As a preliminary experiment to establish the process of embryo transfer in rabbit, present sutdies were carried out with 75 mature Japanese of ovary to pregnant mare's serum gonadotropin(PMSG) and human chorionic gonadotropin(hCG) and collection rate of embryos at various times after hCG injection. Female rabbits were superovulated using 50∼100IU hCG or 75∼100IU PMSG and 50∼751IU hCG injected 83hrs apart. The results obtained were as follows: 1. The average number of growth follicles obtained from all of rabbits treated with hCG or PMSG-hCG was 28.1. PMSG-hCG treatment group (30.9) was clearly increased more than hCG treatment group (16.7). 2. In ovulation score, PMSG-hCG treatment group (21.0) was increased more than hCG treatment group (7.9), showing the same trends in the growth of follicles. 3. The ovulation rate per follicles developed was higher in the rabbits treated with 100 IU PMSG and 75 IU hCG (18.9%) than that from the other groups. 4. The oviduct score (72.9%) was inclined to higher than that from uteri (57.1%) in score of embryo collection.
Present studies were conducted to investigate the developmental stage and the location of embryos in the reproductive tract at various times after ovulation, the morphologically normal after thawing of embryos preserved in liquid nitrogen, and the survival after transferring frozen-thawed embryos. The results obtained were as follows: 1. Embryo stage and location in the reproductive tract after hCG administration. For the investigation of embryo stage and location in the reproductive tract after ovulation, rabbits were laparotomized at 24, 40, 48, 72 and 120 hrs post hCG injection, simultaneously with mating. the oviducts and uteri were flushed out with PBS medium containing 50% rabbit serum, respectively. 1) Most of embryos was remained in the oviduct within 48 hrs, with the lapse of time, embryos were started to move to uterus and shifted in uterus at 72 hrs after hCG injection. 2) The representatives of embryos stage collected at 24, 40, 48, 72 and 120 hrs were 1-cell(60.4%), 8-cell to early morula (52.3, 39.3%), late blastocyst (95.5%) stages, respectively. 2. Morphological normality and survival of the frozen-thawed embryos. For the evalution of the quality and viability on the frozen-thawed embryos, immediately after thawing, embryos were assessed by morphologically normal under a dissecting microscope, and a further test of frozen-thawed embryos was made by transferring the morphologically normal embryos to the uteri of recipient rabbit induced pseudopregnancy by the injection of hCG at the time of hCG injection in donor rabbits. 1) The propotions of embryos which a, pp.ared morphologically normal was higher when 8-cell (85.7%) and morula(90.5%) were used for freezing than when 4-cell (66.7%) and blastocyst (75.8%) were used. 2) Preganacies were observed at Day 15 after transfer of frozen-thawed 8-cell (7/13), morula (19/42) and blastocyst (3/19) but not after transfer of embryos at 4-cell stage.
The method of vitnilcation has various merits. It needs neither seeding nor slow freezing. It can freeze embryo by putting it directly into liquid nitrogen at the indoor temperature to $0^{\circ}C$. The operation process is quite easy. Moreover, higher promise of survival can be expected as there is no physical damage by any lumps of ice with the exception of cells. In Kasal's experiment (1990) using EFS liquid and Kang's experiment (1991) using GFS liquid the ratio of the damaged embryo was only 2-3%. But, the method of vitrification is now on the process of improvement, and the final or united method is not yet established. At the present time, most of the major institutes all over the world are using the traditional freezing method in the preservation of mouse embryo, but it is very likely that the vitrification will prevaIl in the near future considering the various merits of it. Calves can be begotten from the embryo by means of vitriilcated preservation in the cases of cow, rat, and rabbit as well as of mouse. In addition, recent experiments have shown that vitrificated preservation was successful in the case of drosophila embryo which was much bigger than mammalian embryo, which fact tells that this method is expected to be preferably used even in the preservation of living organs in the near future.
This experiment was carried out to produce cloned aniraals by nuclear transplantation in rabbits. The ovulated oocytes were collected from the oviducts between 14 and 15 hours after hGG injection. The denuded oocytes were used as nuclear recipient cytoplasm following enucleation by micromanipulation. The blastomeres separated from the 8-cell embryos were used as nuclear donor. The nucleated oocytes receiving a blastomere in the perivitelline space were electrically fused in the 0.28 M mannitol solution at 1.5 kV /cm, 60$\mu$sec for three times. The nuclear transplant embryos which were used and developed to 2- to 4-cell stage in vitro were transferred into the oviducts of synchronized recipient does. A total of 64 nuclear transplant embryos were transferred to 7 recipient does and produced three offspring(4.7%) from a foster mother 31 days after embryo transfer.
This study was carried out to investigate the seasonal effect on the recovery rate of embryos in donors and on the conception rate in recipients following embryo transfer. The results obtained from this experiment were summarized as follows: 1. The ovulation point in winter and summer was 28.6 and 28.6, respectively. There was no difference in ovulation point between two seasons. More embryos recovered in the winter (27,0) than the summer (20.9). 2. The number of CL, unruptured follicle, hemorrhagic follicle, young born and pregnancy rate in the winter were 6.0,4.8,1.5,1.8 and 75%, and those in the summer were 2.9,5.7, 3.8, 2.2 and 46.7%, respectively. The rate of synchronization of recipients in the winter showed better results than that in the summer.
