The present investigation was conducted to determine the chemical oxygen demand (COD) removal efficiency by Pseudomonas aeruginosa EMS1. The COD removal efficiency in the medium containing 1% metal working fluid (MWF) was 12% after cultivation of 4 days. The composition of optimum medium for the COD removal efficiency of 1% MWF by P. aeruginosa EMS1 were NH$_4$Cl 0.3%,$ K_2HPO_4\; 0.05%,\; KH_2PO_4\; 0.04%,\; MgSO_4.7H_2O\; 0.05%,\; CaCl_2.2H_2O 0.03%$ and $FeSO_4.7H_2O$ 0.04% at initial pH 7.0 and $30^{\circ}C$. Under this condition, the highest the COD removal efficiency was observed after 4 days.
In order to establish the biological treatment system which can be used for treatment of waste aster from acetaldehyde plant, it was investigated optimum nutrient requirements and growth conditions by mixed culture of Micrococcus roseus AW-6, Micrococcus luteus AW-22, Microbacterium lacticum AW-38 and Microbacterium laevaniformans AW-41 as well as the effect of coagulants and neutralization reagents. Also, it was carried out the continuous culture as well as batch culture to treat the waste water by mixed culture of these strains. The COD removal rate was reached to maximum state for 96hrs culture at pH7.0 and $30^{\circ}C$ NaOH as the neutralization reagents was the most effective, but the coagulants had no effect on the COD remonal rate and the optimum dilution times for treatment were 10 fold. The COD removal rate was also increased by supplimenting 200 ppm $NH_{2}NO_{3}$, 50 ppm $KH_{2}PO_{4}$, 15 ppm $CaCl_{2}$ and 1 ppm $MgSO_{4} \cdot 7H_{2}O $ as additional nutrients. The removal rate coefficient $K_{1}$ on the batch culture was $4.5\times 10^{-6}$, and the detention time for BOD removal rate of 85% was approximately 45hrs. The COD of waste water was reduced to 15% of its initial value by the continuous culture. The COD and BOD of the effluents were to be about 60 ppm and 40 ppm, respectively, and final pH was 7.0.
Among the 34 strains of Nicotinophiles selected in the previous experiments, strain NCT27 identified with Pseudomonas putida and strain NCT30 identified with Arthrobacter oxydans biotype nan thus were Investigated for optimization of growth conditions for nicotine degradation and other cultural characteristics. The compositions of optimized medium were to be following: $KH_2PO_4$ 2.Ogr, KCI 5.Ogr, $MgSO_4$.$7H_2O$ 20mg, $MnSO_4$.$6H_2O$ 0.2mg, $FeSO_4$.$7H_2O$ 1.Omg, Col$^{++}$ (Cobalt Acetate),2.O$\gamma$, N1$^{++}$ (NiSO4,6H2O) 0.5$\gamma$, and yeast extract 80mg per liter. The optimum initial concentrations of nicotine for growth were 0.4% for Pseudomonas and 0.1% for Arthrobacter, respectively. The optimum temperature and pH were 3$0^{\circ}C$ and 7.0 for both of strains. The pH of culture medium of Pseudomonas was changed from acidic condition to basic one in going from the logarithmic growth phase to the stationary growth phase. In contrast with Pseudomonas, it remained constant in case of Arthrobacter. The growth of Arthrobacter was completely inhibited in the nicotine concentration of 0.7&. However, Pseudomonas could grow even in the nicotine concentration of 1.0%. Moreover, it could grow successfully in the tobacco extract media as well as media containing carbon and nitrogen sources other than nicotine. The maximum rates of nicotine degradation were to be 1.22 gr./hr./liter for Pseudomonas and 0.186 gr./hr./liter for Arthrobacter, respectively.
