Cheng, Guangyan;He, Liying;Sun, Zhibin;Cui, Zhongli;Du, Yingxiang;Kong, Yi
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권9호
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pp.1449-1459
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2015
A novel proteolytic enzyme with fibrinolytic activity, FSP3, was purified from the recently isolated Streptomyces sp. P3, which is a novel bacterial strain isolated from soil. FSP3 was purified to electrophoretic homogeneity by ammonium sulfate precipitation, anion exchange, and gel filtration. FSP3 is considered to be a single peptide chain with a molecular mass of 44 kDa. The maximum activity of the enzyme was observed at 50℃ and pH 6.5, and the enzyme was stable between pH 6 and 8 and below 40℃. In a fibrin plate assay, FSP3 showed more potent fibrinolytic activity than urokinase, which is a clinical thrombolytic agent acting as a plasminogen activitor. The activity was strongly inhibited by the serine protease inhibitor PMSF, indicating that it is a serine protease. Additionally, metal ions showed different effects on the activity. It was significantly suppressed by Mg2+ and Ca2+ and completely inhibited by Cu2+, but slightly enhanced by Fe2+. According to LC-MS/MS results, its partial amino acid sequences are significantly dissimilar from those of previously reported fibrinolytic enzymes. The sequence of a DNA fragment encoding FSP3 contained an open reading frame of 1287 base pairs encoding 428 amino acids. FSP3 is a bifunctional enzyme in nature. It hydrolyzes the fibrin directly and activates plasminogen, which may reduce the occurrence of side effects. These results suggest that FSP3 is a novel serine protease with potential applications in thrombolytic therapy.
We isolated and identified culturable Arctic bacteria that had inhabited soils around the Korean Arctic Research Station Dasan located at Ny-Alsund, Svalbard, Norway $(79^{\circ}N,\;12^{\circ}E)$. The collected soils were diluted in distilled water; the diluted soil-water was spread on 3M petri-films at Dasan Station. The petri-films were transported to the laboratory at KORDI, and cultured at $4^{\circ}C$. Colonies grown on the petri-films were subsequently cultured on nutrient agar plates at $4^{\circ}C$ every 7 days. The pure colonies were inoculated into nutrient liquid media, genomic DNA was extracted, and phylogenetic analysis was performed on the basis of 165 rDNA sequences. A total of 227 strains of bacteria were isolated. Among them, 16S rDNA sequences of 185 strains were identical with those of known strains isolated in this study, and 42 strains were finally identified. Phylogenetic analysis using 16S rDNA indicated that the 30 strains belonged to Pseudomonas, 7 strains to Arthrobacter, two strains to Flavobacterium, and the remaining to Achromobacter, Pedobacter, and Psychrobacter. Among the 42 strains, 14 bacteria produced protease: they were 6 strains of Pseudomonax, 4 strains of Arthrobater, an Achromobacter strain, 2 strains of Flavobacterium, and a Pedohacter strain. We expect these Arctic bacteria can be used for screening to develop new industrial enzymes that are active at low temperatures.
Trichoderma (Hypocreaceae) is one of the most ubiquitous genera worldwide. This genus has an excellent ability to adapt to diverse environments, even under poor nutritional conditions, such as in freshwater. However, little is known about the diversity of Trichoderma species in freshwater environments. In this study, we isolated diverse fungal strains from algae, plant litter, and soil sediment in streams in Korea. The strains were identified based on molecular phylogenetic analyses of internal transcribed spacer (ITS) rDNA and translation elongation factor 1 ($TEF1{\alpha}$) sequences. We also investigated their morphological characteristics by microscopic observation and determination of cultural features on different media. As a result, six Trichoderma species were found in Korea: T. afroharzianum, T. capillare, T. guizhouense, T. paraviridescens, T. reesei, and T. saturnisporum. Interestingly, T. paraviridescens showed both cellulose activity and hypoxia stress tolerance phenotypes, indicating its role as a decomposer in freshwater ecosystems. Our study revealed that freshwater environment could be a good candidate for investigating the species diversity of Trichoderma.
