We have analyzed the MRE3/REC114 gene of Saccharomyces cerevisiae, previously detected in isolation of mutants defective in meiotic recombination. We cloned the MRE3/REC114 gene by complementation of the meiotic recombination defect and it has been mapped to chormosome XIII. The DNA sequence analysis revealed that the MRE3 gene is identical to the REC114 gene. The upstream region of the MRE3/REC114 gene contains a T_4C site, a URS (upstream repression sequence) and a TR (T-rich) box-like sequence, which reside upstream of many meiotic genes. Coincidentally, northern blot analysis indicated that the three sizes of MRE3/REC114 transcripts, 3.4, 1.4 and 1.2 kb, are induced in meiosis. A less abundant transcript of 1.4 kb is detected in both mitotic and meiotic cells, suggesting that it is needed in mitosis as well as meiosis. To examine the role of the MRE3/REC114 gene, we constructed mre3 disruption mutants. Strains carrying an insertion or null deletion of the MRE3/REC114 gene showed slow growth in nutrient medium and the doubling time of these cells increased approximately by 2-fond compared to the wild-type strain. Moreover, the deletion mutant (${\delta}$mre3) displayed no meiotically induced recombination and no viable spores. The mre3/rec114 spore lethality can be suppressed by spo13, a mutation that causes cells to bypass reductional division. The double-stranded breaks (DSBs) which are involved in initiation of meiotic recombination were not detected in the analysis of meiotic chromosomal DNA from the mre3/rec114 disruptant. From these results we suggest that the MRE3/REC114 gene product is essential in normal growth and in early meiotic stages involved in meiotic recombination.
Ok Bong Kim;Na Young Kim;Jae Hoon Jeong;Si Wouk Kim;Hye Gwang Jeong;Seong Myeong Yoon;Jong Kun Park;Jung Sup Lee
Animal cells and systems
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제3권2호
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pp.229-236
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1999
The recA gene plays a central role in genetic recombination and SOS DNA repair in Escherichia coli (E. coli). We have previously identified a 42 kDa RecA-like protein inducible by a variety of DNA damages from a fluorescent Pseudomonas strain sp. and characterized its inducible kinetics. In the present study, we cloned and characterized the gene encoding the RecA-like protein by immunological screening of Pseudomonas genomic expression library using polyclonal E. coli anti-RecA antibodies as a probe. From 10$^{5}$ plaques screened, five putative clones were finally isolated. Southern blot analysis indicated that four clones had the same DNA inserts and the recA-like gene was located within the 3.2 kb EcoRI fragment of Pseudomonas chromosomal DNA. In addition, the cloned recA-like gene was transcribed into an RNA transcript approximately 1.1 kb in size, as judged by Northern blot analysis. The cellular level of RNA transcript of the cloned recA-like gene was increased to an average of 5.15- fold upon treatment with DNA damaging agents such as ultraviolet (UV)- light, nalidixic acid (NA), methyl methanesulfonate (MMS), and mitomycin-C (MMC). These results suggest that the cloned gene is inducible by DNA damage similarly to the recA gene in E. coli. However, the cloned gene did not restore the DNA damage sensitivity of the E. coli recA-mutant.
Shigella sonnei is an important cause of human enteric infections. S. sonnei KNIH104S was previously reported to be isolated from Korean shigellosis patients. We cloned a 2.8-kb KpnI fragment containing the recA gene encoding a recombinase from the chromosomal DNA of S. sonnei KNIH104S. This recombinant plasmid was named pRAK28. E. coli HB101, a recA mutant, cannot grow on Luria-Bertani medium in the presence of the alkylating agent methylmethane sulfonate, however, E. coli HB101 harboring pRAK28 was found to grow on this medium. As far as we know, we are the first to sequence the recA gene from S. sonnei. This gene is composed of 1062 base pairs with an ATG initiation codon and a TAA termination codon. Nucleotide sequence comparison of the S. sonnei recA gene exhibited 99.7% and 99.5% identity with those of S. flexneri and E. coli, respectively.
This study provides evidence that RecG regulates the expression of the OxyR-independent gene mexA in Pseudomonas aeruginosa PAO1. A reduction in mexA expression was observed in the absence of RecG, but not OxyR, by northern blot and quantitative real-time PCR analyses. The canonical palindromic RecG binding sequence was present upstream of the mexA promoter, and bound purified RecG and single strand-binding protein. These data reveal a novel mechanism of OxyR-independent gene transcription by RecG.
AcNPV와 BmNPV를 배양세포주에서 동시감염시켜 선발한 숙주범위가 넓어진 재조합 바이러스인 RecB-727과 RecS-A6의 분자생물학적인 특성들을 조사하였다. 재조합 바이러스의 LT50 값을 조사한 결과, RecS-A6는 모바이러스인 BmNPV 보다 비교적 낮은 병원성을 보았으나 RecB-727은 거의 비슷한 수준의 높은 병원성을 나타내었다. 재조합 바이러스 DNA를 분리하여 모바이러스 DNA와 함께 제한효소 패턴을 비교한 결과 DNA 수준에서 재조합이 일어났음을 확인할 수 있었으며, 일부 유전자의 재조합을 예측할 수 있었다. 또한 p10 유전자에 대한 Southern blot 분석 결과 RecB-727의 p10 유전자는 AcNPV에서 유래되었으며, RecS-A6는 BmNPV의 p10 유전자를 갖고 있는 것으로 추정된다. 재조합 바이러스의 숙주범위 확장에 중요한 역할을 하는 것으로 알려진 DNA helicase 유전자 내의 HindIII-SacI 0.6kb 부위에 대하여 약 250 bp의 염기서열을 조사한 결과, 이 부위의 염기서열은 BmNPV helicase의 염기서열과 동일하였다.
