The aim of this study was to evaluate the effects of chitosan coating on the attachment, proliferation, functional and morphological change of human gingival fibroblasts. Primary culture of human gingival fibroblasts were grown in Dulbecco's modified Eagle's medium with 10% fetal bovine serum and 1% antibiotics. In experimental group, cells were inoculated in the multiwell plates coated with chitosan in concentration of 0.02, 0.2, and 2 mg/ml. Cell counting and MTT assay were done after 0.5, 1.5, 3, 6 and 24 hours of incubation to evaluate the cell attachment, and then after 2 and 7 days of culture to evaluate the cell proliferation. The alkaline phosphatase activity was measured after 4 and 7 days of culture and the ability to produce mineralized nodules was evaluated after 21 days of culture. The results were as follows : The morphology of cells on the chitosan-coated well was round or spheric. Round cells were aggregated since 6 hours of culture and showed nodule-like appearance after 24 hours of culture and did not achieved confluency at 7 days. The attachment of gingival fibroblasts was inhibited by chitosan coating with a tendency of dose dependent pattern. But, cellular activity of unit cell was higher than control. The proliferation of gingival fibroblasts was inhibited by chitosan coating at 2 mg/ml(P<0.01), while the cell proliferation at 0.02, 0.2 $mg/m{\ell}$ was comparable to the control well. Total alkaline phosphatase activity was inhibited by chitosan coating and decreased in the course of time. While ALP activity of unit cell was the highest at 2mg/ml after 4 days of culture. Finally, gingival fibroblasts produced the mineralized nodule at 2 mg/ml. In summary, the attachment, proliferation, and alkaline phosphatase activity of gingival fibroblasts were influenced differently by the concentration of coated chitosan. From this study, it could be used as the matrix of tissue engineering for gingiva without inhibition on proliferation of gingival fibroblasts using chitosan at the optimal concentration (0.02mg/ml).
가정에서 유치가 탈락하였을 경우 쉽게 구할 수 있는 저장 용액에 보관한 후, 보관되었던 유치에서 세포를 배양할 수 있다면 지금보다 더 많은 유치로부터 줄기 세포를 추출할 수 있을 것이다. 본 연구는 유치의 치수 세포가 다양한 보관 용액의 종류와 기간에 영향을 받는지 확인해 보고자 하였다. 330개의 탈락 유치를 신선군, 건조군, 세포배양액 2, 4, 7일 보관군, 우유 2, 4, 7일 보관군, 생리식염수 2, 4, 7일 보관군으로 각각 30개씩 무작위로 나누었다. 각 군 간의 유치 치수 조직 세포의 일차 배양을 시행하여 성공한 개수와 실패한 개수를 계산하여 생존 성공률을 비교하였다. 일차 배양 결과 보관 기간이 늘어날수록 일차 배양 시 세포의 생존 성공률이 낮아지는 것으로 나타났다. 2일 보관군과 4일 보관군까지 세포배양액, 우유, 생리식염수 간의 보관 용액에 따른 성공률의 유의할 만한 차이는 없었다. 그러나 7일 보관군에서는 세포배양액에 비해 우유와 생리식염수에 보관한 유치에서 성공률이 유의하게 떨어지는 것으로 나타났다. 유치 발거 후 우유나 생리식염수 등의 보관용액에 일정 기간 보관 후 그 치수 조직을 세포 배양에 사용하는 것이 가능하지만 보관 기간이 길어질수록 세포 획득 가능성이 줄어든다.
Purpose :Periodontal ligament stem cells maintain tissue homeostasis in periodontal ligament. The purpose of this study was to determine the characteristics of periodontal ligament stem cells isolated from premolar teeth and observe protective effects against oxidative damage caused by Triethylene glycol dimethacrylate (TEGDMA) following treatment with N-acetylsysteine amide (NACA) drug known as enzymatic antioxidants. Methods : Primary periodontal ligament stem cell (PDSC) culture was performed from simply extracted human premolar of orthodontic patients. The characteristics of the primary cultured PDSCs was analyzed using the FACS system. PDSCs was incubated with TEGDMA and NACA. The cell proliferation and survival was determined using WST-1 assay. Collected data were analyzed using SPSS Window 20. Results : Primary cultured PDSCs grow on the floor and develop rapidly in a cluster form from up to 14 days. The morphology of PDSCs showed the spindle-shaped cells and grew directionally. FACS analysis, In addition, positive expression of visible cells were observed in mesenchymal stem cell biomarkers. PDLSCs cell viability was significantly decreased at high concentration in both 3 and 6 hours after TEGDMA treatment. We observed a decrease in the number of cells as well as a morphological change of PDLSCs. Antioxidative effect was notable since the death of PDLSC death was significantly inhibited compared to the control group at 24 and 48 hours after NACA treatment. Conclusion : Therefore, based on the results of this study, further research should be encouraged considering the development of clinical treatment methods using various antioxidants as well as regenerative engineering techniques utilizing periodontal ligament stem cells.
