Park, Eun-Jeon;Ko, Geon-Il;Kim, Jae-Baek;Sohn, Dong-Hwan
Archives of Pharmacal Research
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v.22
no.1
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pp.60-67
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1999
The object of this work was to study the pharmacokinetic differences and the cause of these differences in cirrhotic rats induced by biliary obstruction when aminophylline (8 mg/kg as theophylline, i.v.) was administered. The concentrations of theophylline and its major metabolite (1,3-dimethyluric acid) in plasma were determined by HPLC. In addition, formation of 1,3-dimethyluric acid from theophylline in microsomes and the changes in the activity of drug metabolizing enzymes, which are suggested to be involved in theophylline metabolism, were determined. In cirrhotic rats, the systemic clearance of theophylline was reduced to 30% of the control value while AUC (area under the palsma concentration-tie curve) and (t1/2)$\beta$ were increased 1.3 fold and3.5 fold, respectively. The formation of 1,3-dimethyluric acid was decreased to 30% of the control value in microsomes of cirrhotic rat liver. In cirrhotic rat liver, activities of aniline hydroxylase (CYP2E1 related), erythromycin-N-demethylase (CYP3A related), and methoxyresorufin-O-demethylase (CYP1A2 related), which were reported to be related with theophyline metabolism, were decreased to 67%, 53%, and 76% that of normal rat liver, respectively. From the results, it can be concluded that in cirrhotic rats induced by biliary obstruction, the total body clearance of theophylline is markedly reduced and it may be due to decreased activity of drug metabolizing enzymes in liver.
The phenotyping of cytochrome P-450 in hepatic mivrosomes induced by phenytoin in the rats was carried out by using several monoclonal antibodies (MAbs) against specific P-450 isozymes. Phenytoin (180 mg/kg) was administered intrapritoneally for three consecutive days to the male Sprague-Dawley rats(100-120g). Solid phase radio-immunoassay showed higher binding affinity of MAb PB 2-66-3 and PCN 2-13-1 to the microsomes from phenytoin treated rats than those to from untreated rats, which was comparable to the level in phenobarbital induced rat hepatic microsomes.
0.5 mg of natural ginsenoside mixture and 0.8 $\mu$Ci of synthesized 14C-ginsenosides were administered orally to a rat and killed at one hour after the ginsenoside administration and the liver was fractionated into nuclear fraction, mitrochondria microsomes and cytosol fraction. Radioactivity distribu lion in subcellular fractions of the liver showed that 32o1c of total radioactivity absorbed in the liver was in cytosol fraction but a significant portion of the radioactivity was also found in mitochondria (26.6%) and microsomal fraction (18.l%). 5.8% of the total radioactivity was recovered from the nuclear fraction as well. This suggested that ginsenosides might be distributed into all subcellular fractions. Activities of mitochondrial aldehyde dehydrogenase, lactate dehydrogenase and malate dehydrogenase of the liver of rat at two hours after the ginsenoside administraion were found appreciably stimulated, suggesting that the ginsenoside concentration in the liver might be around 10-5%, since optimum concentrations for most enzyme catalyzed reactions in vitro were known to be 10-6% 10-4%. A significant portion of the radioactivity recovered from subcellular fractions of the liver was found in protein fractions, suggesting that proteins might interact with ginsenosides. Examination of protein-ginsenoside interation by gel filtration, equilibrium dialysis and amonium sulfate precipitation technique suggesting that proteins and ginsenosides do not bound covalently but weakl\ulcorner combined. When purified ginsenoside Rbl and Rgl were incubated with rat liver cytosolic enzymes for 20 min, the above ginsenosides were hydrolyzed quickly, suggesting that ginsenosides might be rapidly hydrolyzed and metabolized in the liver. It was also observed in vitro that the ginsenosides such as Rbl and Rgl were easily hydrolyzed by rat liver cytosol preparation suggesting that absorbed ginsenosides might be quickly hydrolyzed and metabolized in the liver.
The effects of naturally occurring furanocoumarins on cytochrome P-450 have been investigated in rat liver microsomes. Incubation of microsomes with an NADPH-generating system and four furanocoumarins such as imperatorin, isoimperatorin, phellopterin and byakangelicin at $37^{\circ}$ in vitro resulted in a significant destruction of cytochrome P-450. A single treatment(50 mg/kg, i.p.) of rats with each furanocoumarin caused a rapid loss of cytochrome P-450 accompanied by the loss of heme from the microsomes but not by the loss of cytochrome $b_5$. It is suggested that cytochrome P-450 is specifically destroyed by furanocoumarins in a metabolic process involving destruction of its heme group and as a consequence, hepatic enzyme activities are depressed markedly.
Covalent binding of the reactive metabolites of SC_42867 to microsomal proteins has been examined. In the absence of inhibitor of cytochrome oxydase (.alpha.-naphtyl-isothiocyanate) or a radical scavenger (3-terthiobuty-4-hydroxyanisol), up to 4.0% of total redioactivity used in the assay could irreversibly bind to proteins. In the presence of an inhibitor, the highest percentage of covalent binding observed is 0.7% a significant decrease of the metabolism of SC42876 was observed. These results suggest in a cytochrome P-450 dependent generation of SC_42867 metabolites significantly take part in the covalent binding process.
