Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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1991.04a
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pp.237-242
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1991
In order to increase the production of glutathione by maximizing the expression of recombinant gsh plasmids, two genes responsible for the biosynthesis of glutathione were cloned. A gshI gene was cloned onto pBR322 plasmid as 3.6Kb PstI DNA fragment from E. coli K-12 chromosomal DNA. Also gshII gene was cloned onto pUC13 plasmid as 2.2Kb PstI-BamHI DNA fragment. In order to improve the glutathione producing activity more efficiently, various recombinant plasmids containing tandem repeated gshI genes or both genes in various copy number onto the same vector were constructed. E. coli cells harboring pGH501 plasmid (pUC8-gshI$\cdot$I$\cdot$II) showed the highest glutathione synthesizing activity. The conditions for glutathione production with an ATP-generating system such as acetate kinase reaction of E. coli cells or glycolytic pathway of yeast cells were examined using the E. coli cells harboring the pGH501 plasmid. When the acetate kinase reaction of E. coli cells was used as an ATP generating system, 20mM of L-csteine was converted into glutathione with a yield of $100\%$.
Choi, Hye;Park, Key Sun;Bae, Seon Joo;Song, Su Jeong;Kim, Kyoon Eon;Park, Jong-Sang;Choi, Joon Sig
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.33
no.11
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pp.3676-3680
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2012
An Epstein-Barr virus (EBV)-based plasmid contains the EBV nuclear antigen 1 (EBNA1) gene and EBV replication origin (oriP) sequence. Since EBNA1 (the only EBV-encoded protein) is combined with oriP, it is replicated simultaneously with chromosomal DNA in human, primate, and canine cells and is faithfully segregated at a stable copy number upon cell division. Consequently, it can be used to stably express gene inserts over a prolonged time in target cells. We have previously shown that the polyamidoamine (PAMAM) dendrimer can be surface-modified with L-arginine. Arginine is present at a high frequency in the transactivator of transcription (Tat) sequences of human immunodeficiency virus (HIV). It presents high membrane permeability and permits effective transfer of DNA inside the cells. In this study, we constructed two kinds of recombinant DNA by inserting the luciferase gene and enhanced green fluorescence protein (eGFP) gene as reporter genes into the pCEP4 plasmid vector. We measured dynamic light scattering (DLS) and zeta potential after preparing PAMAM-based cationic polymer/EBV-based plasmid complexes. We performed transfection of HEK 293 cell lines with the polyplexes, and monitored luciferase activity and green fluorescence protein (GFP) expression. Our results show that PAMAM-based cationic polymer/EBV plasmid complexes provide enhanced and sustained gene expression.
The 5.8 kb pMMH1, rolling-circle replication (RCR) plasmid of the wild type soil Bacillus mesentericus was developed into a novel secretion vector system in Bacillus subtilis. The pMMHl turned out to have a replication origin and two open reading frames (ORFs) of the putative γ-GTP and type I signal peptidase (sipP). To characterize the regions necessary for plasmid stability and high copy number, five vectors (pPS, pPP, pEN, pMN, pME) were constructed by disruption or deletion of each region in pMMH1. Like pMMHl all constructed vectors were stable over 100 generations In a non-selective medium. Since pPS was the smallest (2.3 kb)of all, it was selected for the construction of a navel secretion vector, Using the $\alpha$-amylase promoter/signal sequence of B. subtilils the novel plasmid pJSN was constructed. When $\beta$-glucosidase was expressed using pJSN, we found $\beta$-glucosidase activity in the medium. This result strongly suggested that plasmid pJSN can be used for the production of bioactive peptides in B. subtilis.
Cha Kwang Hyun;Kim Myoung Dong;Lee Tae Hee;Lim Hyung Kweon;Jung Kyung Hwan;Seo Jin Ho
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.9
no.6
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pp.523-527
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2004
Recombinant Saccharomyces cerevisiae expression systems were developed to produce a novel human anti-angiogenic protein called LK8, an 86 amino-acid kringle fragment protein with three disulfide linkages. Galactose-inducible LK8 expression plasmid was constructed, and LK8 production levels by four S. cerevisiae strains were compared in order to select an optimal host strain. S. cerevisiae 2805 was the most efficient among the strains tested. Elevating the LK8 gene copy number through multiple integration using 8-sequences as target sites resulted in more than a two-fold increase in the LK8 production level compared with the plasmidbased expression system. The maximum LK8 protein concentration of 25 mg/L was obtained from batch cultivation of the yeast transformant that harbors 16 copies of the LK8 gene. In conclusion, the strain integrated with the multiple LK8 gene secreted the protein with relatively high yield, although, the increased LK8 gene dosage over 11 copies did not lead to further enhancement in batch cultivations.
When Escherichia coli W, which is able to utilize sucrose as a carbon source, harboring a high-copy-number plasmid (pSYL105) containing the Alcaligenes eultrophus polyhydroxyalkanoate(PHA) biosynthetic genes was cultured in a defined medium, the final poly(3-hydroxybutyric acid), PHB, concentration obtained was as low as $0.21g/\ell$. Ten different complex nitrogen sources were, therefore, examined for their ability to enhance PHB synthesis when supplemented to a defined medium. Addition of tryptone, casamino acids, casein hydrolysate, or soy bean hydrolysate enhanced PHB synthesis most significantly, resulting in more than 10 times higher PHB concentration compared with that obtained in a defined medium. Furthermore, PHB yield on sucrose was also increased by more than a 10 fold by the addition of these complex nitrogen sources, which suggested that PHB might be efficiently produced by the recombinant E. coli W(pSYL105) using sucrose as a carbon source.