In this study, the characterization of purified erythritol 4-phosphate dehydrogenase, key enzyme of erythritol biosynthesis, produced by Penicillium sp. KJ81 was investigated. Optimum production conditions of erythritol 4-phosphate dehydrogenase was 1 vvm areration, 200 rpm agitation, at $37^{\circ}C$ for 8 days in the medium containing 30% sucrose, 0.5% yeast extract, 0.5% $(NH_4)_2SO_4$, 0.1% $KH_2PO_4$, and 0.05%$MgCl_2$. Erythritol 4-phosphate dehydrogenase was purified through ultrafiltration and preparative gel electrophoresis from cell extract of Penicillium sp. KJ81. This enzyme was especially active on erythrose 4-phosphate with 1.07 mM of Km value. It gave a single band on native polyacrylamide gel electrophoresis and an isoelectric point of 4.6. The enzyme had an optimal activity at pH 7.0 and $30^{\circ}C$. It was stable between pH 4.0 and 9.0, and also below $30^{\circ}C$. The enzyme activity was completely inhibited by 1mM $Cu^{2+}$ and 1 mM $Zn^{2+}$, but was not significantly affected by other cations tested. This enzyme was inactivated by treatment of tyrosine specific reagent, iodine and tryptophan specific reagent, N-bromosuccinimide. The substrate of the enzyme, erythrose 4-phosphate showed protective effect on the inactivation of the enzyme by both reagents. These results suggest that tryptophan and tyrosine residues are probably located at or near active site of the enzyme.
Optimization of submerged culture conditions for the production of exo-biopolymer from Paecilomyces japonica ws studied. Maltose, yeast extract, and potassium phosphate were the most suitable sources of carbon, nitrogen, and inorganic salt, respectively, for both production of the exo-biopolymer and mycelial growth. The optimal culture conditions in a flask culture were pH 5.0, $25^{\circ}C$, and 150 rpm in a medium containing (as in g/l) 30 maltose, 6 yeast extruct, 2 polypeptone, $0.5{\;}K_3HPO_4,{\;}0.2{\;}KH_2PO_4,{\;}0.2{\;}MnSO_4{\cdot}5H_2O,{\;}0.2{\;}MgSO_4{\cdot}7H_2O$. Exo-biopolymer production and mycelial growth in the above suggested medium were significantly increased in a 2.5-1 jar fermentor, where the maximum biopolymer concentration was 8 g/l. The morphological changes of the mycelium in the submerged culture were observed within pH ranges from 4.0 to 9.0; i.e., growth of the filamentous form was optimal at culture pHs of 5.0 and 6.0, whereas pellet was formed at other pHs.
As a basic study to elucidate nutritional physiology and composition of synthetic medium of red rotting bacteria, Erwinia carotovora, of ginseng, the effects of hydrogen ion concentration, various kinds of carbon sources, nitrogen source, micrometallic salts and it's concentration on the gorwth of the bacteria were investigated and the results were as follows. Optimal pH in the basal medium for the growth of the bacteria was 6.5. After incubation the pH in culture media was neutralized. Among the various kinds of carbon sources, sucrose, glucose mannitol, but organic acids were not utilized effectively as nutrients. After incubation the pH turned acidic. Alanine as organic nitrogen sources nad ammonium sulfate as inorganic nitrogen promoted the growth, but L-valine and sodium nitrite were the least effective. Ferric chloride 1.0mg/dl and ferrous sulfate 100mg/dl were the most effective as micrometallic sources. Control and boric acid were the least effective. New synthetic medium based on the above results was follows ; Alanine 1.0g, $KH_2PO_4$ 1.0g, sucrose 30.0g, $MgSo_4$$7H_2$O 0.5g, $FeCl_36H_2$O 1.0mg thiamine 200.gamma.g, and distilled water 1000ml, pH6.5.
Selection of optima] nutrient sources and cultural methods for liquid spawn culture of Flammulina velutipes were carried out. The optimal temperature and pH for mycelial growth of F. velutipes were $20^{\circ}C$ and 6.0 to 7.5. respectively. In the 250ml ${Delta}$-flask culture. the amount of inoculum and culture period for the optimal mycelial growth of F. velutipes were 3 mycelial disks(diametcr 6mm) and 6 days, respectively. For the mass production of submerged culture. the optimal inoculum amount and aeration rate of F. velutipes were 5%(inoculum vol/medium vol.) and l.0vvm(vol of air/vol. of medium/min), respectively.