To improve stability of recombinant DNA pLC1 encoding endoglucanase gene and pGL1 encoding $\beta $-glucosidase gene, DNA fragments of genes coding endoglucanase and $\beta $-glucosidase were cloned within the recA gene on a pDR1453, and the pDRE10 and pDRG20 of recombinant plasmids were integrated into the recA gene on the E. coli 1100 chromosomal DNAs. The stability of inheritance was completely maintained in E. coli 1100; Transformants E. coli 1100/pDREIO and pDRG20 were expressed well by recA promoter and increased endoglucanase and $\beta $-glucosidase activities. This method can be used as a model to improve the stability of recombinant plasmid in large scale culture.
AcNPV 와 BmNPV의 배양세포주에서의 동시감염에 의해 선발된 재조합 바이러스 RecS-A6는 그 다각체 외부 형태가 모바이러스와 다를뿐만 아니라 배양 세포주에 따라서도 그 형태에 차이가 있었다. 이러한 다각체의 특징적인 형태가 나타나는 요인을 다각체 단백질 유전자를 중심으로 조사한 결과 RecS-A6는 AcNPV 와 BmNPV의 다각체 단백질 유전자를 모두 갖고 있는 것이 확인되었으며, 또한 RecS-A6의 다각체를 단백질 전기영동하여 분석한 결과 RecS-A6의 다각체를 단백질 전기영동하여 분석한 결과 AcNPV와 BmNPV의 다각체 단백질이 모두 다각체 형성에 이용되었음을 확인할 수 있었다.
플라스미드 pKM101 과 이의 돌연변이체 pSL4 는 UV 및 MMS 에 대해 높은 치사 저항성과 돌연변이률을 나타낸다. pKM101 과 pSLA 의 mucB 유전자의 일부분과 mucA 유전자를 lacZ fusion 벡터인 pMC874 에 subcloning 시켜 플라스미드 pBH31 과 pBH30 을 선별하였고 이 플라스미드들을 $recA^{+}lexA^{-}$, $recA^{-}와lexA^{+}$, 균주에 각각 도입하였다. $recA^{+}lexA^{+}$ 균주에서 pSLA 의 muc 유전자를 포함하는 pBH30 의 $\beta$-galactosidase활성은 pKM101 의 muc 유전자가 연결된 pBH31 보다 높았고 $recA^{-}$ 와 $lexA^{-}$ 돌연변이주에서는 UV 조사의 유무에 관계없이 $\beta$-galactosidase를 유도하지 못하였지만 $recA^{-}$ 균주에서는 UV 조사를 하지 않았을 때 pBH30 의 $\beta$-galactosidase가 pBH31 보다 약간 높게 유도되었다. 이러한 결과는 pKM101 과 pSLA 의 기능적 차이가 두 플라스미드의 Muc 단백질의 구조적 차이라고 생삭할 수 있지만, muc 유전자의 조절부위가 돌연변이되너 LexA repessor 가 작용하는 부위의 변화에 의한 것이라고도 생각햐ㄹ 수 있었다. 또한, umuC-lacZ 유전자를 가지는 pBH100 를 construction 하여 umu oeron 의 발현은 UV 조사에 의해 유도되며 recA 와 lexA 유전자에 의해 조절됨을 알 수 있었다.
The usefulness of host range expanded recombinant viruses for economical viral insecticide and expression vector system has been studied. Host range expanded recombinant viruses, RecS-B6 and RecB-8, constructed by cotransfection of Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) and Autographa californica NPV (AcNPV), and a host range expanded AcNPV recombinant, Ac-BH, constructed by substitution of the 0.6Kb fragment of the BmNPV helicase gene were compared. The restriction enzyme digestion patterns showed that RecS-B6 and RecB-8 had expanded host ranges by genomic recombination and were more similar to genome of AcNPV than that of BmNPV. SDS-PAGE and PCR analysis showed that the polyhedrin gene of RecS-B6 and RecB-8 was derived from BmNPV genomic DNA. The morphology of polyhedra of recombinant viruses showed a slight difference between the two host cells, Sf and BmN cells, indicating that the morphology of polyhedra was influenced by host cells. The bioassay data for insect larvae showed that Ac-BH, compared to wild type viruses, had superior pathogenicity against Bombyx mori larvae but inferior pathogenicity against Spodoptera exigua larvae. Although the pathogenicity was lower than that of wild type viruses in both larvae, RecS-B6 showed the pathogenicity in both larvae. These results suggested that Ac-BH was a less useful economical insecticide than random genomic recombinant virus RecS-B6.
Genetic identification of 17 fish-derived Aeromonas strains was attempted using 5 housekeeping genes. 16S rRNA, gyrB, rpoD, dnaJ and recA genes from the 17 strains were amplified, and total of 85 amplicons were sequenced. DNA sequences of the strains and type strains of the 17 Aeromonas homology groups were used for genetic identification and phylogenetic analyses. None of the strains was identified as a single species using the 16S rRNA gene, showing the same identities (average = 99.7%) with several Aeromonas species. According to gyrB, rpoD, dnaJ, and recA, 9 strains and RFAS-1 used in this study were identified as A. hydrophila and A. salmonicida, respectively. However, the other strains were closely related to 2 or more Aeromonas species (i.e., A. salmonicida, A. veronii, A. jandaei, A. media and A. troda) depending on the genetic marker used. In this study, gyrB, rpoD, dnaJ and recA gene sequences proved to be advantageous over 16S rRNA for the identification of field Aeromonas isolates obtained from fish. However, there are discrepancies between analyses of different phylogenetic markers, indicating there are still difficulties in genetic identification of the genus Aeromonas using the housekeeping genes used in this study. Advantages and disadvantages of each housekeeping gene should be taken into account when the gene is used for identification of Aeromonas species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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