These experiments were carried out to clarify the optimalconditions and interspecific cross reaction of H-Y antibody activity. H-Y antiserum was prepared in inbred SD female rats and Balb/c female mice by repeated immunization of rat newborn testis homogemate, rat and mouse spleen cells obtained from males of same strain. The activity of H-Y antibody in antiserum was tested by ELISA and biological tests. The cross reactivity of H-Y antibody was confirmed by culturing mouse and rabbit embryos in medium containing H-Y antibody and complement obtained from rat and guinea pig, respectively. The optimal condition for the activity of H-Y antibody was also investigated by culturing embryos in medium with different pH and complement concentration. The results obtained in these experiments were summarized as follows: 1. The formation rates of H-Y antibody in rats immunized with newborn testis and spleen cell were 40.0 and 50.0% respectively, and that in mouse immunized with spleen cell was 48.4%. 2. The activity of H-Y antibody was not affected by pH in range of 6.5 to 8.0, and the same was true for the relative concentration of complement to the H-Y antibody. 3. Minimum time needed for the activity of H-Y antibody was confirmed to be 0.5 to 1 hour and 24 to 48 hours respectively for the zona free embryos and intact embryos. 4. When mouse and rabbit embryos were treated with H-Y antibody obtained from rat, 46.4 and 54.8% of embryos were retarded or destroyed. From these results it could be said that H-Y antibody had strong interspecific cross reactivity.
Recently, we have reported that the environmental pollutant 2-bromopropane (2-BP) induces a significant embryo-fetal developmental toxicity in rats. However, the cause of developmental toxicity and the relationship between maternal and developmental toxicities could not be elucidated because the developmental toxicity of 2-BP was observed only in the presence of maternal toxicity The in vitro teratogenicity study using whole embryo culture was carried out to understand the teratogenic properties and the possible mechanism of teratogenicity induced by 2-BP in rats. Rat embryos aged 9.5 days were cultured in vitro for 48 hrs at medium concentrations of 0, 1, 3, or 10 mg/ml of 2-BP. Embryos were evaluated for growth, differentiation, and morphological alterations at the end of the culture period. At 10 mg/ml, 2-BP caused a delay in the growth and differentiation of embryos and an increase in the incidence of morphological alterations, including altered yolk sac circulation, abnormal axial rotation, craniofacial hypoplasia, open neuropore, absent optic vesicle and kinked somites. At 3 mg/ml, only a delay in the growth and differentiation of embryos was observed. There were no adverse effects on embryonic growth and development at the concentration of 1 mg/ml. The results showed that the exposure of 2-BP to rat embryos results in a developmental delay and morphological alterations at dose levels of 3 mg/ml culture media or higher and that 2-BP can induce a direct developmental toxicity in rat embryos.
This experiment was carried out to develop a new technique of identifying XX of XY-bearing bisected embryos prior to implantation by immunological method. H-Y antiserum prepared in inbred Wastar female rats by repeated immunization with spleen cells from males of the same strain. The reactivity of H-Y antibody was confirmed by culturing mouse embryos in the medium containing H-Y antiserum and complement obtained from the guinea pig. The optimal condition for the activity of H-Y antibody was also investigated by culturing embryos under the concentraton or affected H-Y antibody was also investigated by culturing embryos under the concentration or affected H-Y antibody and culture rate. However, production of live young or sex rates of male and female from embryos transferred with psudopregnant. The biological test with the morula stage embryos showed that H-Y antibody was formed in all female rats immunized with spleen cell, but it was formed only in 80% female rats immunized with the antigen. When the bisected mouse embryos were cultured in vitro for 5~6 hours in morula stage, of 457 bisected embryos 81.4% of then were developed to the blastocyst stage. When the concentration rate of complement to H-Y antiserum varied from 1.0~5.0${mu}ell$, the lysis-rate of embryo was 19.5 to 67.3%. The concentration rate of complement did not influence the lysis-rate of embryos(P<0.05). The morphology embryos of bisected, zona-free and intact embryos showed the embryos lysis rate of 58.6, 42.7 and 48.5% respectively(P<0.05). Pregnancy rate were 50.0, 45.5 and 57.1% in psudopregnant recipient transferred with bisected, zona-free and intact blastocyst embryos. However, production of live youngs, sexual rate of male or female was 24(50.0:50.0), 22(45.5:55.5) and 36(58.3:41.7)mice, but affected and non affected half embryos with H-Y antiserum treatment was 23.1 and 26.7%. Also production of live youngs and sexual rate was 14(92.9:7.1) and 17(17.6:82.4)mice in affected and non affected half embryos in H-Y antiserum treatment(P<0.05).