The successful gene transfer and transient expression was demonstrated in olive flounder embryos using lipofected sperm. Olive flounder sperm interacted with foregn plasmid DNA encapsidated by positively charged liposome. The maximum plasmid copy number that associated with the sperm was 5 copies/sperm based on the examination of DNA blot assay. The foreign DNA was transferred into fertilized eggs without any adverse effect on fertilization and survival of embryos (P>0.05) and retained in embryos until at least 42 hours with successful expression. The maximal expression was detected in 18 hours after fertilization at 18$^{\cird}C$ and gradually decreased with development of embryo. Most of DNA transferred into embryos persisted extrachromosomally without significant sign of integration or replication.
A 6.9-kb DNA fragment including the minimal Bacillus pasteurii urease gene cluster was subcloned into a high-copy-number plasmid vector, pUC19, and the recombinant B. pasteurii urease was overexpressed in Escherichia coli. The recombinant urease was purified 25.9-fold by using combinations of anion-exchange and gel-filtration chromatography followed by Mono-Q chromatography on a FPLC. N-terminal peptide sequencing analyses revealed that two distinct smaller peptide bands resolved on a 10-18% gradient SDS-PAGE corresponded to UreA and UreB peptides, respectively. It was also shown that the ureB gene was translated from a GUG codon and the first methionine residue was post-translationally cleaved off. The native molecular weight of the recombinant urease was 176,000 and 2 nickel atoms were present per catalytic unit. pH stability studies of the purified enzyme showed that the recombinant Bacillus pasteurii urease is stable in alkaline pH range, which is similar to the enzyme of the evolutionarily related bacterium, Sporosarcina ureae.
International journal of advanced smart convergence
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v.7
no.1
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pp.48-63
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2018
The combination of Simian Virus40 (SV40)'s large T antigen with its replication origin is commonly used in molecular studies to enhance the expression of heterogeneous genes through multiplying the plasmid copy number. There are no reports related to the impact of the SV40 T antigen on plant, multiple fissional, cell-type. This study explores the response of two multiple-fission microalgal cells, Scenedesmus quadricauda and Chlorella vulgaris, to the expression of the T-antigen, with aim of applying SV40 T-antigen to increase the expression efficiency of foreign genes in the two species. Different levels of low-expression have been constructed to control the expression of SV40 T antigen using three heterogenous promoters (NOS, CaMV35S, and CMV). Chlorella cultures showed slowdown in the growth rate for samples harboring the T antigen under the control of CaMV35S and CMV promoters, unlike Scenedesmus cultures which showed no significant difference between samples and could have silenced the expression.
Kim, Su-Jung;Shin, Youn-Hee;Kim, Kyung-Hoon;Park, Eun-Hee;Sa, Jae-Hoon;Lim, Chang-Jin
BMB Reports
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v.36
no.3
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pp.326-331
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2003
The fission yeast cells that contained the cloned glutathione synthetase (GS) gene showed 1.4-fold higher glutathione (GSB) content and 1.9-fold higher GS activity than the cells without the cloned GS gene. Interestingly, $\gamma$-glutamylcysteine synthetase activity increased 2.1-fold in the S. pombe cells that contained the cloned GS gene. The S. pombe cells that harbored the multi copy-number plasmid pRGS49 (containing the cloned GS gene) showed a higher level of survival on solid media with cadmium chloride (1 mM) or mercuric chloride ($10\;{\mu}M$) than the cells that harbored the YEp357R vector. The 506 bp upstream sequence from the translational initiation point and N-terminal8 amino acid-coding region were fused into the promoteriess $\beta$-galactosidase gene of the shuttle vector YEp367R to generate the fusion plasmid pUGS39. Synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid pUGS39 was significantly enhanced by cadmium chloride and NO-generating S-nitroso-N-acetylpenicillamine (SNAP) and sodium nitroprusside (SN). It was also induced by L-buthionine-(S,R)-sulfoximine, a specific inhibitor of $\gamma$-glutamylcysteine synthetase (GCS). We also found that the expression of the S. pombe GS gene is regulated by the Atf1-Spc1-Wis1 signal pathway.
We isolated the ANRI fragment from Aspergillus nidulons that could autononlously replicate and enhance transformation efficiency about $10^4$ fold compared lo the integrative vector in Saccha,omgcer cerevisioe. In A. nidulans recombinant plasmid pLJ16-4.5 which carries the 4.5 kb EcoRI fragment of ANRI showed a 170-[old increase of transformation efficiency compared to the integrative vector pLJ16 and could be recovered from iransfonnants as an intact form. Estimated copy number of transforming plasmid pLJ16-4.5 was scored as 2 to 3 copies in transformed A. nidulans. Recoinbinant plasinid pILJ16-4.5 is inilotically unstable; being lost Irom 65% of aswual progeny of transformants on selective medium and 90% on complete medium. Southern analysis of transformant DNA showed that the pILJ16-4.5 is maintained in free form. The sequencing data showed that ANRl fragment was originated from mitochondiral DNA of A. nid~ilans and contained high AT content as much as 74.7%. One ARS consensus sequence (A/T)TTr4T(A/G)TTT(AiT). I I ARS-like sequence (agreement 10 of 11) and ABFl binding core consensus sequence (TCN7ACG). Also six gyrase binding core consensus sequence (YRTGNYNNY: y=C or T, R=A or G, N=A, G, C or T) of $\Phi$X174 and SV40 DNA and one b site (CACTTTACC) combining with gyrase in ColEl are shown. ANRl can be developed as a repl&ng plasinid for lransfoimation system in A. nirlulmis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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