This study was to investigate the effects of electrofusion, activation and developmental stage of donor embryos on in vitro development of nuclear transplant bovine embryos. A single blastomere nucleus from 8-cell to morula stage embryos produced by in vitro fertilization(IVF) was transferred into a recipient oocyte enucleated at 23∼25 h after in vitro maturation(IVM) or into a recipient oocyte enucleated and cultured for 14∼15 h. In one experiment the nuclear transplant embryos were subjected to additional activation treatments. Fusion rate of nuclear transplant eggs was high at direct current(D.C) voltages of 1.0 and 1.5 kV/cm 991.5 and 93.3%, respectively), but decreased at 2.0kV/cm (81.8%). Additional activation treatments by electric pulases or 7% ethanol did not affect the cleavage and development of nuclear transplant embryos. Development of nuclear transplant embryos slightly increased by delayed nuclear transfer and fusion (42∼43 h after IVM). With this system, blastocysts were obtained from transfer of 8-cell to morula stage donor nuclei (9.6%∼2.4%). The result of this study suggests that nucleo-cytoplasmic interactins, expecially activation of ooplast are very important for the development of nuclear transplant embryos, and donor cell stage does not affect the development of nuclear transplant embryos.
This study was carried out to improve a technique of cloned animal prodcution by preactivation of nuclear recipient oocytes with ionomycin and 6-dimethylaminopurine (6-DMAP) in rabbits. The oocytes were collected from the oviduct of superovulated rabbit at 19∼20 hours post hCG injection. The collected oocytes were preactivated and self-enucleated by treating 5 uM ionoycin for 5 min, and 2.0 mM 6-DMAP for two hours. Microsurgical removel of the chromation complex in the second polar bodies was effectively performd and single blastomere separated from 32-cell stage rabbit embryos was injected into the perivitelline space of the enculeated recipient oocyts. Follwoing electrofusion and in vitro culture for 18 hours, the nuclear transplant(NT) embryos were transferred into the uterine horns of naturally mated or synchronized recipient does. When 32 NT embryous reconstituted with preactivated oocytes were transferred to 2 recipient does, one foster doe delivered two offspring (6.3%), while not a offspring was delivered from three foster does which received 17 NT embryos reconstituted with non-preactivated oocytes. A total of 68 NT embryos reconstituted with preactivated oocytes were transferred into the uterine horns of 7 synchronized ecipient does. Among them, two recipients were pregnant and delivered three offspring(5.9%).
Objective: To determine whether the serum ${\beta}$-human chorionic gonadotropin (hCG) profile following preimplantation genetic diagnosis (PGD) is lower than that of intracytoplasmic sperm injection (ICSI) cycles. Methods: A total of 129 PGD cycles and 1,161 age-matched ICSI cycles, which resulted in pregnancy (serum ${\beta}-hCG{\geq}5$ mIU/mL) on post-ovulation day (POD) 12 were included. We compared the mean serum ${\beta}$-hCG levels on POD 12, 14, 21, and 28, doubling time of serum hCG, and created a cut-off value for predicting a singleton pregnancy in each group. Results: The mean serum ${\beta}$-hCG concentration of the PGD group was significantly lower than that of the control group on POD 12, 14, and 21. The doubling time of serum ${\beta}$-hCG at each time interval showed no significant difference. The cut-off-value of serum ${\beta}$-hCG for predicting a single viable pregnancy was 32.5 mIU/mL on POD 12 and 113.5 mIU/mL on POD 14 for the PGD group, which was lower than that for the control group. Conclusion: Blastomere biopsy may decrease the ${\beta}$-hCG-producing activity of the trophoblasts, especially in early pregnancy. Setting a lower cut-off value of serum ${\beta}$-hCG for predicting pregnancy outcomes in PGD may be needed.
