To characterize the biochemical properties of the PP2A regulatory B subunit, PPP2R5D, we analyzed its phosphorylation sites, stoichiometry and effect on holoenzyme activity. PPP2R5D was phosphorylated on Ser-53, Ser-68, Ser-81, and Ser-566 by protein kinase A, and mutations at all four of these sites abolished any significant phosphorylation in vitro. In HEK293 cells, however, the Ser-566 was the major phosphorylation site after PKA activation by forskolin, with marginal phosphorylation on Ser-81. Inhibitory tyrosine phosphorylation on Tyr-307 of the PP2A catalytic C subunit was decreased after forskolin treatment. Kinetic analysis showed that overall PP2A activity was increased with phosphorylation by PPP2R5D phosphorylation. The apparent Km was reduced from $11.25\;{\mu}M$ to $1.175\;{\mu}M$ with PPP2R5D phosphorylation, resulting in an increase in catalytic activity. These data suggest that PKA-mediated activation of PP2A is enabled by PPP2R5D phosphorylation, which modulates the affinity of the PP2A holoenzyme to its physiological substrates.
Roundabout (Robo) is the transmembrane receptor for slit, the neuronal guidance molecule. In this study, the tyrosine phosphorylation of Robo was observed in Robo-transfected human embryonic kidney cells and developing rat brains, and found to be increased by the treatment with protein kinase A activator, forskolin. In contrast, protein kinase C activation by phorbol-12-myristate-13-acetate decreased the phosphorylation of Robo. Intracellular calcium was required for the tyrosine phosphorylation. Furthermore, the transfection of an Eph receptor tyrosine kinase dramatically enhanced the tyrosine phosphorylation. These findings indicate that the tyrosine phosphorylation of Robo is regulated by multiple mechanisms, and that Eph receptor kinases may play a role in the regulation of tyrosine phosphorylation of Robo in the rat brain.
The modification of proteins by reversible phosphorylation is a key mechanism in the regulation of various physiological functions. Abnormal protein kinase or phosphatase activity can cause disease by altering the phosphorylation of critical proteins in normal cellular and disease processes. Alzheimer' disease (AD), typically occurring in the elderly, is an irreversible, progressive brain disorder characterized by memory loss and cognitive decline. Accumulating evidence suggests that protein kinase and phosphatase activity are altered in the brain tissue of AD patients. Tau is a highly recognized phosphoprotein that undergoes hyperphosphorylation to form neurofibrillary tangles, a neuropathlogical hallmark with amyloid plaques in AD brains. This study is a brief overview of the altered protein phosphorylation pathways found in AD. Understanding the molecular mechanisms by which the activities of protein kinases and phosphatases are altered as well as the phosphorylation events in AD can potentially reveal novel insights into the role aberrant phosphorylation plays in the pathogenesis of AD, providing support for protein phosphorylation as a potential treatment strategy for AD.
Transforming growth $factor-{\beta}\;(TGF-{\beta})$ is a multifunctional polypeptide that exerts biological roles including cell proliferation, differentiation, extracellular matrix deposition and apoptosis in many different cell types. $TGF-{\beta}$, although known as a negative growth regulator, has not been tested in human embryo lung (HEll cells. This study attempts to understand the role of $TGF-{\beta}$ on growth control of HEL cells in relationship to tyrosine phosphorylation pattern of cellular proteins. In density-arrested HEL cells treated with $TGF-{\beta}$, analysis of Western immunoblot showed induction of tyrosine phosphorylation of two major cellular proteins (15 kDa and 45 kDa). In normal proliferating HEL cells with different concentrations of serum, further analysis indicated that the increase in tyrosine phosphorylation of a 45 kDa protein was regulated in serum concentration-dependent manner. However, in proliferating HEL cells treated with $TGF-{\beta}$, tyrosine phosphorylation of 45 kDa was down-regulated. Calcium involvement in the regulation of tyrosine phosphorylation of 45 kDa and 15 kDa proteins was also examined. Tyrosine phosphorylation of 15 kDa protein but not of 45 kDa protein was regulated by exogenous calcium. The level of tyrosine phosphorylation of 15 kDa protein was low at reduced caclium concentration and high at elevated caclium concentration. $TGF-{\beta}$ reversed the pattern of tyrosine phosphorylation of 15 kDa protein. These results suggest that tyrosine phosphorylation of 45 and 15 kDa proteins in HEL cells may be controlled depending on the physiological status of the cells, i.e., low in arrested cells and high in proliferating cells. And the tyrosine phosphorylation of the two proteins appears to be down- or up-regulated by $TGF-{\beta}$.
