This study unexpectedly detected a deletion in the promoter region of ras gene in two Korean strains of oak mushrooms, Lentinula edodes (Berk.). Sequencing of the promoter regions revealed that one type consisting of two strains had a 113 bp deletion in the region. The pas promoter region of Korean strains differed by 16 bases from that of the Japanese strains. Between the two types of Korean strains, except for the deleted portion, only a single site appeared to be different.
The P38 promoter of minute virus of mice (MVM) is a very weak promoter which is strongly transactivated by viral nonstructural proteins. To analyze the upstream sequence of the P38 promoter which is responsible for the transactivation by nonstructural proteins in MVM, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) reporter plasm ids containing a series of 5' deletion and internal deletion mutants of the P38 promoter were constructed. The wild type and mutant CAT constructs of P38 promoter were cotransfected into murine A92L fibroblast cells with a plasmid expressing viral nonstructural proteins by DEAE-dextran method. Each promoter activity was analyzed by CAT assay. As previously reported (Ahn et al., 1992), the proximal DNA cis-elements required for transactivation of the MVM P38 promoter are GC box and TATA box. However, the analysis of 5' deletion mutants showed that H-l tar like sequence (MVM TAR) which is located between -143 and -122 relative to the transcription initiation site is also required for transactivation of the P38 promoter by nonstructural proteins. Interestingly, even if the MVM TAR was removed by internal deletion, the level of the transactivation is still 70% of wild type level of transactivation. We also found that, in addition to the MVM TAR motif, there are two other motifs which are similar to the MVM TAR sequence. When these TAR like motifs were further deleted, the levels of transactivation were decreased further. Taken together, the MVM TAR sequence and TAR like motifs located upstream of P38 promoter are playing an important role for the transactivation of P38 promoter by nonstructural proteins in minute virus of mice.
Jang, Tae Young;Koo, Bon Chul;Kwon, Mo Sun;Roh, Ji Yeol;Kim, Teoan;Park, Young Sik
Reproductive and Developmental Biology
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제37권3호
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pp.91-96
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2013
Transgenic chickens have been spotlighted as an highly potent bioreactor for their fecundity, short generation time, and eggs associated with mass production of protein. In this study, we generated transgenic chickens exhibiting oviduct specific expression of human growth hormone fused to human transferrin for oral administration. Gene of the modified growth hormone located at downstream ovalbumin promoter (~3.6 kb) was introduced to stage X blastodermal cell employing retrovirus vector system. Several transgenic chickens were successfully generated. However, genomic analyses showed unexpected deletion within the transgene. The modification of the transgene seemed to occur during germ cell formation because the deletion was detected only from the sperm DNA of the G0 founder animal. There was no evidence of deletion in the somatic cell DNA samples of the same chicken. Consequently, same pattern of the deletion was confirmed in both somatic and germ cells of the G1 progeny.
A strong oxidative stress-inducible peroxidase promoter (referred to as SWPA2 promoter) was cloned from tell cultures of sweetpotato (Ipomoea batatas) and characterized in transgenic tobacco cultured cells in terms of biotechnological applications. Employing a transient expression assay in tobacco protoplasts, with five different 5'-deletion mutants of the SWPA2 promoter fused to the $\beta$-glucuronidase (GUS) reporter gene, the 1314 bp deletion mutant showed approximately 30 times higher GUS expression than the CaMV 35S promoter. The expression of GUS activity in suspension cultures of transgenic cells derived from transgenic tobacco leaves containing the -1314 bp SWPA2 promoter-GUS fusion was strongly expressed following 15 days of subculture compared to other deletion mutants, suggesting that the 1314 bp SWPA2 promoter will be biotechnologically useful for the development of transgenic cell lines engineered to produce key pharmaceutical proteins. In this respect, we developed transgenic cell lines such as tobacco (Nicotiana tabacum L. BY-2), ginseng (Panax ginseng) and Siberian ginseng (Acanthopanax senticosus) using a SWPA2 promoter to produce a human lactoferrin (hLf) and characterized the hLf production in cultured cells. The hLf production monitored by ELISA analysis in transgenic BY-2 cells was directly increased proportional to cell growth and reached a maximal level (up to 4.3% of total soluble protein) at the stationary phase in suspension cultures. The SWPA2 promoter should result in higher productivity and increased applications of plant cultured cells for the production of high-value recombinant proteins.