Streptococcus sp. TR-1 which has inducible resistance to MLS antibiotics was isolated from soil samples in Korea. Streptococcus sp. TR-1 was cultured in Lysis broth, then a plasmid was isolated by modified Elliker method. Bacillus subtilis UOTO277 was transformed with that plasmid. This result showed that the plasmid has the gene relating with inducible resistance to MLS antibiotics. It was named pMB4 and its size was determined about 2.4 Kb by results of digestion with various restriction enzymes. Restriction endonuclease cleavage site map of pMB4 plasmid was made by double digestion of the plasmid. pMB4 plasmid has different restriction endonuclease site map from the other plasmids that have been discovered in Streptococcus sp. so far. And it could be identified that pMB4 plasmid does not have homology with ermK of Bacillus licheniformis EMR but has homology with ermC of Staphylococcus aureus from the results of Southern hybridization.
An endospore-forming, rod-shaped bacterium was isolated from forest soil samples collected at the Taebaek mountain of Gangwon province, Korea, and taxonomically characterized by physiological, biochemical and phylogenetic methods. Its 16S rRNA sequences showed the maximum similarity of 97% with B. amyloliquefaciens. In addition, the isolate BCNU 2002 was determined to have the ability to produce enzymes such as amylase, protease, gelatinase and catalase. The in vitro antifungal activity of Bacillus sp. BCNU 2002 was also examined against human pathogenic fungi such as Aspergillus niger, Candida albicans, Epidermophyton floccosum, Saccharomyces cerevisiae, Trichophyton mentagrophytes and Trichophyton rubrum. A maximum production level of antifungal substances of Bacillus sp. BCNU 2002 was achieved under aerobic incubation at $28^{\circ}C$ for 7 days in LB broth. BCNU 2002 showed strong antifungal activities against T. mentagrophytes and T. rubrum with the range of percentage inhibition from 56.25 to 63.23%. It was also confirmed that ethylacetate extract of cultured broth showed a strong antifungal activity against A. niger, C. albicans, S. cerevisiae and T. rubrum by agar diffusion method. The peptide fraction also exhibited broad antifungal spectrum against various pathogenic fungi. The minimum inhibitory concentration values for active extracts ranged between 125 ${\mu}g$/mL and 1000 ${\mu}g$/mL.
Oyinade A., David;Oluwole, Osonubi;Jacob, Oyetunji Olusola
Journal of Plant Biotechnology
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제46권4호
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pp.331-337
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2019
Digitaria exilis L. is an under-utilized crop with high nutritional and medicinal values. It thrives in and is well-adapted to arid areas with low soil nutrients. Using biochemical markers, this study investigates the mechanisms by which D. exilis responds to osmotic stress. Three accessions Dinat Iburua (DIN), Jakah Iburua (JAK) and Jiw Iburua (JIW) were collected from National Cereal Research Institute, Niger State. Two accessions, NG/11/JD/061 and NG/11/JD/062 were also collected from National Centre for Genetic Resources and Biotechnology, Ibadan. Murashige and Skoog medium of approximately 1.2 L was supplemented with polyethylene glycol 6000 to create osmotic pressures of -9.29, -13.93, -20.13, -26.32, -32.51, and 0 MPa (control). Sterilized seeds were inoculated in the medium and placed in the growth room for 4 weeks. Proline accumulation was significantly high in all JAK plants under osmotic stress. Proline and ascorbate peroxidase (p<0.05) activities were directly correlated, thus reinforcing the survivability of JAK during stress. Catalase (CAT) activity was also significantly induced in JAK under osmotic stress, which synergistically improved its tolerability. As a result, >50% of OH-, H2O2, and NO radicals were scavenged. However, other accessions including DIN, NG061, NG062, and JIW showed variations in their responses to different levels of osmotic stress, although not significant. Therefore, JAK possesses a well-equipped free radical quenching system that is protected by the accumulation of the osmolyte proline; therefore, accession JAK is considered osmotolerant. CAT and superoxide dismutase activities were osmostabilized against oxidative stress by proline.
