Thyroid peroxidase is a biochemical target protein for the antithyroid drugs. Ethanol extracts from one hundred and thirty seven natural products were screened for the inhibition of thyroid peroxidase activity. Thyroid peroxidase was purified from porcine thyroids, and the inhibition of peroxidase activity was evaluated using guaiacol oxidation (C-C coupling) assay. Twenty one natural products expressed a remarkable inhibition (>50%) of peroxidase activity at $330{\mu\textrm{g}}$ solid weight/m. The 50% inhibitory concentration ($IC_{50}$) of 70% ethanol extract from six potent natural products ranged from 3.1 to $31.2{\;}{\mu\textrm{g}}$ solid weight/m, in contrast to the range ($0.33~0.54{\;}{\mu\textrm{g}}/ml$) of $IC_{50}$ values fro catechin and epigallocatechin gallate as positive controls. Noteworthy, the extract of Camellia taliensis showed irreversible inhibition of the enzyme. It is suggested that extract from some natural products such as Camellia taliensis, Rheum undulatum or Euphorbia perinensis, exhibiting a potent inhibition of peroxidase activity, may be developed as sources of potent antithyroid agents.
Animal mucins have structural characteristics similar to human salivary mucins. Animal mucins have been regarded as suitable substances for saliva substitutes. Since animal mucin molecules in saliva substitutes and host-derived antimicrobial salivary molecules exist simultaneously in whole saliva and the pellicles of patients with dry mouth, interactions may occur between these molecules. The purpose of this study was to investigate the influence of animal mucins on peroxidase activity in solution and on the surface of hydroxyapatite(HA) surfaces. The effects of animal mucins on peroxidase activity were examined by incubating porcine gastric mucin(PGM) or bovine submaxillary mucin (BSM) with either bovine lactoperoxidase(bLPO) or saliva samples. For solid-phase assays, immobilized animal mucins or peroxidase on three different HA surfaces(HA beads, HA disc, and bovine tooth) were used. Peroxidase activity was determined with an NbsSCN assay. The obtained results were as follows: 1. PGM enhanced the enzymatic activity of bLPO in solution phase. PGM did not affect the enzymatic activity of peroxidase in saliva sample(POS). 2. BSM did not affect the enzymatic activities of both bLPO and POS in solution phase. 3. HA-adsorbed PGM increased subsequent bLPO adsorption in all three HA phases. The activity of POS was increased on both the HA beads and bovine tooth. 4. The peroxidase activities on the HA beads and disc were increased when the HA surfaces were exposed to a mixture of bLPO and PGM. 5. The binding affinity of bLPO to PGM was greater than that of bLPO to BSM. Collectively, our results suggest that animal mucins affects the enzymatic activity of peroxidase on the HA surfaces as well as in solution. Saliva substitutes containing animal mucins may affect the function of antimicrobial components in natural saliva and saliva substitutes.
The antioxidant capacity of porcine splenic hydrolysate (PSH) was studied in vitro and in vivo. Peptide hydrolysates were prepared, using the proteolytic enzyme $Alcalase^{(R)}$. The molecular weights of PSH were 37,666, 10,673, 6,029, and 2,918 g/mol. Rats were fed a 5% (w/v) PSH diet, instead of a casein diet, for 4 wk. The food intake, body weight gain, and liver weight of rats in the PSH group were similar to those in the control (CONT) group. There were no differences in the serum total cholesterol, triglyceride, total protein, or albumin levels between PSH and CONT groups. However, the level of in vivo hepatic lipid peroxidation in PSH group was significantly lower than that in CONT. In vivo hepatic catalase and glutathione peroxidase activities in the PSH group were significantly higher than those in the control group. The in vitro protein digestibility of PSH was lower than that of casein. The in vitro trolox equivalent antioxidant capacity of PSH was significantly higher than that of the peptide hydrolysate from casein. The in vitro radical scavenging activities of PSH were significantly higher than those of the peptide hydrolysate from casein. The present findings suggest that porcine splenic peptides improve the antioxidant status in rats by enhancing hepatic catalase and GSH-Px activities, and indicate a potential mechanism of radical scavenging activity during gastrointestinal passage.
