Catalysts were prepared by using incipient wetness impregnation method with 17 wt% Ni on a support ($SiO_2-Y_2O_3$, $Al_2O_3$, $SiO_2-ZrO_2$, $SiO_2$, $TiO_2$, MgO) and the catalytic activity in the reductive amination of ethanol with ammonia in the presence of hydrogen was compared and evaluated. The catalysts used before and after the reaction were characterized using X-ray diffraction, nitrogen adsorption, ethanol-temperature programmed desorption (EtOH-TPD), isopropanol-temperature programmed desorption (IPA-TPD), and hydrogen chemisorption etc. In the case of preparing $ZrO_2$ and $Y_2O_3$ supports, the small amount of Si dissolution from the Pyrex reactor surface provoked the formation of mixed oxides $SiO_2-ZrO_2$ and $SiO_2-Y_2O_3$. Among the catalysts used, $Ni/SiO_2-Y_2O_3$ catalyst showed the best activity, and this good activity was closely related to the highest nickel dispersion, and low desorption temperature in EtOH-TPD and IPA-TPD. The low catalytic activity on Ni/MgO catalysts showed low activity due to the formation of NiO-MgO solid-solutions. In the case of $Ni/TiO_2$, the reactivity was low due to the low nickel metal phase due to strong metal-support interaction. In the case of using a support as $SiO_2-Y_2O_3$, $Al_2O_3$, $SiO_2-ZrO_2$, and $SiO_2$, the selectivities of ethylamines and acetonitrile were not significantly different at similar ethanol conversion.
We investigated the effects of immobilization chemistry on the yield of immobilization and the bioactivity of the immobilized enzymes. Trypsin as a model protein and macroporous polymer beads(Toyopearl AF 650M, Tosho Co., Japan) was used as a model matrix. Four methods were used to immobilize trypsin; covalent conjugation by reductive amination(at pH 10.0 and pH 4.0) and affinity interaction via streptavidin-biotin, and double-affinity interaction via biotin-streptavidin-biotin system. The covalent conjugation immobilized $3{\sim}4$ mg/ml-gel, ca. 3-fold higher than the affinity method. However, the specific activity of the covalently(pH 10.0) and affinity-immobilized trypsin(via streptavidin-biotin) are ca. 37% and 50%, respectively, of that of the soluble enzyme(on the low-molecular-weight BAPNA substrate). When the molecular size of a substrate increased, the affinity-immobilized trypsin showed higher clavage activity on insulin and BSA. This result seemed to indicate the streptavidin-biotin system allowed more steric flexibility of the immobilized trypsin in its interaction with a substrate molecule. To confirm this, we studied the molecular flexibility of immobilized trypsin using quartz crystal microbalance-dissipation. Self-assembled monolayers were formed on the Q-sensor surface by aminoalkanethiols, and gultaraldehyde was attached to the SAMs. Trypsin was immobilized in two ways: reductive amination(at pH 10.0) and the streptavidin-biotin system. The dissipation shift of the affinity-immobilized trypsin was $0.8{\times}10^{-6}$, whereas that of the covalently attached enzyme was almost zero. This result confirmed that the streptavidin-biotin system allowed higher molecular flexibility. These results suggested that the bioactivity of the immobilized enzyme be strongly dependent on its molecular flexibility.
Optimal conditions for the in situ immobilization of lipase in aldehyde-silica packed columns, via reductive amination, were investigated. A reactant mixture, containing lipase and sodium borohydride (NaCBH), was recirculated through an aldehyde-silica packed column, such that the covalent bonding of the lipase, via amination between the amine group of the enzyme and the aldehyde terminal of the silica, and the reduction of the resulting imine group by NaCBH, could occur inside the bed, in situ. Mobile phase conditions in the ranges of pH $7.0{\~}7.8$, temperatures between $22{\~}28^{circ}C$ and flow rates from $0.8{\~}1.5\;BV/min$ were found to be optimal for the in situ immobilization, which routinely resulted in an immobilization of more than 70 mglipase/g-silica. Also, the optimal ratio and concentration for feed reactants in the in situ immobilization: mass ratio [NaCBH]/[lipase] of 0.3, at NaCBH and lipase concentrations of 0.75 and 2.5 g/L, respectively, were found to display the best immobilization characteristics for concentrations of up to 80 mg-lipase/g-silica, which was more than a 2-fold increase in immobilization compared to that obtained by batch immobilization. For tributyrin hydrolysis, the in situ immobilized lipase displayed lower activity per unit mass of enzyme than the batch-immobilized or free lipase, while allowing more than a $45\%$ increase in lipase activity per unit mass of silica compared to batch immobilization, because the quantity of the immobilization on silica was augmented by the in situ immobilization methodology used in this study.
The stimulatory effects of leucine on the activities of two soluble forms of brain glutamate dehydrogenase isoproteins (GDH I and GDH II) have been studied at various conditions. There were significant differences between GDH I and GDH II in their sensitivities to the action of leucine. When the effects of varied leucine concentrations on GDH activities were studied in the direction of reductive amination of 2-oxoglutarate with NADPH as a coenzyme, a marked activation was observed for both isoproteins at leucine concentrations up to 10 mM, whereas both isoproteins showed activation to a lesser extent with NADH as a coenzyme. The stimulatory effects of leucine on GDH activities in the direction of the oxidative deamination of glutamate were also observed, but to a much lesser extent. Leucine relieved the inhibition of GDH I by GTP and this resulted in an increase in the apparent activation by leucine in the presence of GTP. 2-Oxoglutarate was found to give rise to high substrate inhibition and leucine significantly reduced the substrate inhibition in the presence of $200\;{\mu}M$ NADH. Thus, the effects of leucine might be composed of a direct effect on the enzyme together with a relief of high substrate inhibition.
