}1-{\alpha}5$ of the activated Cry4B toxin is involved in membrane pore-formation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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