The studies were carried out on the correlation between microsomal lipid peroxidation level and drug metabolizing enzyme activities in rat liver microsomal suspensions on various ages (2-week-old, 2, 4, 8, and 12-month-old). The lipid peroxidation levels of liver homogenates tended to be elevated in a 4-month-old rat livers, but it was a little decreased in 8 and 12-month-old rat livers. The lipid peroxidation levels of microsomal suspension was not shown any significant differences by ages. Lipid peroxidation levels and microsomal cytochrome P450 and NADPH-cytochrome c reductase activity showed a direct correlation (r=0.72 and r=0.64), respectively. The activities of cytochrome P450-dependent aminopyrine-N-demethylase and benzpyrene hydroxylase in rat liver microsomes were increased by ages up to 8-month-old rats and maintained in 12-month-old rats. The correlation between lipid peroxidation levels and these cytochrome-dependent enzyme activities showed a high direct correlation (r=0.97 and r=0.81), respectively.
The purpose of this study was to observe the effects of the polysaccharide (GLP) obtained from the liquid cultured Ganoderma lucidum on the lipidperoxidation in a rat liver microsome and hepatotoxicity in the primary cultured rat hepatocytes. It is well known that the polysaccharide of Ganoderma lucidum exhibits hepatoprotective activity, antitumor activity etc., which many suggest a relationship to lipidperoxidation. The effect of GLP on $CCl_4-$ and galactosamineintoxicated cytotoxicity in the primary cultured rat hepatocytes were reduced the GPT value. In order to the estimate the effects of anti-lipidperoxidation of the polysaccharide, enzymatic and nonenzymatic reaction assays were performed, in vitro, in the rat liver microsome. An enzymatic lipidperoxidation reaction by $ADP+FeCl_3+NADPH$ and $CCl_4+NADPH$, GLP (1 mg/mL) inhibited 77.4% and 39.4%, respectively, and the nonenzymatic reaction displayed a 97.4% strongly inhibition. In the enzymatic and nonenzymatic inducers treated with GLP, the formation of malondialdehyde (MDA) progressively decreased by raising the GLP concentration. These results suggest that the anti-lipidperoxidation and radical scavenging activity of GLP may play an important part in the liver protection action.
Liver microsomal epoxide hydrolase (mEH) is active in the detoxification of epoxide-containing reactive intermediate. Previous studies in this laboratory have shown that thiazole and pyrazine are efficacious inducers of mEH in rats with large increases in mEH mRNA levels (Carcinogensis, Kim et al, 1993). mEH was purified to electrophoretic homogeneity from thiazole-induced rat hepatic microsomes using DEAE-cellulose column chromatography whereas another protein $({\sim}43\;kDa)$ was co-purified with mEH from pyrazine-induced rat hepatic micrsomes (200 mg/kg body weight/day, ip, 3d). The antibody raised from a rabbit against mEH protein purified from thiazole-induced rat hepatic microsomes appeared to specifically recognize mEH protein in rat hepatic microsomes, as assessed by immunoblotting analysis. Immunoblotting analyses revealed a 10- and 7-fold increase in mEH levels in the hepatic microsomes isolated from thiazole- and pyrazine-treated rats, respectively. Moreover, immunoblotting analysis showed cross-reactivity of the mEH antibody with a 43 kDa protein in pyrazine-induced rat hepatic microsomes and with co-purified 43 kDa protein in purified fractions. The ratio between the 43 kDa protein and mEH in pyrazine-induced rat microsomes or in purified fractions was ${\sim}1$ to 15. N-terminal amino acid sequence analysis of both purified rat mEH and 43 kDa protein revealed that 10 out of 12 amino acids in N-terminus of the 43 kDa protein were identical with the mEH sequence with two amino acid residues of the 43 kDa protein undetermined. Either thiazole or pyrazine treatment, however, failed to increase the levels of mEH protein in rabbits while pyrazine caused elevation of the 43 kDa protein in this species, as determined by irnrnunoblotting analysis. These results demonstrated that treatment of rats with either thiazole or pyrazine causes elevation in hepatic mEH expiession whereas pyrazine treatment results in induction of another mEH-related 43 kDa protein and that a distinct species difference exists between rats and rabbits in the induction of mEH by these xenobiotics.
Bangah, one of the herbs grown in Korea, was investigated for its antioxidant activity. The ether extracts of bangah herb was separated into neutral, phenolic, acidic and basic fractions and further separated into subfractions. Antioxidative activities were measured by hydrogen donating activity (HDA), peroxide value (POV), thiobarbituric acid (TBA) value and inhibition activity against lipid peroxidation of rat liver microsomes, The subfraction components were identified by GC/MS and NMR. Phenolic, though being very small in quantity, showed higher antioxidant activity at all assay system by hydrogen donating activity. POV, TBA value and inhibition activity against lipid peroxidation of rat liver microsomes. Five subfractions(P-1, P-2, P-3, P-4 and P-5) were fractionated from phenolic fraction of bangah herbs, and subfraction P-2 among them showed strong antioxidant activity on a level with BHT or gallic acid at each assay system. Four compounds (peak I, peak II, peak III and peak IV) were isolated by gas chromatogram of TMS derivatives of subfraction P-2 and thes compounds were confirmed to be phenolic substance having -OH and COOH group. There subfractions (N-1, N-2 and N-3) were fractionated from neutral fraction of bangah herbs, and subfraction N-2 among them showed highest antioxidant activity and inhibition activity against lipid peroxidation of rat liver microsomes. Subfraction N-2 was indentified to be estragole by H-NMR spectroscopy.
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