Egg white protein (EWP) was glycated with maltopentaose (MP) through the Maillard reaction and subsequently phosphorylated by $85^{\circ}C$ dry-heating at pH 4.0 for 1 d in the presence of pyrophosphate. The functional properties of glycated, phosphorylated EWP were compared with those of native EWP and with EWP which was phosphorylated by dry-heating in the presence of pyrophosphate under the same conditions. The phosphorus content of EWP was increased to ~0.60% by phosphorylation, and to ~0.74% by glycation with MP and subsequent phosphorylation. The electrophoretic mobility of EWP increased through phosphorylation. The stability of EWP against heat-induced insolubility at pH 7.0 was considerably improved by phosphorylation alone and further by phosphorylation after glycation. The anti-ovalbumin antibody response was reduced significantly by glycation and phosphorylation, and further reduced by phosphorylation after glycation. The anti-ovomucoid antibody response was reduced significantly by glycation, phosphorylation and phosphorylation after glycation. The calcium phosphate-solubilizing ability of EWP was enhanced by both phosphorylation methods.
Kwon, Hye Kyeong;Choi, Hyunwoo;Park, Sung-Gyoo;Park, Woo Jin;Kim, Do Han;Park, Zee-Yong
Molecules and Cells
/
v.44
no.7
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pp.500-516
/
2021
Cardiac hypertrophic signaling cascades resulting in heart failure diseases are mediated by protein phosphorylation. Recent developments in mass spectrometry-based phosphoproteomics have led to the identification of thousands of differentially phosphorylated proteins and their phosphorylation sites. However, functional studies of these differentially phosphorylated proteins have not been conducted in a large-scale or high-throughput manner due to a lack of methods capable of revealing the functional relevance of each phosphorylation site. In this study, an integrated approach combining quantitative phosphoproteomics and cell-based functional screening using phosphorylation competition peptides was developed. A pathological cardiac hypertrophy model, junctate-1 transgenic mice and control mice, were analyzed using label-free quantitative phosphoproteomics to identify differentially phosphorylated proteins and sites. A cell-based functional assay system measuring hypertrophic cell growth of neonatal rat ventricle cardiomyocytes (NRVMs) following phenylephrine treatment was applied, and changes in phosphorylation of individual differentially phosphorylated sites were induced by incorporation of phosphorylation competition peptides conjugated with cell-penetrating peptides. Cell-based functional screening against 18 selected phosphorylation sites identified three phosphorylation sites (Ser-98, Ser-179 of Ldb3, and Ser-1146 of palladin) displaying near-complete inhibition of cardiac hypertrophic growth of NRVMs. Changes in phosphorylation levels of Ser-98 and Ser-179 in Ldb3 were further confirmed in NRVMs and other pathological/physiological hypertrophy models, including transverse aortic constriction and swimming models, using site-specific phospho-antibodies. Our integrated approach can be used to identify functionally important phosphorylation sites among differentially phosphorylated sites, and unlike conventional approaches, it is easily applicable for large-scale and/or high-throughput analyses.
Endothelial nitric oxide synthase (eNOS) plays a critical role in vascular biology and pathophysiology. Its activity is regulated by multiple mechanisms such as calcium/calmodulin, protein-protein interactions, sub-cellular locations and phosphorylation at various sites. Phosphorylation of eNOS-Ser1177 (based on mouse sequence) has been identified as an important mechanism of eNOS activation. However, signaling pathway leading to it phosphorylation remains controversial. The regulation of eNOS-Ser1177 phosphorylation by Src and protein kinase A (PKA) was investigated in the present study using cultured mouse aorta endothelial cells. Expression of a constitutively active Src mutant in the cells enhanced phosphorylation of eNOS and protein kinase B (Akt). The Src-stimulated phosphorylation was not attenuated by the expression of a dominant negative PKA regulatory subunit. Neither activation nor inhibition of PKA activity had any significant effect on tyrosine phosphorylation of activation or inactivation site in Src. Based on the results of this study, it is suggested that Src/Akt pathway and PKA signaling may regulate eNOS phosphorylation independently. The existence of multiple mechanisms for eNOS phosphorylation may guarantee endothelial nitric oxide production in various cellular contexts which is essential for maintenance of vascular health.
