Barsuren, Enkhbolor;Kim, Sang Hwan;Lee, Ho-Jun;Yoon, Jong Taek
한국동물생명공학회지
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제34권2호
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pp.106-110
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2019
Sexed sperm can contribute to increase the profitability of the cow industry through the production of offspring of the craved sex, such as males for meat or females for dairy production. Therefore, the utilization of sexed sperms plays a very important role in the production of offspring of superior cattle. In this study, we examined the pregnancy rates and calves sexing proportion of male and female calves produced using AI, both performed using sexed and conventional sperm. In the result, the conception rates after ET were 73.3% (33/45) sexed semen and 52% (55/104) conventional semen. Thus, the sex ratio for sexed-semen inseminations was 70% (21/30) females for singleton births within a 272 to 292 day gestation interval. The sex ratio for conventional semen was 61% (34/56) females for births. As a result, it is suggested that the use of sex classification sperm will play a very important role in the offspring production of Korean bovine.
Testis-specific protein (TSPY) is a Y-specific gene, with up to 200 copy numbers in bulls. In order to make bovine embryo sexing under farm condition more feasible, the possibility of using a non-electrophoretic method to detect the TSPY gene for sexing bovine early embryos was examined. Primers were designed to amplify a portion of the TSPY gene and a common gene as an internal control primer. PCR optimization was carried out using a DNA template from bovine whole blood. Furthermore, embryo samples were diagnosed by this method and the sexing results were contrasted with those of the Loop-Mediated Isothermal Amplification (LAMP) method. The results showed that TSPY was as reliable a sexing method as LAMP. Forty-three morula and blastocyst embryos collected from superovulated donor dairy cattle were sexed by this method, and twenty-one embryos judged to be female embryos were transferred non-surgically to recipients 6 to 8 days after natural estrus. Out of 21 recipients, 9 were pregnant (42.86%) and all delivered female calves. The results showed that the sex predicted by this protocol was 100% accurate. In conclusion, the TSPY gene was a good male specific marker and indicated that a non-electrophoretic method was feasible and accurate to detect the TSPY gene for sexing preimplantation bovine embryos.
Sixty-one 5-11 month-old California, Chinchilla and New Zealand White rabbit were employed in this investigation. Thirty-three does were superovulated by injecting FSH/HCG subcutaneously or intravenously and then sacrificed at different hours after mating. The ova were collected from the fallopian tubes with Ham's F-10 medium supplemented with 0.4% bovine serum albumin (BSA) and 1% pregnant rabbit serum (PRS). Embryos were examined under an inverted DIC microscopy for observing the stage of development. We have found that the fertilized ova formed pronuclei at 19 - 20 hr postcoitus. Approximately at 26, 64 - 78 and 84 - 88 hr after mating, the fertilized ova cleaved further to 2-cell, morulae and blastocyst stage respectively. Another 28 does were allocated to the gene transfer study. Fourteen of the 28 does were sacrificed at 19 - 20 hr to donate the pronuclear stage ova for gene injection. The other 14 does were induced to pseudopreganacy by injection of 100 IU HCG intravenous as recipients. Four hundreds and seventeen ova were injected totally and 212 gene injected zygotes were transferred into the recipient oviducts. Five recipients became pregnant and 10 fetuses were obtained. Eight of the 10 fetuses were analysed for gene incorporation, but none of them were transgenic.
Despite many studies, results of superovulation protocols are not consistent in farm animals. In this study, 151 Boer goats were superovulated to examine the factors affecting superovulation and embryo transfer (MOET). An optimal regime for superovulation treatment was identified as a 4-day treatment with decreasing dosages of 6-7 mg Chinese FSH or 240 mg Canadian FSH. The 4-day treatment with decreasing dosages of 6-7 mg Chinese FSH was, therefore, adopted to study effects of the age of does, season and repeated treatments on superovulation and embryo transfer. The best season for superovulation and embryo transfer and pregnancy was autumn, and the best age range was 12-35 months old. Within animals there were no significant differences in the number of ovulations and the rate of transferable embryos between the first and the second superovulation. However, these parameters declined significantly for the third superovulation. No marked effects of the number of ovulations on the proportion of transferable embryos were noted. The parturition rate of the recipients receiving single embryos was not different significantly from those receiving two embryos, and the kidding rate calculated from embryos transferred did not differ significantly between recipients receiving one and two embryos.
As a preliminary experiment to establish the process of embryo transfer in rabbit, present sutdies were carried out with 75 mature Japanese of ovary to pregnant mare's serum gonadotropin(PMSG) and human chorionic gonadotropin(hCG) and collection rate of embryos at various times after hCG injection. Female rabbits were superovulated using 50∼100IU hCG or 75∼100IU PMSG and 50∼751IU hCG injected 83hrs apart. The results obtained were as follows: 1. The average number of growth follicles obtained from all of rabbits treated with hCG or PMSG-hCG was 28.1. PMSG-hCG treatment group (30.9) was clearly increased more than hCG treatment group (16.7). 2. In ovulation score, PMSG-hCG treatment group (21.0) was increased more than hCG treatment group (7.9), showing the same trends in the growth of follicles. 3. The ovulation rate per follicles developed was higher in the rabbits treated with 100 IU PMSG and 75 IU hCG (18.9%) than that from the other groups. 4. The oviduct score (72.9%) was inclined to higher than that from uteri (57.1%) in score of embryo collection.