Effects of ochratoxin A (OTA) on embryo development were studied in cultured whole embryos from 9.5 day gestation rat for 48 h. OTA (more than $0.5{\mu}g/ml$) induced microcephaly in the cultured rat whole embryos. Protein and DNA content, and DNA synthesis were significantly inhibited by OTA. We next examined whether the microcephaly seen in cultured whole embryo partially results from inhibition of differentiation of embryonic midbrain cells. Embryonic midbrain cells were extracted from 12 day gestation rat embryos, and cultured for 96 hr. OTA ibhibited cell differentiation about 50% over control. We also tested whether OTA-induced embryotoxicity would be associated with oxidative damages. We measured the ${\gamma}$-glutamyltranspeptidase (${\gamma}$-GT) and glutathione peroxidase (GPX) activities, and glutathione (GSH) content in both cultured whole embryos and embryonic midbrain cells. OTA decreased GSH content, whereas slightly increased ${\gamma}$-GT activity, but GPX activity was not significantly changed. These results show that OTA caused the microcephaly and its effect may be partially due to the inhibition of cell differentiation of embryonic midbrain cells, but the role of oxidative damages is not clear in embryotoxicity.
The teratogenic potential of the anticonvulsant drug phenytoin (PHT) has been well documented both in the human and in the experimental animals. However there are few reports on the effects of PHT on embryonic development in rats in vitro. The present study was performed to evaluate the teratogenic effects of PHT using whole-embryo culture system in rats. Sprague-Dawley rat embryos were explanted on gestational day (GD) 9.5 and cultured for 48 hrs in the immediately centrifuged and heat-inactivated rat serum containing 0,25,50, or $100{\mu}g$ PHT/mL. At the end of culture period the embryos were scored for morphological development according to the procedure of Van Maele-Fabry, and their total protein contents were determined. At 100 ${\mu}$g/mL of culture medium. PHT caused significant reduction in developmental score and protein content of embryos and a high incidence morphological abnormalities (100%). Characteristic malformations included altered yolk and embryonic circulation, craniofacial hypoplasia, neural tube schisis, branchial arch defects, abnormal ratation, and limb bud hypoplasia, among others. There were no adverse effects on embryonic growth and development at concentrations of 25 and 50 ${\mu}$g /mL of culture medium. The results indicated that the dysmorphogenic effect of PHT on cultured embryos is due to a direct interference with embryonic development.
This experiment was carried out to investigate effects of DMSO or ethylene glycol as a cryopotectant and of freezing methods on survival rate of forozen-thawed rat 2-cell embryos by morphological observation. 2-cell embryos were recovered from oviducts of Sprague Dawley females mated with males of same strain on day 2 of pregnancy after inducing superovulation by intrapertioneal injection of PMSG and HCG. In slow freezing and thawing groups, embryos were frozen to -79$^{\circ}C$ or -196$^{\circ}C$ in a glass test tube containing 0.2ml PBI with 1.5M DMSO or 1.2M ethylene glycol at a rate of 0.3-1.0C/min. and thawed slowly. When samples were frozen to -79$^{\circ}C$, higher survival rate was obtained in the medium containing DMSO (43.9%) than ethylene glycol (41%). And similar result was obtained (32.5% in DMSO vs. 31.4% in ethylene glycol) when samples were frozen. In rapid freezing and thawing groups, embryos were frozen to -79 or -196$^{\circ}C$ in a glass test tube containing 0.2ml of PBI with 1.5M DMSO or 1.2M ethylene glycol by rapid cooling, and thawed rapidly. When samples were frozen to -79$^{\circ}C$, 1.5M DMSO (13.2%) was more effective than 1.2M ethylene glycol (6.1%). When the storage temperature was -196$^{\circ}C$, survival rates were 9.8% in 1.5M and 5.4% in 1.2M ethylene glycol.