A thermotolerant bacterium, Streptomyces thermocyaneoviolaceus which produced xylan-degrading enzymes, utilized excellently xylan of wheat bran by producing the enzymes in comparison with that of birchwood or oat spelts. Optimal enzyme production was achieved in WB medium containing 0.8% wheat bran, 0.06% yeast extract, 0.06% bactopeptone, 0.05% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$, 0.05% $FeSO_4{\cdot}7H_2O$, 0.05% $KH_2PO_4$ and, 0.2% $K_2HPO_4$(pH 7.0) at $50^{\circ}C$ for 24 hrs. The optimal pH and temperature for the hydrolysis of xylan were pH 5.5 and $65^{\circ}C$, respectively. The enzyme activity was retained more than 80% at the range from pH 4.5 to pH 9.5 at $4^{\circ}C$ for 12 hrs and 94% on the heat-treatment at $65^{\circ}C$ for 1 hr. Xylobiose, xylotriose, xylose, and other xylooligosaccharides were produced as end products from hydrolysis of birchwood xylan by the xylanase of S. thermocyaneoviolceus.
Seo, Young-Eun;Jung, Hyuck-Jun;Hong, Soon-Myung;Yu, Tae-Shick
Korean Journal of Microbiology
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v.43
no.1
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pp.59-65
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2007
The optimal conditions for Monascus pigments production of Monascus sp. KM 1001, pigment overproducing mutant, in submerged culture was investigated. The optimal medium for the production of pigment from KM 1001 mutant is determined to be composed of 4% rice powder, 0.15% Bacto-peptone, 0.1% glycine, 0.01% $FeSO_{4}{\cdot}7H_{2}O,\;0.1%\;MgSO_{4}{\cdot}7H_{2}O,\;0.25%\;KH_{2}PO_{4},\;pH4.5$. On optimal conditions,10.0 g/L of the cell mass was obtained at $30^{\circ}C$ for 5 days. Yellow, orange and red pigment of Monascus sp. KM 1001 were produced 3.25 units, 1.59 units and 0.88 units in extracellular part, and 84.96 units, 78.84 units and 91.80 units in intracellular part, respectively.
Kim, Soo-Young;Lee, Si-Kyung;Park, Myeong-Soo;Na, Hun-Taek
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.9
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pp.1605-1612
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2016
Quinolone-resistant Salmonella strains were isolated from patient samples, and several quinolone-sensitive strains were used to analyze mutations in the quinolone resistance-determining region (QRDR) of gyrA, gyrB, parC, and parE and to screen for plasmid-mediated quinolone resistance. Among the 21 strains that showed resistance to nalidixic acid and ciprofloxacin (MIC 0.125-2.0 μg/ml), 17 strains had a mutation in QRDR codon 87 of gyrA, and 3 strains had a single mutation (Ser83 → Phe). Another cause of resistance, efflux pump regulation, was studied by examining the expression of acrB, ramA, marA, and soxS. Five strains, including Sal-KH1 and Sal-KH2, showed no increase in relative expression in an analysis using the qRT-PCR method (p < 0.05). In order to determine the genes involved in the resistance, the Sal-9 isolate that showed decreased susceptibility and did not contain a mutation in the gyrA QRDR was used to make the STM (MIC 8 μg/ml) and STH (MIC 16 μg/ml) ciprofloxacin-resistant mutants. The gyrA QRDR Asp87 → Gly mutation was identified in both the STM and STH mutants by mutation analysis. qRT-PCR analysis of the efflux transporter acrB of the AcrAB-TolC efflux system showed increased expression levels in both the STM (1.79-fold) and STH (2.0-fold) mutants. In addition, the expression of the transcriptional regulator marA was increased in both the STM (6.35-fold) and STH (21.73-fold) mutants. Moreover, the expression of soxS was increased in the STM (3.41-fold) and STH (10.05-fold) mutants (p < 0.05). Therefore, these results indicate that AcrAB-TolC efflux pump activity and the target site mutation in gyrA are involved in quinolone resistance.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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