Exo-polysaccharide isolated from the culture of Grifola frondosa was modified by sodium periodate ($NaIO_4$) and sodium chlorite ($NaClO_2$) to delete polysaccharide part and phenolic compound, respectively, and was investigated what effect has each part of exo-polysaccharide against 2,2'-azobis(2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH)-induced oxidative stress in porcine kidney epithelial cells (LLC-PK1). Oxidative stress on LLC-PK1 cell was measured by cell viability, lipid peroxidation, superoxide dismutase (SOD), and glutathione peroxidase (GSH-px) activity. Exposure of LLC-PK1 cells to 1 mM AAPH for 24 hr resulted in significant decrease in cell viability, SOD, and GSH-px action, and significant increase in lipid peroxidation. The treatment of exo-polysaccharide and $NaIO_4$ modified sample protected LLC-PK1 cells from AAPH-induced cell damage such as cell viability, lipid peroxidation, SOD, and GSH-px activity in a dose dependant manner (10, 100, and $500{\mu}g/mL$). However, the treatment of $NaClO_2$ modified sample did not affect for cell viability, lipid peroxidation, SOD, and GSH-px activity. The antioxidant activity of exo-polysaccharide was significantly decreased on AAPH-induced LLC-PK1 cell system when phenolic compound was deleted. The antioxidant activity was significantly correlated with the content of phenolic compound of exo-polysaccharide.
A biosensor for the determination of hydrogen peroxide was constructed by immobilizing of porcine small instestinal tissue in a plain carbon paste, and the effect of varying the $H_2O_2$ concentration and pH on the rate of catalytic reaction was evaluated. For the mathematical simplicity, no mediator was added. Electrochemical properties and the maximal rate could be derived from the quantitative analysis of the observed phenomena related to the electrode reaction. Also, pH dependence of the Michaelis constant enabled to calculate various thermodynamic parameters and subsequently to design a electrochemical method to determine the optimum pH of enzyme.
This study was conducted to evaluate effects of storage temperatures ($4^{\circ}C$ and $20^{\circ}C$) and pig breeds (Laiwu pig and Large White pig) on the main antioxidative enzymes (superoxide dismutase, catalase, and glutathione peroxidase) activity and lipid oxidation in porcine Longissimus dorsi muscle. Activities of antioxidative enzymes (AOE) decreased slightly during storage, regardless of storage temperatures. Muscle antioxidative enzymes activities stored at $4^{\circ}C$ were higher than that stored at $20^{\circ}C$. Laiwu pig's enzymes activities were significantly (p<0.01) higher than Large White's. The level of malondialdehyde is a direct expression of the grade of lipid oxidation in meat. In our study, the malondialdehyde contents increased after 6 days storage. However, malondialdehyde contents of Laiwu pig were significantly (p<0.01) lower than Large White's. A lower content of malondialdehyde corresponds to a lower oxidation of lipids. These results indicated the muscle antioxidative ability of Laiwu pig was higher than Large White pig. It also implied that antioxidative enzymes were involved in the essentials and deciding mechanisms of meat quality by quenching oxygen free radicals and inhibiting lipid oxidation in muscle.
Oh, Seung-Kyu;Malaweera, Don Buddika Oshadi;Ramachandra, Sisitha;Shin, Sang-Tae;Cho, Jong-Ki
Journal of Embryo Transfer
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v.29
no.1
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pp.67-71
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2014
In porcine embryo culture, one of reactive oxygen species (ROS) is harmful factors that are made during in vitro culture. To decrease the detrimental effect of ROS on embryo development, superoxide dismutase, catalase and glutathione peroxidase could be used in the embryo culture. Out of these antioxidants, 7,8-dihydroxyflavone (7,8-DHF) was reported its antioxidant effects to prevent the glutamine-triggered apoptosis. Therefore, this study was performed to investigate the most appropriate concentration of 7,8-DHF in porcine embryonic development. For that, 5 different concentration (0, 0.1, 0.5, 1, $2{\mu}m$) of 7,8-DHF was supplemented in the porcine IVM media and then maturation and blastocyst formation rates were compared among 5 groups. In maturation rates of porcine oocytes, significant higher maturation rates was shown in the $1.0{\mu}m$ group compared with another 4 groups ($83.3{\pm}2.1$ vs. $80.7{\pm}1.4$, $79.8{\pm}1.4$, $78.3{\pm}1.2$, $79.4{\pm}1.6$), respectively (P<0.05). In the embryo culture, $1.0{\mu}m$ group also showed the significant higher cleavage rates ($76.8{\pm}3.1$ vs. $62.1{\pm}5.0$, $65.7{\pm}4.0$, $68.6{\pm}3.7$, $64.6{\pm}4.0%$) and blastocyst formation rates - ($39.6{\pm}4.0%$ vs. $28.6{\pm}3.3$, $31.1{\pm}3.9$, $29.3{\pm}2.5$, $39.6{\pm}4.0$, $26.4{\pm}3.2%$), respectively (P<0.05). There was no significant difference among 5 groups in the cell number of blastocyst (P<0.05). In conclusion, supplement of $1.0{\mu}m$ of 7,8-DHF was effective to increase the porcine embryonic development competence as antioxidant to ROS.