Nephrin, a structural molecule, is also a signaling molecule after phosphorylation. Inhibition of nephrin phosphorylation is correlated with podocyte injury. The PINCH-1-ILK-${\alpha}$-parvin (PIP) complex plays a crucial role in cell adhesion and cytoskeleton formation. We hypothesized that nephrin phosphorylation influenced cytoskeleton and cell adhesion in podocytes by regulating the PIP complex. The nephrin phosphorylation, PIP complex formation, and F-actin in Wistar rats intraperitoneally injected with puromycin aminonucleoside were gradually decreased but increased with time, coinciding with the recovery from glomerular/podocyte injury and proteinuria. In cultured podocytes, PIP complex knockdown resulted in cytoskeleton reorganization and decreased cell adhesion and spreading. Nephrin and its phosphorylation were unaffected after PIP complex knockdown. Furthermore, inhibition of nephrin phosphorylation suppressed PIP complex expression, disorganized podocyte cytoskeleton, and decreased cell adhesion and spreading. These findings indicate that alterations in nephrin phosphorylation disorganize podocyte cytoskeleton and decrease cell adhesion through a PIP complex-dependent mechanism.
We have previously reported that phosphorylation of eukaryotic elongation factor 2 (eEF2) is related to the differentiation of chick embryonic muscle cells in culture. In the present study, we found that eEF2 phosphorylation declined shortly after induction of differentiation of L6 myoblasts, when the cells prepare for terminal differentiation by withdrawing from the cell cycle. This decrease in phosphorylation was prevented by inhibitors of phosphoinositide 3-kinase (PI3-kinase) that strongly inhibit myoblast differentiation. We hypothesized that PI3-kinase plays an important role in myoblast differentiation by regulating eEF2 phosphorylation in the early stages of differentiation. To test this hypothesis, myoblasts were synchronized at in $G_2/M$ and cultured in fresh differentiation medium (DM) or growth medium (GM). In DM the released cells accumulated in $G_0$/$G_1$ while in GM they progressed to S phase. In addition, cyclin D1 was more rapidly degraded in DM than in GM, and eEF2 phosphorylation decreased more. Inhibitors of PI3-kinase increased eEF2 phosphorylation, but PI3-kinase became more activated when eEF2 phosphorylation declined. These results suggest that the regulation of L6 myoblast differentiation by PI3-kinase is related to eEF2 phosphorylation.
Tonic smooth muscle exhibit the latch phenomenon: high force at low myosin regulatory light chains (MRLC) phosphorylation, shortening velocity (Vo), and energy consumption. However, the kinetics of MRLC phosphorylation and cellular activation in phasic smooth muscle are unknown. The present study was to determine whether $Ca^{2+}$-stimulated MRLC phosphorylation could suffice to explain the agonist- or high $K^+$-induced contraction in a fast, phasic smooth muscle. We measured myoplasmic [$Ca^{2+}$], MRLC phosphorylation, half-time after step-shortening (a measure of Vo) and contractile stress in rabbit urinary bladder strips. High $K^+$-induced contractions were phasic at both $22^{\circ}C$ and $37^{\circ}C$: myoplasmic [$Ca^{2+}$], MRLC phosphorylation, 1/half-time, and contractile stress increased transiently and then all decreased to intermediate values. Carbachol (CCh)-induced contractions exhibited latch at $37^{\circ}C$: stress was maintained at high levels despite decreasing myoplasmic [$Ca^{2+}$], MRLC phosphorylation, and 1/half-time. At $22^{\circ}C$ CCh induced sustained elevations in all parameters. 1/half-time depended on both myoplasmic [$Ca^{2+}$] and MRLC phosphorylation. The steady-state dependence of stress on MRLC phosphorylation was very steep at $37^{\circ}C$ in the CCh- or $K^+$-depolarized tissue and reduced temperature flattend the dependence of stress on MRLC phosphorylation compared to $37^{\circ}C$. These data suggest that phasic smooth muscle also exhibits latch behavior and latch is less prominent at lower temperature.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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