Ras superfamily에 속하는 monomeric small GTPase는 현재까지 170여 종이 알려져 있으며 이들은 세포 신호전달에 있어서 분자 스위치(molecular switch)로 작용하고 있다. Ras GTPase는 guanosine diphosphate (GDP)와 결합하여 불활성화 되거나 혹은 guanosine triphosphate (GTP)와 결합하여 활성화되는 guanosine nucleotide 결합단백질로서 세포내의 수많은 생리작용을 조절하고 있다. 즉, 쉬고 있던 불활성화 상태의 Ras-GDP는 외부 신호에 반응하여 활성화 된 guanine nucleotide exchange factor (GEF)에 의하여 활성형인 Ras-GTP상태로 전환되어 그 하류로 신호를 전달하는 효과기로 작용하게 된다. 신호전달을 마친 Ras-GTP는 다시 불활성형인 Ras-GDP로 전환되어야 하는데 Ras 자체의 GTPase 활성이 미약하여 RasGTPase activating protein (RasGAP)의 도움을 받아야만 한다. 이와 같이 Ras GTPase는 GEF와 GAP의 활성으로 세포 안의 스위치를 켜고 끄게 된다. 현재까지 알려진 인간 암(cancer)의 30% 이상이 돌연변이를 포함하는 Ras switch의 비정상적인 작동에 기인한다는 점이 밝혀져 있으므로 Ras GTPase의 구조와 생리적 기능에 대한 최근의 연구결과들을 요약하였다. 나아가 GTPase activating protein으로서의 기능을 상실한 RasGAP분자의 돌연변이는 세포 안의 Ras 스위치를 계속 켜 두는 상태인 Ras-GTP 상태를 유발함으로서 종국에는 암의 발생을 촉발하게 된다. 이에, 본고에서는 최근에 와서 tumor suppressor로서 알려지면서 암의 치료 표적단백질로 떠오르게 된 RasGAP의 인체생리학적 기능을 고찰하였다. 인간 게놈 안에는 RASA1, NF1, GAP1 family 및 SynGAP family 등에 속하는 14종의 RasGAP 분자들이 존재하는데 이들 GAP분자들의 이상과 인간 질병의 연관성에 대한 최근의 연구결과들에 대해 고찰하였다.
Nucleoside diphosphate kinase (NDPK) is involved in multiple signaling pathways in mammalian systems, including G-protein signaling. Arabidopsis NDPK2, like its mammalian counterparts, is multifunctional despite its initial discovery phytochrome-interacting protein. This similarity raises the possibility that NDPK2 may play a role in G-protein signaling in plants. In the present study, we explore the potential relationship between NDPK2 and the small G proteins, Pra2 and Pra3, as well as the heterotrimeric G protein, GPA1. We report a physical interaction between NDPK2 and these small G proteins, and demonstrate that NDPK2 can stimulate their GTPase activities. Our results suggest that NDPK2 acts as a GTPase-activating protein for small G proteins in plants. We propose that NDPK2 might be a missing link between the phytochrome-mediated light signaling and G protein-mediated signaling.
Interferon regulatory factor 3 (IRF3) integrates both immunological and non-immunological inputs to control cell survival and death. Small GTPases are versatile functional switches that lie on the very upstream in signal transduction pathways, of which duration of activation is very transient. The large number of homologous proteins and the requirement for site-directed mutagenesis have hindered attempts to investigate the link between small GTPases and IRF3. Here, we constructed a constitutively active mutant expression library for small GTPase expression using Gibson assembly cloning. Small-scale screening identified multiple GTPases capable of promoting IRF3 phosphorylation. Intriguingly, 27 of 152 GTPases, including ARF1, RHEB, RHEBL1, and RAN, were found to increase IRF3 phosphorylation. Unbiased screening enabled us to investigate the sequence-activity relationship between the GTPases and IRF3. We found that the regulation of IRF3 by small GTPases was dependent on TBK1. Our work reveals the significant contribution of GTPases in IRF3 signaling and the potential role of IRF3 in GTPase function, providing a novel therapeutic approach against diseases with GTPase overexpression or active mutations, such as cancer.
Heterotrimeric GTP binding proteins, G-proteins, mediate signal transduction generated by neurotransmitters and hormones. Among G-proteins, Go proteins are the most abundant in brain and classified as a member of Gi family. Ras-like protein in all tissues (Rit), one of the small GTPases, is a member of a Ras superfamily and identified as an important regulator of neuronal differentiation and cell transformation. Recently, we have reported that Rit functioned as a candidate downstream effector for alpha subunit of Go proteins ($Go{\alpha}$) and regulated neurite outgrowth triggered by $Go{\alpha}$ activation. In this study, we showed that the GTPase domain of $Go{\alpha}$ contributed to the direct interaction with Rit. We also demonstrated that $Go{\alpha}$ could lead to an increase of Rit activity suggesting that Rit play a role as a downstream effector of $Go{\alpha}$.
Objectives : This study was conducted to investigate the effects of major constituents of Epimedium koreanum Nakai (Icariin, epimedium A, epimedium B, and epimedium C) on melanin synthesis. Methods : We measured melanin contents, tyrosinase activity, and expression of Rab27a in B16F10 cells cultured with Epimedium koreanum Nakai ethanol extract (EKN) and their major constituents. After treatment with H89 and dibutyryl cAMP, which inhibit or promote the activation of PKA, we observed changes in melanin synthesis and tyrosinase activity stimulated by EKN. Results : Among them, EKN and icariin enhanced tyrosinase activity and melanin contents. We confirmed that EKN augmented melanin synthesis via cAMP/PKA pathway. Icariin-induced tyrosinase activity and melanin content were attenuated by PKA inhibitor H89, while melanogenic effect of icariin was further augmented by cAMP analog, dbc AMP. However, icariin did not affect the expression of small GTPase Rab27a involved in melanosome transport. Conclusions : These results suggest that icariin promotes melanogenesis through cAMP/PKA pathway but does not affect small GTPase Rab27a.
During mitosis, genomic integrity is maintained by the proper coordination of anaphase entry and mitotic exit via mitotic checkpoints. In budding yeast, mitotic exit is controlled by a regulatory cascade called the mitotic exit network (MEN). The MEN is regulated by a small GTPase, Tem1p, which in turn is controlled by a two-component GAP, Bfa1p-Bub2p. Recent results suggested that phosphorylation of Bfa1p by the polorelated kinase Cdc5p is also required for triggering mitotic exit, since it decreases the GAP activity of Bfa1p-Bub2p. However, the dispensability of GEF Lte1p for mitotic exit has raised questions about regulation of the MEN by the GTPase activity of Tem1p. We isolated a Bfa1p mutant, $Bfa1p^{E438K}$, whose overexpression only partially induced anaphase arrest. The molecular and biochemical functions of $Bfa1p^{E438K}$ are similar to those of wild type Bfa1p, except for decreased GAP activity. Interestingly, in $BFA1^{E438K}$ cells, the MEN could be regulated with nearly wild type kinetics at physiological temperature, as well as in response to various checkpoint-activating signals, but the cells were more sensitive to spindle damage than wild type. These results suggest that the GAP activity of Bfa1p-Bub2p is responsible for the mitotic arrest caused by spindle damage and Bfa1p overproduction. In addition, the viability of cdc5-2 ${\Delta}bfa1 $ cells was not reduced by $BFA1^{E438K}$, suggesting that Cdc5p also regulates Bfa1p to activate mitotic exit by other mechanism(s), besides phosphorylation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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