Duchenne/Becker muscular dystrophy are the major neuromuscular disorders with X-linked recessive inheritance. Preimplantation diagnosis of sex determination has been generally used to avoid male pregnancies with these diseases. However, in order to determine if the embryo is normal, carrier or affected regardless of the sex, there is a need for a combined analysis of specific exon on dystrophin gene as well as sex determination of embryo using the same biopsied blastomere. If the exon deletion is not determinable, further diagnosis of carrier or patient can be performed by haplotype analysis. In this study, we applied the primer extension preamplification (PEP) method, which amplifies the whole genome, in 40 cases of single amniocyte and 40 cases of chorionic villus cell. We analysed haplotypes using two (CA)n dinucleotide polymorphic markers located at the end of 5' and 3' region of the dystrophin gene. Exon 46 of dystrophin gene and DYZ3 on chromosome Y were chosen as a target sequence for coamplification PCR. Upon optimizing the conditions, the amplification rates were 91.25% (73/80) for haplotypes (92.5% in amniocyte, 90% in chorionic villus cell) and 88.75% (71/80) for coamplification (85% in amniocyte, 92.5% in chorionic villus cell). The result of the study indicates that haplotypes analysis and coamplification of dystrophin and Y-specific gene using PEP can be applied to prenatal and preimplantation diagnosis in Duchenne/Becker muscular dystrophy making it possible to determine if the fetus is a carrier or an affected one.
Kim, Sung-Ah;Kang, Moon-Joo;Kim, Hee-Sun;Oh, Sun-Kyung;Ku, Seung-Yup;Choi, Young-Min;Jun, Jong-Kwan;Moon, Shin-Yong
Journal of Genetic Medicine
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제9권1호
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pp.11-16
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2012
Purpose: To determine a method to improve the efficacy and accuracy of preimplantation genetic diagnosis (PGD) - polymerase chain reaction (PCR), we compared hot start PCR and conventional multiplex nested PCR. Materials and Methods: This study was performed with single lymphocyte isolated from whole blood samples that were obtained from two couples with osteogenesis imperfecta (OI). We proceeded with conventional multiplex nested PCR and hot start PCR in which essential reaction components were physically removed, and we compared the amplification rate, allele dropout rate and nonspecific products. Afterward, we used selective method for PGD. Results: In the two couples, the respective amplification rate were 93.5% and 80.0% using conventional multiplex nested PCR and 95.5% and 92.0% using hot start PCR. The respective mean allele dropout rates for the two couples were 42.0% and 14.0% with conventional multiplex nested PCR and 36.0% and 6.0% with hot start PCR. Conclusion: The results demonstrate that the hot start PCR procedure provides higher amplification rates and lower allele dropout rate than the conventional method and that it decreased the nonspecific band in multiplex nested PCR. The hot start method is more efficient for analyzing a single blastomere in clinical PGD.
본 연구는 2-, 4- 또는 8-세포기 생쥐 수정란으로부터 분리된 단일 할구의 발달 및 완만동결 후 생존능력을 조사하기 위하여 실시하였다. 2-, 4-또는 8-세포기 생쥐 수정란에서 각각 223개, 60개, 188개의 할구를 분리하여 96시간 배양하였는데 이중 2-세포기 수정란으로부터 분리된 할구는 111개(49.8%)가 배반포기까지 발육하였으며, 4-세포기와 8-세포기 수정란으로부터 분리된 할구는 각각 12개(20.0%)와 31개(16.5%)가 배반포기까지 발육하였다. 분리된 할구를 완만 동결한 후 융해하여 배양했을 때 배반포기까지의 발육율은 2-세포기 할구는 27.1%(16/50), 4-세포기 할구는 36.4%(4/11) 그리고 8-세포기 할구는 17.6%(3/17)였으며, 융해 후 할구 회수율은 각각 54.2%(65/120), 46.4%(13/28), 24.3%(17/70)을 나타냈다. 2-세포기 할구를 동결 융해한 후 동기화시킨 생쥐 자궁에 이식하여 정상적으로 발달한 태아를 생산하였다. 본 실험의 결과로 완만동결방법이 생쥐의 할구를 동결 보존하는데 이용될 수 있음을 확인하였다.
