Rehmannia glutinosa is one of the most important medicinal crops in Korea. However, various plant pathogens, including Fusatium spp., cause great damage on R. glutinosa and result in enormous economic losses. This study was conducted to breed Fusarium-resistant plants by using Agrobacterium tumefaciences and AFP (anti-fungal protein) gene. The plant material used was a native accession of R. glutinosa. The PCR analysis was conducted to verify transgenicity. Based on the PCR analysis, nptII band was observed in transgenic plant genome. Southern blot and AFP protein analyses also showed the expression of this gene in transgenic plants. Expression of AFP in transgenic plants offers the possibility of developing resistance to fungal infection.
We have studied the genetic differences among four isolates of Trichinella including a new strain of Trichinella spiralis (ISS 623) recently found from a human case who took a badger in Korea. Because they have a different host origin and came from geographically separated regions, we supposed the genetic pattern of the isolates might be different as had been previously reported. It was analysed by PCR-RFLP analysis of the rDNA repeat that can readily distinguish a species or strain from others. Isolated genomic DNA of each isolate of Trichinella larvae was amplified with ITSl specific primers and digested with restriction endonucleases. The PCR product of ITSl was confirmed using Southern blot analysis to be a 910 Up fragment. The restriction fragments of each isolate had variable patterns when it was digested with Rsa I only. According to the RFLP patterns, the estimated genetic divergence between each isolate was different. In conclusion, four isolates of Thichinella including a new strain of T. spiralis obtained from a Korean patient may have genetic differences in the ITSl region and the Shanghai isolate was genetically more similar to the Japanese unknown isolate than others in the ITSl region.
Kim, Jong-Bae;Kim, Geun-Hee;Kim, Hong;Jin, Hyun-Seok;Kim, Young-Sam;Ha, Soo-Hyun;Lee, Dong-Ki
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.35
no.4
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pp.283-288
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2000
The PCR primer set JW21-JW22 of Weiss et al. (19), which was reported to amplify a 139-bp fragment of the l6S rRNA gene of Helicobacter pylori, has been recently used for the detection of H. pylori in clinical specimens. However, when we applied JW21-JW22 PCR to other members of the genus Helicobacter and unrelated microorganisms, all of these bacteria produced a 139-bp PCR product. Therefore, we designed a novel primer set, HPU185-HPL826, which produced a 642-bp amplicon of the l6S rRNA gene of H. pylori. Then we further examined the specificity of the novel PCR assay using Southern blot hybridization with an internal probe, HPP225. The PCR assay described in this study was shown to be highly sensitive and specific only to the H. pylori 16S rRNA gene sequences.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.18
no.1
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pp.69-76
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1998
This study was conducted to construct of the transgenic plants wliich are resistant to oxidative stresses including ozone with B. mpestris cytosolic glutathione reductase cDNA using the binary vector system of Agrobacterium tumefaciens. The 1.8kb B. campestris cytosolic GR cDNA was subcloned into the unique Sma I site of the plant transformation vector pBKSI- I, downstream of the constitutive CaMV 35s promoter and upstream of the nos termination sequence, in place of the uidA (GUS) reporter gene. The resulting plant transformation vector, pBKS-GRI, was introduced into A. tumefaciens LBA4404 by two cycles of tkeze-thaw method. The B. nqus cotyledonary petioles were transformed by the Agrubaferium harboring pBKS-GRI. Transformed shoots were induced and selected on regeneration medium supplemented with kanarnycin. The shoot formation was increased remarkably by addition of Ag$NO_3$, in MS media. The transgenic plants were analyzed for the presence of the B. campestris GR gene by Southern blot analysis and it was confirmed that a foregin gene was stably integrated into the genomes of B. nqus plants.
The pWHM220 cosmid with a 24-kb insert cloned from Streptomyces albus ATCC 21838 induces the biosynthesis of a polysther antibiotic similar to salinomycin in Streptomyces invidans. We have analyzed this region by DNA sequencing as well as Southern blot hybridization with type I and type II polyketide synthase (PKS) probes. Surprisingly, we found another set of type II SKS genes only 10-kb from the original PKS genes, salABCDE. The DNA sequence revealed two complete open reading frames (ORFs) named salB2 and salC2, and one partial ORF that does not resemble any known DNA or deduced protein sequence. The salC2 should code for chain length determining factor while the deduced amino acid sequence encoded by salB2 exhibits high similarity to .betha.-ketoacyl synthase from different PKS gene clusters. The highest identity was found for .betha.-keetoacyl synthases from S. argillaceus (MtmP. 59.1% identity), the mithramycin producer and from S. venezuelae ISP5230 (JadA, 52.3% identity), the jadomycin producer. The SalC2 protein clearly resembles its counterparts in order aromatic PKS gene clusters that are believed to influence the length of the polyketide chain. The highest identities observed were to that of S. argillaceus (MtmK, 62.3%) and S. venezuelae ISP 5230 (JadB, 55.1%) proteins, Moreover, the deduced amino acid sequences of the salB2 and salC2 products were 29.0% identical.