It is difficult to obtain sufficient healthy skin for coverage of a wide area of skin wound. In the skin, an additional population of living epithelial cells is located in the outer root sheath (ORS) of hair $follicles.^{1),2)}$ ORS cells should be a good source of epithelium because they are easily obtainable and patients do not have to suffer from scar formation at donor sites. We modified ordinary primary culture technique for the purpose of solving such problem that epithelial cells have a low propagation and easy aging during culture periods. First of all, we improved primary cultivation methods. In the ordinary primary culture, average yield of human ORS cells was $2\;{\times}\;10^3$ cells/follicle by direct incubation with trypsin (0.1%)/EDTA (0.02%) solution for 15 min at $37^{\circ}C$ but we could obtain about $6.5\;{\times}\;10^3$ cells/follicle by two step enzyme digestion method with dispase (1.2 U/ml) and trypsin (0.1%)/EDTA (0.02%) solution. So we could achieve three times higher primary cultured ORS cell yield. Secondly, we could obtain total $2\;{\times}\;10^7$ cells in serum free medium and even more total $6\;{\times}\;10^7$ cells in modified E-medium with mitomycin C-treated feeder cells during 17 days. Using the cultured ORS cells, and we could make bioartificial skin equivalent in vitro and concluded that ORS cells were progenitor cells for skin epithelial cell.
Aggregates of specific cells are often regarded as better from in artificial organs and mammalian cell bioreactors in terms of cell-specific functionality. In this study, the morphology and liver specific functions of freshly harvested primary rat hepatocytes, which were cultivated as spheroids and entrapped in a synthetic thermo-reversible extracellular matrix, were examined and compared to a control (hepatocytes in single cell form). A copolymer of N-isopropylacrylamide(98 mole % in feed) and acrylic acid (poly (NiPAAm-co-AAC)), a thermo- reversible copolymer gel ma- trix, was used to entrap hepatocytes either in spheroids or single cells. During a 7-day culture pe-riod, the spheroids maintained higher viability and produced albumin and urea at a relatively con-stant rate, while, the single cell culture showed a slight increase in cell numbers and a reduction in albumin secretion Hepatocytes cultrured as spheroids present a potentially useful three-dimensional cell culture system for application in bioartificial liver device.
This study investigated the properties of primary cultured proximal tubule cells in hormonally defined(insulin, transferrin, and hydrocortisone), serum-free medium or 10% serum-supplemented medium. The growth rate of the primary cultured proximal tubule cells was lower in the hormonally defined, serum-free medium than in the 10% serum- supplemented medium(p < 0.05), while the activities of brush border marker enzymes, alkaline phosphatase(AP), leucine aminopeptidase(LAP), and y-glutamyl transpeptidase(${\gamma}$-GTP) were increased(p < 0.05). The activities of these enzymes, however, decreased with the lapse of incubation time to 50-70% after 6 days culture compared to those of the freshly-prepared proximal tubules. The enzymatic activities of the primary cultured proximal tubul cells on 6, 9, 12, and 15 days of culture were significantly increased in the hormonally defined, serum-free medium compared to the 10% serum-supplemented medium(p < 0.05). The functional differentiation of the primary culture was examined by observing multicellular domes of the confluent monolayer, which is indicative of transepithelial solute transport. The dome formation by the proximal tubule cultures occurred at a higher frequency in the hormonally defined, serum-free medium than in the 10% serum-supplemented medium(p < 0.05). Upon electron microscopic examination, an increased density of the brush border was observed in the hormonally defined, serum-free medium compared to the cells grown in 10% serum-supplemented medium. The activities of $Na^+$glucose cotransporter($^{14}C$-a-MG uptake), $Na^+$phosphate cotransportere($^{32}P$ uptake) and $Na^+$ transporter($^{22}Na^+$ uptake) in the brush border membrane, and of $Na^+/K^+$-ATPase($^{86}Rb$ uptake) in the basolateral membrane were significantly stimulated in the hormonally defined, serum-free medium than in 10% serum-supplemented medium(p < 0.05). In conclusion, the primary cultured proximal tubule cells grown in the hormonally defined, serum-free medium demonstrated a slower growth rate, but the functions of cell were enhanced.