The objective of the present experiments were to determine whether micromanipulative and electro-stimulation conditions for blastomere survival overlapped those for oocyte activation in porcine. Eggs selected for in vitro development potential of blastomeres isolated from 4-cell embryos and oocyte activation by electrostimulation were equilibrated for 5~10 min, in 0.3M sucrose solution containing 7.5$\mu\textrm{g}$/ml cytochalasin B, and then electrostimulated for 30$\mu$sec using one pulse of 100, 120, 150 or 180 volts DC with electrodes 0.2mm apart. Single blastomeres were inserted into empty zona pellucida prior to electrostimulaticn. Then they were cultured in 20${mu}ell$ drops of fresh BECM to observe their developmental ability in vitro in a humidified incubat or at 38.5$^{\circ}C$. The results obtained from these experiments are as follows : 1. When one pulse of 100, 120, 150 or 180 volts DC for 30$\mu$sec were applied to porcine oocytes having the slit formed on zona pellucida for activation, activation rates were 65.1, 66.7, 70.7 and 91.7%, respectively. Higher activation rate was observed in 180V. 2. Infact oocytes incubated for 30 min, in 0.3M sucrose solution after electrostimulation were significantally different from control group with increasing of voltages(p<0.05). When voltages used for electrostimulation were increased, activation rates of oocytes were improved in all treatment groups. 3. When zona punctured-oocytes were only electrostimulated, or incubated in 0.3M sucrose solution for 30 min. after electrostimulation at 180 volt DC, activation rates were 90.5 and 95.5%, respectively. And activation rates of zona punctured-oocytes were significantly different from the groups for which zona pellucida was not punctured(P<0.05). 4. When single blastomeres form 4-cell transferred into empty zona pellucida were incubated for 0, 15 and 30 min. in 0.3M sucrose solution after electrostimulation using one pulse of 180 volt DC for 30 $\mu$sec, developmental rates of electrostimulated-single blastomeres to blastocyst were 72.5, 59.0 and 51.2%, respectively, and the ratio of control group developed to blastocyst were 80.0%. 5. The average cell number in electrostimulated-blastomeres developed to blastocyst were 7.9~10.8, and reduced than the cell number in diploid control ; Also cell number decreased with increasing of voltages. The results of these experiments indicate that the optimal condition for achieving in vitro developmental ability of single 4-cell blastomeres and oocyte activatin is 1 pulse, duration 30 $\mu$sec. in 180 volt, and incubation of blastomeres and oocytes in 0.3M sucrose solution after electrostimulation was not significantally different from another treatment groups. The results also show that this condition is suitable for nuclear transplantation using porcine eggs.
포유동물 초기 수정란의 성판별에 있어서 biopsied 수정란의 생존성과 성판별의 정확도는 동시에 중요하다. 본 연구자들은 이미 생쥐 수정란에 있어서 biopsy와 PCR을 이용한 성판별의 효율적인 방법을 개발할 바 있다. 본 연구에서는 생쥐 수정란에서 개발된 biopsy방법 (압착방법)을 이용하여 과배란 시킨 상실배기 소 수정란으로부터 몇 개의 할구세포를 분리할 수 있었다. 할구세포가 분리된 13개의 수정란은 biopsy 후 모두 생존하였으며, 이 중 10개의 수정란은 24시간 체외배양에서 정상적인 배반포기로 발달하여 77%의 체외발달율을 나타내었다. 이어서 이렇게 분리된 할구세포에서 PCR 방법으로 수정란의 성을 판별하였는데, 분석된 13개의 수정란 중 수컷은 7개, 암컷은 6개인 것으로 판명되었다. 결론적으로 본 연구에서는 압착방법을 이용하여 상실배기 소 수정란으로부터 적은 수의 할구세포를 쉽게 분리할 수 있었으며, 또한 분리된 할구세포로부터 PCR 방법을 이용하여 소 수정란의 성을 판별할 수 있었다.