The recombinant alanine dehydrogenase (ADH) from E. coli containing Thermus caldophilus ADH was purified to homogeneity from a cell-free extract. The enzyme was purified 38-fold with a yield of 68% from the starting cell-free extract. The purified enzyme gave a single band in polyacrylamide gel electrophoresis, and its molecular weight was estimated to be 45 kDa. The pH optimum was 8.0 for reductive amination of pyruvate and 12.0 for oxidative deamination of L-alanine. The enzyme was stable up to $70^{\circ}C$. The activity of the enzyme was inhibited by 1 mM $Zn^{2+}$, 20% hexane, and 20% $CHCl_3$. However, 10 mM $Mg^{2+}$ and 40% propanol had no effect on the enzyme activity. The Michaelis constants ($K_m$) for the substrates were $50\;\mu\textrm{M}$ for NADH, 0.2 mM for pyruvate, 39.4 mM for $NH_4+$, 2.6 mM for L-alanine, and 1.8 mM for $NAD^+$.
Geminal bisphosphonates have been well known to be effective inhibitors of various calciumrelated disorders such as Paget's disease, hypercalcemia of malignancy, and osteoporosis. To synthesize bisphosphonates, we have used the pentacovalent oxaphospholene prepared from methyl vinyl ketone and triethyl-phosphite. Υ-Ketobisphosphonates are obtained by bromination, applied Westheimer reaction, and hydrolysis of synthesized oxaphospholene. This compound was converted to the N-alkylated Υ-aminobisphosphonates by the reductive amination. Conversion of the resulting secondary amine to the tertiary one, followed by introduction of the second alkyl group on the nitrogen, was led to the synthesis of new N,N'-dialkylated Υ-aminobisphosphonates.
We have determined the contents of monosaccharides in the hydrolysates of some yogurt and orange juice products by derivatizing monosaccharides with p-aminobenzoic acid ethyl ester (ABEE). The separation of the ABEE-derivatized monosaccharides was efficiently carried out by HPLC using a microcolumn packed with the Alltima $C_{18}$ stationary phase. The concentrations of monosaccharides were determined based on the measured peak area/height counts. ABEE derivatization of fructose and its detection have never been successfully carried out before this work. In this study, two peaks were observed in a fixed ratio for ABEE-fructose, and the ratio was maintained over a wide range of fructose concentration. In order to prove the validity of the above method, we compared the concentrations of glucose, galactose and fructose determined by ABEE derivatization and UVD (ultraviolet detector) chromatography with those determined by RID (refractive index detector) chromatography without derivatization. The determined concentrations of monosaccharides obtained from the two chromatographic methods were found close to each other within acceptable error ranges.
Reductive amination of N-succinyl-chitosan (1) and lactose using sodium cyanoborohydride in 1/15 M phosphate buffer (pH 6.0) for 6 d was suitable for the preparation of lactosaminated N-succinyl-chitosan (2). At 8, 24 and 48 h after i.v. administration of fluorescently labeled 1 (1') or 2 (2'), Peyer's patch, mesenteric lymph nodes, testes, prostate, preputial grand, intestine (small intestine plus cecum), femoral muscle, backbone and peritoneum were taken. Peyer's patch and mesenteric lymph nodes were put together as lymph nodes. Over 10% of dose/g tissue was distributed to the prostate and lymph nodes at 48 h post-administration in both l' and 2'.2' was easily distributed into not only the liver but also prostate, intestine, preputial gland and lymph nodes. Although galactose receptors are known to exist not only on the liver parenchymal cells but also on prostate and testes, the selective distribution of 2' into the prostate and the testes were not observed clearly. This study suggested that 1 and 2 should have possibilities for both the prevention and cure of lymph node metastasis as drug carriers.
Lectins and its A- and B-chains from Korean mistletoe (Viscum album var. coloratum) were isolated by affinity chromatography on the Sepharose 4B modified by lactose-BSA conjugate synthesized by reductive amination of ligand (lactose) to .epsilon.-amino groups of lysine residues of spacer (BSA) after reduction by $NaCNBH_3$. The lactose-BSA conjugate was coupled to Sepharose 4B activated by cyanogen bromide. The molecular weight determined by SDS-PAGE were a 31 kD of A-chain and a 35kD of B-chain. Amino acid analysis and N-terminal sequencing were performed. The effects of pH, temperature and guanidine chloride on the conformation of the lectin were investigated by measuring its intrinsic fluorescence and compared with its hemagglutinating activities. Blue shift was detected on the acidic pH and there was a close relationship between activities and conformation of the lectin. Under denaturing conditions, the tryptophan emission profile of lectin showed typical denaturaiional red shift which also correspond to the conformations and activity of lectin.
Substituted imidazolidin-2-ones deduced as potential inhibitors of IleRS by docking simulations were synthesized from an aziridine-2-carboxaldehyde. Reductive amination of an aziridine-2-carboxaldehyde with dipeptides for the substituents at N1 and followed by aziridine-ring expansion with triphosgene afforded 4-chloromethylimidazolidin-2-ones whose chloride were further manipulated towards phenylurea, pyrimidin-2-yl-urea or benzenesulfonamide at C4.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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