This study was performed to investigate the effect of laser-assisted hole in the zona pellucida (ZP) of frozen-thawed ICR mouse embryos on the process of hatching that is critical for expanded blastocysts to implant into endometrium, Vitrification medium, composed of ethylene glycol and sucrose supplemented with 7.5% (w/v) PVP, was used to freeze $2{\sim}4$ cell stage embryos recovered from oviducts of superovulated and mated female mice before storing them in $LN_2$. Right after thawing them, a laser beam was shot to make a hole in ZP followed by culturing in KSOM for $96{\sim}120\;hr$ and examining development to blastocyst and hatching every 12 hr. Laser-treated embryos showed significantly higher hatching rate compared to control (92.9% vs. 22.1%, p<0.05). From around Day 4, blastocysts developed from laser-treated embryos started hatching while the blastocysts of control group failed to hatch showing a lot of shrinkage. This study shows that a laser-assisted hole in ZP improves the hatching rate of blastocysts developed from frozen-thawed, in vitro cultured ICR mouse embryos.
We examined early development in loach(Misgurnus mizolepis) embryos with parthenogenetic agents well-known in mammals. Female loach was superovulated with an intraperitoneal injection of 15 IU human chorionic gonadotrophin (hCG) per gram body weight. After 13 h of hCG injection, the oocytes were obtained from the abdomen. The oocytes were activated with 10% ethanol in tap water or fish Ringer's solution for 5, 10 and 15 minutes(eTW5, 10, 15 and eFRS5, 10, 15), respectively. The activation rates were 29% and 10% in eFRS10 and eFRS15, 5% and 6% in eTW10 and eTW15 by judging the cleaved blastomeres. Whereas, no parthenogenetic embryo was produced by tap water or fish Ringer's solution alone. The activation rate with the fish Ringer's solution was higher than that of tap water. No embryonic development was observed by calcium ionophore, A23187, at concentrations of 10, 20, 40 and 100$\mu$M when treated for 1, 2.5 and 5 minutes, respectively. The activation agents did not cause early development as in mammalian eggs. Therefore, the results suggest that fresh water fish may have a different egg activation pathway from that of mammals.
This study was perfomed to investigate the differentiation of rabbit blastocysts microinjected with testosterone solution. A total of 140 mixed breed does was superovulated, synchronized and hand mated. The eggs were flushed from uterine horns between 65 and 89 hrs after mating. Testosterone was dissolved in 95% ethanol and diluted with PBS at the ratio of 1: 99. Final concentration of testosterone was adjusted to 1 pg /ml. 6~8 bias-tocysts were microinjected with 1~10 p Q of the diluted testosterone solution, and tranfer-red into the uterine horns of the synchronized recipients. When 140 donor does were treat-ed with a single does of 200 IU PMSG in combination with 100 IU RCG 48 hrs apart, 134 of them(97%) showed standing estrus. Ovarian responses of 117 does were examined following mating and the rate of ovulation was 11.23 i 1.20. Ova were recovered from donors between 65 and 89 hrs after mating. Recovery rates of ova were 37.5% and 42.2% of recovered ova were blastocysts. A total of 106 blastsocysts were microinjected with testosterone solution and transferred into the uterine horns of 15 synchronized recipient does. One of the recipients was pregnant and delivered 7 baby rabbits. The external genitalia of the young rabbits appered to be the same appearance as the buck entierly.
These experiments were carried out to develop the practical technique for the production of identical twins in cattle. Morula and blastocyst stage embryos collected from superovulated donors were bisected into halves by micromanipulation. The resulting demi-embryos were transferred to the uterine horn ipsilateral to the corpus luteum of synchronous recipients. The viability of demi-embryos after splitting was also evaluated by culturing demi-embryos with and without a zona-pellucida. The results obtained in these experiments were summarized as follows : 1. Of total 132 embryos collected by superovulation from 29 donors, 37 embryos were morular and 30 at blastocyst stages. 2. Total 111 demi-embryos were produced from 67 embryos by bisection and 98% of those were normal in morphology. 3. The viability of the demi-embryos cultured with zona-pellucida ranged from 70 to 76.5% and that of the demi-embryos without from 53.8 to 69.2%. 4. The viability of demi-embryos obtained from morula was 63.6% and that of demi-embryos from blastocyst was 73.3%, respectively. 5. 35 demi-embryos were transferred to 21 recipients, 7 of which were confirmed to be pregnant by rectal palpation at 55∼60 days after embryo transfer. One of them produced a calf and 6 are still on pregnancy.
This study was carried out to improve a technique of cloned animal prodcution by preactivation of nuclear recipient oocytes with ionomycin and 6-dimethylaminopurine (6-DMAP) in rabbits. The oocytes were collected from the oviduct of superovulated rabbit at 19∼20 hours post hCG injection. The collected oocytes were preactivated and self-enucleated by treating 5 uM ionoycin for 5 min, and 2.0 mM 6-DMAP for two hours. Microsurgical removel of the chromation complex in the second polar bodies was effectively performd and single blastomere separated from 32-cell stage rabbit embryos was injected into the perivitelline space of the enculeated recipient oocyts. Follwoing electrofusion and in vitro culture for 18 hours, the nuclear transplant(NT) embryos were transferred into the uterine horns of naturally mated or synchronized recipient does. When 32 NT embryous reconstituted with preactivated oocytes were transferred to 2 recipient does, one foster doe delivered two offspring (6.3%), while not a offspring was delivered from three foster does which received 17 NT embryos reconstituted with non-preactivated oocytes. A total of 68 NT embryos reconstituted with preactivated oocytes were transferred into the uterine horns of 7 synchronized ecipient does. Among them, two recipients were pregnant and delivered three offspring(5.9%).
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