Kim, Sung-Hyun;Lee, Jae-Rin;Shin, Yong-Uk;An, Gyn-Heung;Kim, Seong-Ryong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.4
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pp.475-481
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1999
The study of lignin, a major component of secondary cell wall, has been partly focused on its removal from the woody part in the kraft pulping industry. Cinnamyl alcohol dehydrogenase (CAD; EC 1.1.l95) catalyzes the synthesis of cinnamyl alcohols from corresponding cinnamaldehydes. A cDNA clone, MdCADl, encoding putative CAD from apples (Malus domestica Borkh. cv Fuji) was characterized in this study. The clone contains an open reading frame of 325 amino acid residues, which shows a greater than 80% identity with Eucalyptus CADl. MdCADl mRNA was detectable in vegetative tissues and was strongly expressed in the fruit. The expression pattern of MdCADl mRNA in the fruit peel after light exposure was also examined. The mRNA was rapidly increased until 1 day after light exposure and remained stable thereafter, suggesting that MdCADl is light inducible. The inducibility of the MdCADl gene was examined using several environmental stresses. Mechanical wounding of leaves increased the MdCADl mRNA level and the induction was further increased by salicylic acid. Southern blot hybridization showed that there is either one or a few copies of CAD genes in apples. To our knowledge, it is believed that MdCADl is the first CAD clone expressed predominantly in fruit.
Cotyledonary petioles of Brassica napus cocultivated with Agrobacterium vectors for 72 h were transferred to MS medium with 0.5 mg/L NAA, 2.0 mg/L BA, 30 mg/L kanamycin, 100 mg/L cefotaxime, 30 g/L sucrose, 3 mg/L $\textrm{AgNO}_{3}$ and 2 g/L Gelrite. The cotyledonary petioles with green shoots were selected at a frequency of 17.5% in a selection medium and then rooted. Southern blot analysis confirmed the rolC and NPT IIgenes were incorporated into the regenerated plants. The stable inheritance of rolC gene was confirmed in progeny test of transgenic plants.
As Agrobacterium tumefaciens, which has long been used to transform plants, is known to transfer T-DNA to budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, a variety of fungi were subjected to the A. tumefaciens-mediated transformation to improve their transformation frequency and feasibility. The A. tumefaciens-mediated transformation of chestnut blight fungus, Cryphonectria parasitica, is performed in this study as the first example of transformation of a hardwood fungal pathogen. The transfer of the binary vector pBIN9-Hg, containing the bacterial hygromycin B phosphotransferase gene under the control of the Aspergillus nidulans trpC promoter and terminator, as a selectable marker, led to the selection of more than 1,000 stable, hygromycin B-resistant transformants per 1${\times}$10$\^$6/ conidia of C. parasitica. The putative transformants appeared to be mitotically stable. The transformation efficiency appears to depend on the bacterial strain, age of the bacteria cell culture and ratio of fungal spores to bacterial cells. PCR and Southern blot analysis indicated that the marker gene was inserted at different chromosomal sites. Moreover, three transformants out of ten showed more than two hybridizing bands, suggesting more than two copies of the inserted marker gene are not uncommon.
The Crustacean hyperglycemic hormone (CHH) has been shown to exist as multiple molecular forms in several crustacean species. In Penaeus monodon, a gene encoding CHH (so-called Pem-CHH1) was recently described. In this study, the molecular structures of two other CHH genes (Pem-CHH2 and Pem-CHH3) are reported. Both the Pem-CHH2 and Pem-CHH3 genes contain three exons that are separated by two introns that are similar to the structure of other genes in the same family. An analysis of the upstream nucleotide sequences of each Pem-CHH gene has identified the putative promoter element (TATA box) and putative binding sites for several transcription factors. The binding sites for CREB, Pit-1, and AP-1 were found upstream of all three Pem-CHH genes. A Southern blot analysis showed that at least one copy of each Pem-CHH gene was located within the same 10 kb genomic DNA fragment. These results suggest that the CHH genes are arranged in a cluster in the genome of P. monodon, and that their expression may be modulated by similar mechanisms.
Sang-Kyu Lee;Soo-Jung Lee;Na-Yeon Ryoo;Jang-Wook Lee;Seok-Yoon Yoon;Woon-Chul Shin;Se-Ho Ko;Deok Chun Yang;Youn-Hyung Lee
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2003.04a
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pp.126-126
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2003
Sucrose-phosphate synthase (SPS) is a key regulatory enzyme in sucrose synthesis. To investigate the role of SPS in carbon partitioning, we produced transgenic rice plants overexpressing a cyanobacterial SPS from Synechocystis sp. PCC 6803. The gene was expressed under the control of the maize Ubil promoter in transgenic plants. Southern and Northern blot analyses confirmed the integration and the expression of the transgene in four transgenic rice lines. All of the four transgenic! lines analyzed showed abnormal vegetative and reproductive developments. Analysis of SPS activities and primary metabolites in the transgenic rice plants will be presented.
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