Cytochrome-c-oxidase in mitochondria membrane is one of the most important factors for energy generation in the cell. As well as it is electron transfer enzyme, it is also heavily related to the apoptosis and other pathologic conditions. Meanwhile, porin is a protein located in inner and outer membranes of mitochondria, which is assumed to be functionally correlated with cytochrome-c-oxidase. It functions as forming electron transfer chain and conveying ATP. Therefore, using the immune-microscopy, It compared the distribution of cytochrome-c-oxidase and porin to figure out the formation and changes on cytochrome-c-oxidase in mitochondrial cristae. The sarcroplasm of cardic muscle tissue has many mitochondria. They are classified into two groups: the mitochondria with many cytochrome-c-oxidase and the mitochondria with only porins. The mitochondria with porins had few cytochrome-c-oxidases in their membrane; in contrast, the other mitochondria with rich cytochrome-c-oxidase had few porins in their walls. In addition, according to the location of the tissue in bovine heart, distribution of those kind of mitochondria had been clearly separated. As a result, it could be assumed that immature mitochondria has many porins to transfer the protein materials from sarcroplasm through the porins, and they made cytochrome-c-oxidase until it is enough, and then they decreased the porin and maintained minimum number of the porin.
Antibiotic resistance is often associated with the production of inner membrane proteins (for example, AcrAB/TolC efflux pump) that are capable to extrude antibiotics, detergents, dyes and organic solvents. In order to evaluate the unknown MarB function of Escherichia coli, especially focused on the function of OmpF porin, several mutants were construted by T4GT7 transduction. MarA plays a major roles in mar (multiple antibiotic resistance) phenotype with AcrAB/TolC efflux pump in E. coli K-12. Futhermore, MarA decreases OmpF porin expression via micF antisense RNA. Expression of acrAB is increased in strains containing mutation in marR, and in those carrying multicopy plasmid expressing marA. MarB protein of E. coli K-12 showed its activity at OmpF porin & TolC protein as target molecule. Some paper reported MarB positively regulates OmpF function. MarA shows mar phenotype, and MarB along with MarA show decreased MIC through OmpF function. By this experiment, MarB could decrease MIC through the OmpF porin & TolC protein as target.
Porin proteins of Gram-negative bacteria are outer membrane proteins that act as receptors for bacteriophages and are involved in a variety of functions like solute transport, pathogenesis, and immunity. Salmonella enterica serovar Typhi (S. Typhi), a Gram-negative bacterium, is the causative agent of typhoid fever. Porins of S. Typhi have been shown to have a potential role in diagnostics and vaccination. In the present study, the major outer membrane proteins OmpF and OmpC from S. Typhi were cloned in pQE30UA vector and expressed in E. coli. The immunogenic nature of the recombinant porin proteins were evaluated by ELISA by raising hyperimmune sera in Swiss Albino mice with three different adjuvants (i.e., Freund's adjuvant and two human-compatible adjuvants like montanide and aluminium hydroxide gel) and proved to be immunogenic. The recombinant OmpF and OmpC generated in this work may be used for further studies for vaccination and diagnostics.
Kim, Seul-Ki;Yum, Soo-Hwan;Jo, Wol-Soon;Lee, Bok-Luel;Jeong, Min-Ho;Ha, Nam-Chul
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.5
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pp.845-851
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2008
TolC is an outer membrane porin protein and an essential component of drug efflux and type-I secretion systems in Gram-negative bacteria. TolC comprises a periplasmic $\alpha$-helical barrel domain and a membrane-embedded $\beta$-barrel domain. TdeA, a functional and structural homolog of TolC, is required for toxin and drug export in the pathogenic oral bacterium Actinobacillus actinomycetemcomitans. Here, we report the expression of the periplasmic domain of TdeA as a soluble protein by substitution of the membrane-embedded domain with short linkers, which enabled us to purify the protein in the absence of detergent. We confirmed the structural integrity of the TdeA periplasmic domain by size-exclusion chromatography, circular dichroism spectroscopy, and electron microscopy, which together showed that the periplasmic domain of the TolC protein family fold correctly on its own. We further demonstrated that the periplasmic domain of TdeA interacts with peptidoglycans of the bacterial cell wall, which supports the idea that completely folded TolC family proteins traverse the peptidoglycan layer to interact with inner membrane transporters.
Bacterial colonies which were able to oxidize the manganese were isolated from six soil samples in Byungchon area. Among them, one bacterial strain was selected for this study based on its high manganese oxidation activity. This selected bacterial strain was identified as Pseudomonas sp. MN5 through physiological-biochemical test and analysis of its 16s rRNA sequence. This selected bacterial strain was able to utilize fructose and maltose, but they doesn't utilizing various carbohydrates as a sole carbon source. Pseudomonas sp. MN5 showed a very sensitive to antibiotics such as kanamycin, chloramphenicol, streptomycin and tetracycline, but a high resistance up to mg/ml unit to heavy metals such as lithium, manganese and barium. Optimal manganese oxidation condition of Pseudomonas sp. MN5 was pH 7.5 and manganese oxidation activity was inhibited by proteinase K and boiling treatment. The manganese oxidizing protein produced by Pseudomonas sp. MN5 was purified by ammonium sulfate precipitation, HiTrap Q FF anion exchange chromatography and G3000sw $_{XL}$ gel filtration chromatography. By sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis, three manganese oxidizing protein with estimated molecular weights of 15 kDa, 46.7 kDa and 63.5 kDa were detected. Also, it was estimated that manganese oxidizing protein produced by Pseudomonas sp. MN5 were a kind of porin proteins through internal sequence and N-terminal sequence analysis.