This study was carried out to determine effectively the sex of rabbit embryos using H-Y antiserum. H-Y antiserum was obtained from inbred SD strain female rat which was immunized by injection of testis cell of inbred SD strain male rate into its spleen. The titer of antiserum was identified by sperm cytotoxicity test and culture of rabbit embryos with antiserum. The developed or undeveloped embryos were separated by exposure the embryos to the antiserum with H-Y antibody. Developed embryo were transferred to the recipients and sex of offspring were examined. 1. In the sperm cytotoxicity test, the rate of dead sperm showed no difference between two antisera from spleen and testis cell as antigens. It is confirmed that H-Y antibody in antiserum was absorbed by H-Y antigen in male rat spleen cells. 2. When rabbit morulae were exposed to antiserum and complement, the rate of embryos developed or arrested was 51 and 49% respectively and the rate was closely same as natural sex ratio of 50:50%. 3. When rabbit morulae were cultured for 12h in the medium containing antiserum produced by antigen of testis cell, the rate of embryos developed or arrested was 48 and 52% respectively and the rate was closely same as natural sex ratio of 50:50%. 4. Eighty rabbit embryos which were not affected by H-Y antiserum were transferred to four recipients. Two recipients were pregnant and born 13 pups among which 2 (14%) were male and 11 (86%) were female. In conclusion, existence of H-Y antibody in the serum from female rat immunized by injecting testis cell from newborn male rat to the spleen of the female rat was confirmed. When rabbitmorulae were exposed to H-Y antiserum and complement, about a half of embryos were developed to blastocysts. When the rabbit embryos not affected by H-Y antiserum were transferred, the rate of female offspring was 86%. Therefore, it was identified that most of embryos which were not affected by H-Y antiserum were female.
large scale production of cloned embryos requires the technology of multiple generation nuclear transplantation(NT) using NT embryos as the subsequent donor nuclei. The purposes of this study were producing the second generation cloned rabbit embryos, and also to determine the electrofusion rate and in vitro developmental potential comparatively in the cloned embryos of the first and second NT generation. The embryos of 16-cell stage were collected from the mated does by flushing oviducts with Dulbecco's phosphate buffered saline(D-PBS) containing 10% fetal calf serum(FCS) at 47 hours after hCG injection In the first generation NT, the nuclear donor embryos were synchronized in the phase of Gi /S transition of 32-cell stage. The first generation NT embryos which were developed to 8-cell were synchronized in Gi /S transition phase of the following 16-cell stage and used as donor nuclei for second generation Synchronization of the cell cycle of blastomeres was induced, first, using an inhibitor of microtuble polymerization, colcemid for 10 hours to arrest blastomeres in M phase, and secondly, using a DNA synthesis inhibitor, aphidicolin for 1.5 to 2 hours to arrest them in Gi /S transition boundary. The recipient cytoplasms were obtained by removing the nucleus and the first polar body from the oocytes collected at 14 hours after hCG injection. The separated donor blastomeres were injected into the enucleated recipient oocytes by micromanipulation and were electrofused by electrical stimulation of three pulses for 60 $\mu$sec at 1.25 kV /cm in 0.28 M rnannitol solution The fused oocytes were co-cultured with a monolayer of rabbit oviductal epithelial cells in M-199 solution containing 10% FCS for 120 hours at 39$^{\circ}C$ in a 5% $CO_2$ incubator. Following in vitro culture of the first and second generation cloned embryos to blastocyst stage, they were stained with Hoechst 33342 dye for counting the number of blastomeres by fluorescence microscopy. The results obtained were summarized as follows: 1. The electrofusion rate was found to be similar as 79.4 and 91.5% in the first and second generation NT rabbit embryos, respectively. 2. The in vitro developmental potential to blastocyst stage of the second generation NT embryos (23.3%) was found significantly(p<0.05) lower, compared with that of the first generation NT embryos (56.8%). 3. The mean blastomeres counts of embryos developed to blastosyst stage following in vitro culture for 120 hours and also their daily cell cycles during the culture period were decreased significantly (p<0.05) to 104.3 cells and 1.33 cylces in the second NT generation, compoared with 210.4 cells and 1.54 cycles in the first NT generation, respectively.
Kang, T. Y.;Yin, X. J.;Rho, G. J.;Lee, H.;Chae, Y. J.;Lee, H. J
Journal of Embryo Transfer
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v.15
no.2
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pp.167-173
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2000
The principal objective of this study was to clone transgenic embryos in order to improve the efficiency of transgenic animal production by the combination of microinjection and nuclear transplantation techniques. Mature female New Zealand White rabbits were superovulated by eCG and hCG treatments, fllowed by natural mating. Zygotes were collected from the oviducts at 18∼22 h after hCG injection by flushing with D-PBS containing 5% fetal calf serum(FCS). Two to three picoliters of green fluorescent protein(GFP) gene wa microinjected into male pronucleus. The foreign gene-injected zygotes were cultured in TCM-199 or RD medium containing 10% FCS with a monolayer of rabbit oviductal epithelial cells in a 5% CO2 incubator. The morulae expressing GFP gene were selected and their blastomeres were separated for the use of nuclear donor. Following nuclear transplantation of fluorescence-positive morula stage blastomeres, 13 (21.3%) out of 61 fused oocytes developed to blastocyst stage and all of the cloned blastocysts expressed GFP. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by GFP detection could be a promisible method for the preselection of transgenic embryos. Also the cloning of preselected transgenic embryos by nuclear transplantatin could be efficiently applied to the multiple production of transgenic animals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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