Bacillus stearothermophilus No. 236 isolated from the soil is a strong xylan degrader producing all the xylanolytic enzymes. However, the strain was discovered to be highly intractable to its transformation. In the present study, we have developed a reliable method for transformation of B. stearothermophilus No. 236 by a systematic examination of several factors which might have an influence on the efficiency of electrotransformation. Notably, we found that the most critical factor influencing the transformation efficiency (TE) was the incubation temperature after pulsing, with its optimum incubation of $37^{\circ}C.\; At\; 50^{\circ}C$, the optimum growth temperature of the B. stearothermophilus strain, the transformants could not be obtained at a recognizable level. The combination of field strength of 7.5 kV/cm along with pulse duration of 10 msec (resistance of $400{\Omega}\; and\; capacitance\; of\; 25{\mu}F$) was shown to be the best electrical parameters at the incubation temperature of $37^{\circ}$. A higher TE was obtained when the cells were harvested at an early-exponential phase. Twenty percent of PEG-8000 in a suspension buffer and an addition of 0.1% glycine in the growth medium resulted in about 4-fold and 3-fold increases in TE, respectively. We also found that the plasmid DNA which had been cycled through the host B. stearothermophilus cells enhanced TE by one order of magnitude higher. Under the presently described conditions, $2.5{\times}10^{5} transformants per ${\mu}g$ DNA was attained.
Pseudomonas sp.로 동정된 토양분리균의 inulinase를 ammonium sulfate 분획, DEAE Sephadex A-50 Chromatography, Sephadex G 100 및 Sephadex G200 gel여과 등의 과정을 거쳐 정제 한 결과 inulinase PI과 PII의 두 isoenzyme으로 분리되었으며 각각 약 24배와 17배 정제되어 단일단백질로 분리되었다. PI, PII 두 isoenzyme은 다같이 sucrose, raffinose 및 levan은 분해하지 못하고 inulin만을 endo-type로 분해 절단하는 $\beta$-2,1-fructanfructano hydrolase(EC 3.2.1.7)임이 밝혀졌다. 효소활성 최적온도는 두 효소가 같은데 비해 (55$^{\circ}C$), 최적 pH는 PI이 pH5.5, PII가 pH6.0으로 약간의 차이를 보였다. Inulin에 대한 Km값은 PI ; 2$\times$$10^{-3}$M, PII : 5$\times$$10^{-3}$M로써 PI효소가 PII보다 약간 높은 친화력을 보였다.
The degradation efficiency and catabolism pathways of the different methylxanthines (MXs) in isolated caffeine-tolerant strain Pseudomonas putida CT25 were comprehensively studied. The results showed that the degradation efficiency of various MXs varied with the number and position of the methyl groups on the molecule (i.e., xanthine > 7-methylxanthine ${\approx}$ theobromine > caffeine > theophylline > 1-methylxanthine). Multiple MX catabolism pathways coexisted in strain CT25, and a different pathway would be triggered by various MXs. Demethylation dominated in the degradation of N-7-methylated MXs (such as 7-methylxanthine, theobromine, and caffeine), where C-8 oxidation was the major pathway in the catabolism of 1-methylxanthine, whereas demethylation and C-8 oxidation are likely both involved in the degradation of theophylline. Enzymes responsible for MX degradation were located inside the cell. Both cell culture and cell-free enzyme assays revealed that N-1 demethylation might be a rate-limiting step for the catabolism of the MXs. Surprisingly, accumulation of uric acid was observed in a cell-free reaction system, which might be attributed to the lack of activity of uricase, a cytochrome c-coupled membrane integral enzyme.
토양 분리균인 B.stearothermophilus chromosome의 유전자 은행으로부터 E.coli HB101 균주에 $\beta$-D-xylosidase 생산능력을 갖게하는 5.4Kb와 6.4Kb의 두 DNA 절편을 분리, pBR322에 크로닝하여 각각 pMG01과 pMG02의 재조합 플라스미드를 얻었다. 상기 두 B.stearothermophilus DNA 절편의 restriction map을 작성하고 이것을 기초로 하여 $\beta$-D-xylosidase 유전자인자의 위치를 확인함과 동시에 pUC18에 subcloning하여 각각 2.2kb와 1.0kb의 DNA 단편이 삽입된 $\beta$-D-xylosidase 양성의 pMG1와 pMG2를 분리하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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