배아의 발생에 대한 연구는 in vivo 나 in vitro의 방법을 통해 근래 비?적 활발하게 진행되고 있다. 이들의 연구결과에 따르자면, 성분이나 함량 혹은 물리학적 성질이 혈청따위의 체액과는 다른 전방수가 들어차 있는 안전방의 환경은 배아의 발생에 극히 부적당한 곳이라 할 수 있다. 그럼에도 불구하고 본실험의 결과를 보면 초기배아의 발생은 극히 정상적으로 진행되고 있다. 이런 점에 비추어 우리는 두 가지 가능성을 추론할 수 있다. 첫째는, 배아의 어느 한정된 범위에서는 그의 환경에 쉽게 적응할 수 있는 능력을 가지고 있을 것이라는 생각이다. 배아세포가 미분화의 상태에 있다는 점과 대사의 정도가 분화된 다른 세포들에 비해 비교적 낮다는 점을 고려할 때 이들 배아는 안전방내의 환경과 같은 특수한 곳에서도 능히 생존할 수가 있는 것이다. 둘째는, 배아를 받아들인 후 전방수의 특성이 달라질 것이라는 점이다. 토끼에서는 일단 안전방내의 전방수가 유출되고 나면 혈청과 비슷한 체액이 약8시간 동안 안전방내에 형성되고 그뒤 차차로 본래의 전방수로 대치된다. 쥐에서도 이러한 체액이 안전방내에 형성된다면 배아를 받아들인 안전방내의 전방수의 성질이 혈청과 비슷해지므로 배아의 발생이 가능해질 수가 있다. 단지 그러한 체액이 전방수의 유출 후 120시간까지 그대로 남아있을 것인가에 대한 의문은 그대로 남아있지만 위의 두가지 가능성에 대하여는 배아의 생태나 행동과 관련시켜 앞으로 더 연구해야 할 것이다.
These experiments were carried out to examine the development capacity of sexed and then bisected embryo from 8-cell to morula stage. Antisera to histocompatibility-Y(H-Y) antigen were prepared in inbred SD female rat by repeated immunization of spleen cell or testis supernatant from males of same strain. Male and female embryos were separated by delaying development of embryos against H-Y antibody. After sexing, rabbit embryos were bisected and aggregated. The results obtained from the these experiments were summuerized as follows: 1. When mouse and rabbit 8-, 16-cell and morular embryos were culature in H-Y antiserum, the ratio of embryo which has developed to hatching blastocyst was 53.4, 46.3 and 57.4% in mouse embryos, and 49.0, 52.0 and 61.0% in rabbit embryo, respectively. The ratio of mouse and rabbit embryos developed to hatching blastocyst showed nearly natural sex rate(50%), except rabbit mourla showed a little higher ratio(61.0%) as compared to natural sex ratio. 2. When rabbit demi-embryos from 8-, 16-cell embryo and morula were cultured, the percentage of demi-embryos was 70, 68 and 58% without zona pellucida removed, and 62, 69 and 51% with zona pellucida. The rate of aggregation was higher in 8- and 16-cell demi-embryos than in morula demi-embryo. 4. When sexed-demi-embryo was aggregated with another demi-embryo with demi-embryo with same sex, the rate of embryo developed to blastocyst was 60, 50 and 25%, respectively. Eight-cell demi-embryo showed highest rate. In conclusion, it showed that H-Y antiserum which was made by rat spleen cell enabled sexing rabbit embryos. And when rabbit sexed 8-, 16-cell and morula demi-embryo were aggregated, they were developed to eu-blastocyst which suggested the potential of sexed embryo manipulation.
본 연구는 착성전 Rat 8-세포기 난자의 체외배양시 glucose95.56 mM와 0mM)와 phosphate(1.19mM와 0 mM)의 억제효과를 규명하기 위하여 실시하였다. 48시간 배양후 발육율은 glucose+phosphate군에서는 37%(31/84), glucose군은 70%(64/91), phosphate군은 69% (59/85) 그리고 glucose와 phosphate가 없는 무처리군에서는 77%(67/85)를 나타냈다. Glucose+phosphate군의 발육율은 다른 처리군에 비해 유의적으로 낮았고, 그 외 처리군 사이에는 유의성이 없었다. 발육난자의 핵염색에 의한 세포수의 측정에서는 glucose군에서 가장 많은 세포수를 나타냈고 (29.3$\pm$0.97, P<.001), 그외 처리에서는 유의성이 없었다 (glucose+phosphate, 17.5$\pm$1.04; phosphate, 18.6$\pm$1.01; no glucosephosphate, 19.8$\pm$1.01). 본 실험의 결과로 glucose와 phosphate는 Rat 8-세포기 난자의 발육에 억제효과를 나타냈고, glucose는 난자의 세포분열을 증진시키는 효과가 있는 것으로 나타났다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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