The glpD genes encoding gly-3-p dehydrogenase is essential for the aerobic growth of E. coli on glycerol or gly-3-p. The glpE gene, the function of which is unknownm is transcribed divergently with respect to glpD gene. Expression of the adjacent but divergently transcribed glpD the glpE genes is positively regulated by the cAMP-CRP complex. In this study, for a precise investigation of the functional elements in the regulatory region for transcription activation by cAMP-CRP, deletion mutation have been introducted into the regulatory region. The effect of the deletion mutant on transcriptional regulation was tested in vivo by $\beta$-galctosidase activity. Deletion mutants in the regulatory region of glpD demonstrated that the presence of the CRP-binding site resulted in an sixfold increase in promoter activity. And also deletion mutants of glpE gene demonstrated that the presence of the CRP-binding site resulted in an eightfold increase in promoter activity. Insertion of 22 bp oligomer in the deletion mutants has shown that the CRP binding site is need for maximal expression of glpD and glpE genes. glpD and glpE gene, cAMP-CRP complex, deletion mutant, transcriptional regulation.
The promoter region flanking the 5’ CAZFP1 coding region was isolated from the genomic DNA of Capsicum annuum. To identify the upstream region of the CAZFP1 gene required for promoter activity, a series of CAZFP1 promoter deletion derivatives was created. Each deletion construct was analyzed by Agrobacterium-mediated transient transformation in tobacco leaves after infection by Pseudomonas syringae pv. tabaci, or treatment with methyl jasmonate (MeJA), ethylene, abscisic acid (ABA), salicylic acid (SA), cold and wounding. Promoter fragments of 685 bp or longer showed 7-fold or greater induction after P. s. pv. tabaci infection and MeJA treatment. The CAZFP1 full-length promoter (-999 bp) also showed 6-fold induction in response to ethylene. The transiently transformed tobacco leaves with the CAZFP1 full length promoter fused-GUS gene showed more than 5-fold induction in response to SA, ABA and cold. These results suggest that the CAZFP1 promoter contains responsive elements for pathogen, MeJA, ethylene, SA, ABA and cold.
Objective : We analyzed the methylation status of the O6-methylguanine-DNA methyltransferase (MGMT) gene promoter in World Health Organization (WHO) grade III gliomas in association with other molecular markers to evaluate their prevalence. Methods : The samples of a total of 36 newly WHO grade III glioma patients including 19 anaplastic oligodendrogliomas (AO), 7 anaplastic oligoastrocytomas (AOA), and 10 anaplastic astrocytomas (AA) were analyzed. The methylation status of the MGMT gene promoter was confirmed by methylation-specific polymerase chain reaction. The 1p/19q chromosomal deletion status and EGFR amplification were assessed by Fluorescence In-Situ Hybridization. MGMT, EGFR, EGFRvlll, and p53 expression were analyzed by immunohistochemical staining. Results : The MGMT gene promoter was methylated in 32 (88.9%) and unmethylated in 4 (11.2%) Among them, all of the AO and AOA had methylated MGMT gene promoter without exception. Significant associations between MGMT gene promoter hypermethylation and 1p/19q deletion was observed (p=0.003). Other molecular markers failed to show significant associations between MGMT gene promoter statuses. Conclusion : There was extensive epigenetic silencing of MGMT gene in high grade gliomas with oligodendroglial component. Together with frequent 1p/19q co-deletion in oligodendroglial tumors, this may add plausible explanations supporting the relative favorable prognosis in oligodendroglial tumors compared with pure astrocytic tumors.