Decreased porin-mediated outer membrane penetration of hydrophilic antibiotics is a common mechanism of antibiotic resistance in Gram-negative bacteria. This study was undertaken to determine whether a null mutation in Pseudomonas putida would suppress porin synthesis, and therefore reduce the susceptibility of the organism to streptomycin, norfloxacin, and tetracycline. Inverse PCR amplification and double-stranded DNA sequencing were used to identify chromosomal genes carrying TnphoA'-1 inserts. Genome database available was used to identify putative homologue genes, one of which encodes protein with homology to domains of the MutS of P. putida, suggesting a crucial role in the multidrug resistance. Increased resistance to streptomycin, norfloxacin, and tetracycline might be due to accumulation of compensatory mutations. Either no growth or slow growth was observed in P. putida KH1027 when grown in minimal medium containing gluconate, glucose, or citrate; however, it is not clear whether the growth patterns contributed to the multidrug resistance.
Electron microscopy has used for analysing the structure of protein over 30 years. Bacteriohodopsin and porins are used as examples to illustrate the progress that has recently been made in attaining resolutions which hitherto were regarded as exclusive to the realm of x-ray crystallography. To determine a protein structure used by electron microscopy, one must pass through a number of basic steps including preparation of specimen , data acquisition and data processing.
Outer membrane proteins (OMPs) expressed in the Gram negative bacteria such as Salmonella play multiple functions including material transports, adhesive factors and reception of external signals. This study has been focused on an OmpW protein known as a protein required to form a hydrophobic porin in outer membrane. We have constructed a S. typhimurium CK10 mutant deleting an ompW gene on chromosome. The CK10 strain was more tolerant to SDS than the wild-type strain did. As increase of salt concentration in the culture media, significantly decreased amount of OmpW protein in cells were detected. The maximum OmpW protein was expressed in the absence of salt supplement. However, the growth of CK10 strain was indistinguishable compared to that of the wild-type strain at the variable osmotic conditions. The biological role of differential OmpW expression in response to osmotic conditions remains to be investigated.
Sung, Kyung Yong;Jung, Myunghwan;Shin, Min-Kyoung;Park, Hyun-Eui;Lee, Jin Ju;Kim, Suk;Yoo, Han Sang
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.24
no.6
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pp.854-861
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2014
The diagnosis of Brucella abortus is mainly based on serological methods using antibody against LPS, which has diagnostic problems. Therefore, to solve this problem, we evaluated two proteins of B. abortus, Cu/Zn superoxide dismutase (SodC) and outer membrane proteins 2b porin (Omp2b). The genes were cloned and expressed in a pMAL system, and the recombinant proteins, rOmp2b and rSodC, were purified as fusion forms with maltose-binding protein. The identity of the proteins was confirmed by SDS-PAGE and Western blot analysis with sera of mice infected with B. abortus. Production of cytokines and nitric oxide (NO) was investigated in RAW 264.7 cells and mouse splenocytes after stimulation with the proteins. Moreover, cellular and humoral immune responses were investigated in BALB/c mice after immunization with the proteins. TNF-${\alpha}$, IL-6, and NO were significantly inducible in RAW 264.7 cells. Splenocytes of naive mice produced IFN-${\gamma}$ and IL-4 significantly by stimulation. Moreover, number of IgG, IFN-${\gamma}$, and IL-4 producing cells were increased in immunized mice with the two proteins. Production of IgG and IgM with rOmp2b was higher than those with rSodC in immunized mice. These results suggest that the two recombinant proteins of B. abortus may be potential LPS-free proteins for diagnosis.
Selecting an appropriate antigen with optimal immunogenicity and physicochemical properties is a pivotal factor to develop a protein based subunit vaccine. Despite rapid progress in modern molecular cloning and recombinant protein technology, there remains a huge challenge for purifying and using protein antigens rich in hydrophobic domains, such as membrane associated proteins. To overcome current limitations using hydrophobic proteins as vaccine antigens, we adopted in silico analyses which included bioinformatic prediction and sequence-based protein 3D structure modeling, to develop a novel periodontitis subunit vaccine against the outer membrane protein FomA of Fusobacterium nucleatum. To generate an optimal antigen candidate, we predicted hydrophilicity and B cell epitope parameter by querying to web-based databases, and designed a truncated FomA (tFomA) candidate with better solubility and preserved B cell epitopes. The truncated recombinant protein was engineered to expose epitopes on the surface through simulating amino acid sequence-based 3D folding in aqueous environment. The recombinant tFomA was further expressed and purified, and its immunological properties were evaluated. In the mice intranasal vaccination study, tFomA significantly induced antigen-specific IgG and sIgA responses in both systemic and oral-mucosal compartments, respectively. Our results testify that intelligent in silico designing of antigens provide amenable vaccine epitopes from hard-to-manufacture hydrophobic domain rich microbial antigens.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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