A culture system for lactating rat mammary acini was evaluated, where the primary indicator of performance was lactose secretion, measured by a sensitive bioluminescence assay. Lactose secretion was reduced by half (p<0.01) over the first 6 h of culture by overnight feed withdrawal (FW) from tissue donors but was sensitive to increased glucose concentration in the culture media (p<0.001) up to 30 mM. Lactose production of cells from fed donors over the first 6 h in culture in 30 mM glucose was 8.9 fmol/cell/h - a rate calculated to be about half that in vivo. No significant difference was shown in lactose secretion by cells from fed or FW rats over 6-24 h. Lactose secretion was 3.6 fmol/cell/h by cells from fed animals in 40 mM glucose concentration media over the 6-24 h culture period. Addition of insulin to the culture media had no effect on rates of lactose secretion while addition of prolactin and hydrocortisone, with or without insulin, significantly (p<0.001) decreased lactose production over both 0-6 h and 6-24 h culture periods. Lactose synthesis in vitro was significantly enhanced by aeration of the media during collagenase digestion of mammary tissue (p<0.05). No improvement in lactose secretion was effected by shaking of cells during culture, Matrigel coating of culture dishes or change in cell density over a range up to 2.5 million cells per ml.
조직특이적 프로모터 및 벡터를 연구하고 검증하기 위해서는 조직 및 종의 특이성을 유지하는 세포 시스템을 개발하는 것이 바람직하다. 이러한 시스템은 형질전환동물 모델에 대한 효과적인 대안이다. 우리는 베타 카제인 (CSN2)의 세포 형태와 mRNA 수준에 기초하여 일차 배양으로부터 돼지 유선 상피 세포 주 (PMECs)를 확립하였다. 선택된 PMECs는 cytokeratin 항체에 의해 염색되었으며, 유선 상피 세포에 존재한다고 생각되어지는 유즙 단백질 유전자 (CSN2, 락토페린 및 유청 단백질)를 발현하는 것으로 나타났다. 또한, 3D 배양에서 PMECs932-7의 acini 구조를 확인하기 위해 살아있는 세포를 핵산에 결합하는 SYTO-13으로 염색하였다. 우리는 마트리겔 (matrigel)에 있는 PMECs의 acini가 말초 세포의 응집에 의해 형성되고 공간의 lumen을 특징으로 한다는 것이 관찰하였다. 우리는 PMECs의 matrigel 사용법과 세포 밀도를 포함한 세포 배양 조건의 영향을 시험함으로서 시스템을 시연했다. 이러한 결과는 PMCEs의 유선 상피 세포는 유전적 또는 구조적 특징을 갖고 있음을 시사하고 있다.
The objective of this study was to investigate the effects of cell status of BOEC on development of bovine IVM/IVF embryos and gene expression in BOEC before or after culturing of embryos. The developmental rates beyond morula stage in the BOEC co-culture group was significantly higher than in the control group (p<0.05). In particular, blastocyst production in the BOEC co-culture group (28.3%) was dramatically increased compared with the control group (7.2%). In the in vitro development of bovine IVM/IVF embryos according to cell status, the developmental rates beyond morula stage in the primary culture cell (PCC) co-culture group were the highest of all experimental groups. Expression of genes related to growth (TGF-${\beta}$ EGF and IGFBP), apoptosis (Bax, Caspase-3 and p53) and antioxidation (CuZnSOD, MnSOD, Catalase and GPx) in different status cells of BOEC for embryo culture was detected by RT-PCR. While EGF gene was detected in isolated fresh cells (IFC) and PCC, TGF-${\beta}$ and IGFBP were found in IFC or PCC after use in the embryo culture, respectively. Caspase-3 and Bax genes were detected in all experimental groups regardless of whether the BOEC was used or not used in the embryo culture. However, p53 gene was found in IFC of both conditions for embryo culture and in frozen/thawed culture cells (FPCC) after use in the embryo culture. Although antioxidant genes examined were detected in all experimental groups before using for the embryo culture, these genes were not detected after use. This study indicated that the BOEC co-culture system used for in vitro culture of bovine IVF embryos can increase the developmental rates, and cell generations and status of BOEC might affect the in vitro development of bovine embryos. The BOEC monolayer used in the embryo culture did not express the growth factors (TGF-${\beta}$ and EGF) and enzymatic antioxidant genes, thereby improving embryo development in vitro.
The primary culture of human nasal epithelial cells was performed using the inferior nasal turbinate tissues, and infected with Hantaan virus to examine the hypothesis of airborne transmission of Hantaan virus in humans. The primary culture cells were identified as epithelial cells by morphologic and immunologic analyses. The viral antigens were detected in the primary human nasal epithelial cells infected with Hantaan virus by immunofluorescence staining. The ICAM-1 induction by Hantaan virus or $IFN-{\gamma}$ was examined in the primary human nasal epithelial cells and human lung fibroblasts (WI-38). Hantaan virus induced the surface ICAM-1 in WI-38 cells in a time-dependent manner, and $IFN-{\gamma}$ induced the surface ICAM-1 in a dose-dependent manner in HNEC and WI-38 cells. These results revealed that the human nasal epithelial cells are susceptible to Hantaan viral infection supporting the hypothesis of airborne transmission of Hantaan virus in humans. The human lung fibroblasts also might have an important role in the pathogenesis of Hantaan virus through the induction of ICAM-1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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