Matrix metalloproteinases (MMP) are key enzymes involved in cell and tissue remodeling during ovarian follicle development and ovulation. The control of MMP9 transcription in ovarian follicles occurs through a core promoter region (-2,400 to -1,700 bp). The aim of this study was to screen genetic variations in the core promoter region and examine MMP9 transcription regulation and reproduction performance. A single cytosine deletion/insertion polymorphism was found at -1954 $C^+/C^-$. Genetic association analysis indicated significant correlation between the deletion genotype ($C^-$) with total egg numbers at 28 weeks (p = 0.031). Furthermore, luciferase-reporter assay showed the deletion genotype ($C^-$) had significantly lower promoter activity than the insertion genotype ($C^+$) in primary granulosa cells (p<0.01). Therefore, the identified polymorphism could be used for marker-assisted selection to improve chicken laying performance.
대두 glycinin 유전자의 조직 특이적이고 분화 발달 특이적인 발현 조절 메카니즘을 연구하기 위하여 Gy2 유전자의 5' upstream 부위 염기서열을 조사한 결과, glycinin 유전자의 발현을 조절하는 인자로 여겨지는 여러 가지 조절 인자들을 발견하였다. 진핵세포 유전자에 공통적으로 존재하는 TATA box와 AGGA box가 존재하고, 종자 저장 단백질에서 공통적으로 발견되는 embryo factor binding sequence, RY repeat CACA sequence, ${\beta}$-conglycinin enhancer 와 유사한 sequence 등이 발견되었다. 이러한 조절 요소들이 Gy2 유전자의 발현 조절에 미치는 영향을 알아보기 위해 Gy2유전자의 5' upstream부위를 Exo III nuclease와 여러가지 제한효소를 이용하여 일련의 deletion mutants를 제조한 후 GUS 유전자와 결합시켰다. 이들 여러가지 chimeric constructs를 대두 원형질체에 전입하고 원형질체로부터 추출물을 분리하여 GUS 활성을 조사한 결과, $-28l{\sim}-223$ 혹은 $-l70{\sim}-122$ 부위를 포함하였을 경우 활성이 감소하였고, $-223{\sim}-170$ 혹은 $-l22{\sim}-16$ 부위를 포함하였을 경우 활성이 높게 나타났다. 이러한 Gy2 유전자의 이중적인 발현 양상은 glycinin 유전자의 발현조절에 음성 조절 요소와 양성 조절 요소가 관여하고있다는 사실을 제시해 주고 있다. 또한 이들 여러가지 chimeric constructs로 형질 전환된 담배의 종자와 잎에서 GUS활성을 조사한 결과, CaMV promoter를 포함하는 chimeric construct는 종자와 잎에서 모두 활성을 나타냈으나, Gy2 Promoter를 포함하는 chimeric constructs는 종자에서만 GUS 활성을 나타내고 잎에서는 활성이 나타나지 않는 조직 특이적인 발현 양상을 나타내었다.
NPR1 is a positive regulator of systemic acquired resistance in Arabidopsis and rice. Expression of the rice gene OsNPR1 is induced by salicylic acid (SA). To identify the region of the OsNPR1 promoter involved in response to SA, we carried out deletion mutagenesis of the region 1005 bp upstream of the OsNPR1 start codon. Ciselement analysis revealed that the OsNPR1 promoter contains W-boxes and ASF1 motifs, both of which are known to be functional cis-elements of the WRKY and bZIP proteins, respectively. The deletion constructs 1005:LUC and 752:LUC, were induced by up to 4.3- and 3.8-fold, respectively, following SA treatment, suggesting that W-boxes and ASF1 motifs may play an important role in the strong induction of these constructs by SA. Using mutation analysis, we also showed that both the W-box and ASF1 motif are necessary for SA-induced expression of OsNPR1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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