The objectives of this study were to produce polyclonal antibody to adipocyte plasma membrane (APM) proteins isolated from pig, and to investigate its tissue specificity. Plasma membrane proteins from adipocyte, brain, heart, kidney, liver and spleen were isolated using a self-forming Percoll gradient. Sheep (40kg) was immunized three times at three week interval with the purified APM proteins. Blood was taken from non-immunized sheep (NS) and from immunized sheep at 10 (AS-1), 12 (AS-2), and 14 (AS-3) days after the third immunization. Antisera titers and cross-reactivity against other tissues were determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Antisera reacted strongly to APM proteins showing detectable amounts of antibody at 1:81,000 dilution. And antisera showed much stronger reactivity to APM proteins than any other tissue plasma membrane proteins. Furthermore, tissue specificity of antisera against APM was reconfirmed by immunoblotting using anti-sheep immunoglobulin G-horseradish peroxidase conjugate as a secondary antibody Antisera to APM proteins showed adipocyte specificity compared with other tissues. In conclusion, polyclonal antibody against APM proteins isolated from pig was developed successfully in our laboratory, and these antisera showed tissue specificity with APM.
This study was designed to investigate the protective effect of Sasa borealis leaf extract on 2,2'-azobis(2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH)-induced oxidative stress in LLC-PK1 cells (porcine kidney epithelial cells). The butanol fraction from Sasa borealis leaf extract (SBBF) was used in this study because it possessed strong antioxidant activity and high yield among fractions. Exposure of LLC-PK1 cells to 1 mM AAPH for 24 hr resulted in a significant decrease in cell viability, but SBBF treatment protected LLC-PK1 cells from AAPH-induced cell damage in a dose dependant manner. To determine the protective action of SBBF against AAPH-induced damage of LLC-PK1 cells, we measured the effects of SBBF on lipid peroxidation and antioxidant enzymes activities of AAPH treated cells as well as scavenging activities on superoxide anion radical and hydroxyl radical. SBBF had a protective effect against the AAPH-induced LLC-PK1 cellular damage and decreased lipid peroxidation and increased activities of antioxidant enzymes such as superoxide dismutase and glutathione peroxidase. Furthermore, SBBF showed strong scavenging activity against superoxide anion radical. The $IC_{50}$ value of SBBF was $28.45{\pm}1.28\;{\mu}g/mL$ for superoxide anion radical scavenging activity. The SBBF also had high hydroxyl radical scavenging activity ($IC_{50}=31.09{\pm}3.08\;{\mu}g/mL$). These results indicate that SBBF protects AAPH-induced LLC-PK1 cells damage by inhibiting lipid peroxidation, increasing antioxidant enzyme activities and scavenging free radicals.
This study was designed to investigate the protective effect of fucoidan against AAPH-induced oxidative stress in LLC-PK1 cells (porcine kidney epithelial cells). Oxidative stress was induced by exposing of LLC-PK1 cells to the 1 mM 2,2'-azobis(2-amidino propane) dihydrochloride (AAPH) for 24 hr. Exposure of LLC-PK1 cells to 1 mM AAPH for 24 hr resulted in a significant (p<0.05) decrease in cell viability, but fucoidan treatment protected LLC-PK1 cells from AAPH-induced cell damage in a dose dependant manner. To investigate the protective action of fucoidan against AAPH-induced damage of LLC-PK1 cells, we measured the effects of fucoidan on lipid peroxidation and antioxidant enzymes activities of AAPH treated cells as well as scavenging activities on superoxide anion radical and hydroxyl radical. Fucoidan had protective effect against the AAPH-induced LLC-PK1 cellular damage and decreased lipid peroxidation and increased activities of antioxidant enzymes such as superoxide dismutase (SOD) and glutathione peroxidase (GSH-px). Furthermore, fucoidan showed strong scavenging activity against superoxide anion radical. The $IC_{50}$ value of fucoidan was $48.37{\pm}1.54\;{\mu}g/mL$ for superoxide anion radical scavenging activity. The fucoidan also had high hydroxyl radical scavenging activity ($IC_{50}=32.03\;{\mu}g/mL$). These results indicate that fucoidan protects against AAPH-induced LLC-PK1 cell damage by inhibiting lipid peroxidation, increasing antioxidant enzyme activities and scavenging offree radicals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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