본 연구에서는 소의 체외 수정란에 대해 Y 염색체 특이 DNA 표지를 이용하여 FISH 기법으로서 수정란의 성감별을 수행하고 이를 이식하여 산전 성감별 개체 생산을 시도하였다. 본 연구에 이용된 Y-염색체 특이 DNA probe는 bovine male specific DNA로 알려진 btDYZ-1의 385bp 단편으로 제작하였고, Dig-PCR 방법으로 labeling하였다. 수정란의 성감별은 IVF로서 생산된 $8\;cell{\sim}blastocyst$ 단계의 수정란을 공시하고 이들로부터 단일할구를 생검하여 분석하였다. 생검 방법은 투명대를 laser로 drilling하고 $1{\sim}2$개의 할구를 squeezing하여 분리하였으며 demi-embryo는 1일간 재 배양하여 배반포기 단계에서 이식하였다. 우선, 본 probe의 신뢰성을 검정하기 위하여 생검된 할구는 FISH 기법으로 Y 염색체 존재 여부를 판단하고, 이의 demi-embryo는 재 배양하여 중기상을 유도하여 핵형분석한 후 비교 검토한 바 97.6%의 일치율을 나타내었다. 한편, 수정란에서 성감별을 위한 FISH의 적용 여부를 검토하고자 총 3937개의 공시란 중 3657개(93%)가 분석이 가능하였고, 이들 중 45.8%가 Y 염색체 특이적 접합 발현 양상이 나타났다. 본 결과를 토대로 경남 진주 인근 지역 농장의 15두의 소를 대상으로 성 감별 수정란을 이식한 결과, 7두가 임신한 것으로 확인되었고 이들 중 5마리가 출산하였다. 뿐만 아니라 출산된 송아지들은 모두 예견된 성과 100% 일치하는 것으로 나타났다. 따라서 본 연구에서 적용한 FISH 기법은 수정란의 성감별에 효율성이 높고 매우 높은 정확성을 나타냄에 따라 실질적으로 성감별 수정란의 대량생산이 가능할 것으로 사료되며, 농가차원에서 산업적 실용화가 될 수 있을 것으로 기대한다.twork descrition)를 통해 교통분석후의 제반 교통특성(교통량, 교통량/용량 비(比), 속도 등)을 교통망상에 표시할 수 있음으로서 의사결정에 보다 많은 도움을 줄 수 있을 것이다. 비트율의 증가와 화질 열화는 각각 최대 1.32%와 최대 0.11dB로 무시할 수 있을 정도로 작음을 확인 하였다.을 알 수 있었다. 현지관측에 비해 막대한 비용과 시간을 절약할 수 있는 위성영상해석방법을 이용한 방법은 해양수질파악이 가능할 것으로 판단되며, GIS를 이용하여 다양하고 복잡한 자료를 데이터베이스화함으로써 가시화하고, 이를 기초로 공간분석을 실시함으로써 환경요소별 공간분포에 대한 파악을 통해 수치모형실험을 이용한 각종 환경영향의 평가 및 예측을 위한 기초자료로 이용이 가능할 것으로 사료된다.염총량관리 기본계획 시 구축된 모형 매개변수를 바탕으로 분석을 수행하였다. 일차오차분석을 이용하여 수리매개변수와 수질매개변수의 수질항목별 상대적 기여도를 파악해 본 결과, 수리매개변수는 DO, BOD, 유기질소, 유기인 모든 항목에 일정 정도의 상대적 기여도를 가지고 있는 것을 알 수 있었다. 이로부터 수질 모형의 적용 시 수리 매개변수 또한 수질 매개변수의 추정 시와 같이 보다 세심한 주의를 기울여 추정할 필요가 있을 것으로 판단된다.변화와 기흉 발생과의 인과관계를 확인하고 좀 더 구체화하기 위한 연구가 필요할 것이다.게 이루어질 수 있을 것으로 기대된다.는 초과수익률이 상승하지만, 이후로는 감소하므로, 반전거래전략을 활용하는 경우 주식투자기간은 24개월이하의 중단기가 적합함을 발견하였다. 이상의 행태적 측면과 투자성과측면의 실증결과를 통하여 한국주식시장에 있어서 시장수익률을 평균적으로 초과할 수 있는 거래전략은 존재하므로 이러한 전략을 개발 및 활용할 수 있으며, 특히, 한국주식시장에 적합한 거래전략은 반전거래전략이고, 이 전략의 유용성은 투자자가 설정한 투자기간보다 더욱
Fluorescence in situ hybridization (FISH) techniques allow the enumeration of chromosome abnormalities and from a great potential for many clinical applications. In order to produce quantitative and reproducible results, expensive tools such as a cooled CCD camera and a computer software are required. We have developed a Chromosome Image Processing System (Chips) using FISH that allows the detection and mapping of the genetic aberrations. The aim of our study, therefore, is to evaluate the capabilities of our original system using a black-and-white video camera. As a model system, three repetitive DNA probes (D18Z1, DXZ1, and DYZ3) were hybridized to variety different clinical samples such as human metaphase spreads and interphase nuclei obtained from uncultured peripheral blood lymphocytes, uncultured amniocytes, and germ cells. The visualization of the FISH signals was performed using our system for image acquisition and pseudocoloring. FISH images were obtained by combining images from each of probes and DAPI counterstain captured separately. Using our original system, the aberrations of single or multiple chromosomes in a single hybridization experiment using chromosomes and interphase nuclei from a variety of cell types, including lymphocytes, amniocytes, sperm, and biopsied blastomeres, were enabled to evaluate. There were no differences in the image quality in accordance with FISH method, fluorochrome types, or different clinical samples. Always bright signals were detected using our system. Our system also yielded constant results. Our Chips would permit a level of performance of FISH analysis on metaphase chromosomes and interphase nuclei with unparalleled capabilities. Thus, it would be useful for clinical purposes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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