Apigenin, a natural flavonoid found in a variety of vegetables and fruits, has been shown to possess many biological functions. The present study was undertaken to investigate the influence of apigenin on vascular smooth muscle contractility and to determine the mechanism involved. Denuded aortic rings from male rats were used and isometric contractions were recorded and combined with molecular experiments. Apigenin significantly relaxed fluoride-, thromboxane $A_2$ mimetic- or phorbol ester-induced vascular contraction, which suggests that apigenin could be an anti-hypertensive that reduces agonist-induced vascular contraction regardless of endothelial nitric oxide synthesis. Furthermore, apigenin significantly inhibited fluoride-induced increases in pMYPT1 levels and phorbol ester-induced increases in pERK1/2 levels, which suggests the mechanism involving the inhibition of Rho-kinase and MEK activity and the subsequent phosphorylation of MYPT1 and ERK1/2. This study provides evidence regarding the mechanism underlying the relaxation effect of apigenin on agonist-induced vascular contraction regardless of endothelial function.
Fisetin, a natural flavonoid found in a variety of vegetables and fruits, has been shown to possess many biological functions. The present study was undertaken to investigate the influence of fisetin on vascular smooth muscle contractility and to determine the mechanism involved. Denuded aortic rings from male rats were used and isometric contractions were recorded and combined with molecular experiments. Fisetin significantly relaxed fluoride-, thromboxane $A_2$- or phorbol ester-induced vascular contraction suggesting as a possible anti-hypertensive on the agonist-induced vascular contraction regardless of endothelial nitric oxide synthesis. Furthermore, fisetin significantly inhibited fluoride-induced increases in pMYPT1 levels and phorbol ester-induced increases in pERK1/2 levels suggesting the mechanism involving the inhibition of Rho-kinase activity and the subsequent phosphorylation of MYPT1 and MEK activity and the subsequent phosphorylation of ERK1/2. This study provides evidence regarding the mechanism underlying the relaxation effect of fisetin on agonist-induced vascular contraction regardless of endothelial function.
Shikonin, a natural flavonoid found in the roots of Lithospermum erythrorhizon, has been shown to possess many biological functions. The present study was undertaken to investigate the influence of shikonin on vascular smooth muscle contractility and to determine the mechanism involved. Denuded aortic rings from male rats were used and isometric contractions were recorded and combined with molecular experiments. Shikonin significantly relaxed fluoride-, thromboxane $A_2$- or phorbol ester-induced vascular contraction suggesting as a possible anti-hypertensive on the agonist-induced vascular contraction regardless of endothelial nitric oxide synthesis. Furthermore, shikonin significantly inhibited fluoride-induced increases in pMYPT1 levels and phorbol ester-induced increases in pERK1/2 levels suggesting the mechanism involving the inhibition of Rho-kinase activity and the subsequent phosphorylation of MYPT1 and the inhibition of MEK activity and the subsequent phosphorylation of ERK1/2. This study provides evidence regarding the mechanism underlying the relaxation effect of shikonin on agonist-induced vascular contraction regardless of endothelial function.
Streptozotocin (STZ)-induced murine models of type 1 diabetes have been used to examine ER stress during pancreatic ${\beta}$-cell apoptosis, as this ER stress plays important roles in the pathogenesis and development of the disease. However, the mechanisms linking type 1 diabetes to the ER stress-modulating anti-diabetic signaling pathway remain to be addressed, though it was recently established that ERK5 (Extracellular-signal-regulated kinase 5) contributes to the pathogeneses of diabetic complications. This study was undertaken to explore the mechanism whereby ERK5 inhibition instigates pancreatic ${\beta}$-cell apoptosis via an ER stress-dependent signaling pathway. STZ-induced diabetic WT and CHOP deficient mice were i.p. injected every 2 days for 6 days under BIX02189 (a specific ERK5 inhibitor) treatment in order to evaluate the role of ERK5. Hyperglycemia was exacerbated by co-treating C57BL/6J mice with STZ and BIX02189 as compared with mice administered with STZ alone. In addition, immunoblotting data revealed that ERK5 inhibition activated the unfolded protein response pathway accompanying apoptotic events, such as, PARP-1 and caspase-3 cleavage. Interestingly, ERK5 inhibition-induced exacerbation of pancreatic ${\beta}$-cell apoptosis was inhibited in CHOP deficient mice. Moreover, transduction of adenovirus encoding an active mutant form of $MEK5{\alpha}$, an upstream kinase of ERK5, inhibited STZ-induced unfolded protein responses and ${\beta}$-cell apoptosis. These results suggest that ERK5 protects against STZ-induced pancreatic ${\beta}$-cell apoptosis and hyperglycemia by interrupting the ER stress-mediated apoptotic pathway.
Saba, Evelyn;Oh, Mi Ju;Lee, Yuan Yee;Kwak, Dongmi;Kim, Suk;Rhee, Man Hee
대한수의학회지
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제58권1호
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pp.1-7
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2018
Genus Artemisia occurs as a hardy plant and has a wide range of culinary and medicinal features. In this study, we aimed to describe the melanin inhibitory activity of one Artemisia species, i.e., Artemisia capillaris Thunb. Ethanol extracts of fermented Artemisia capillaris (Art.EtOH.FT) and non-fermented Artemisia capillaris (Art.EtOH.CT) were tested for their ability to inhibit tyrosinase activity and melanin pigmentation. Both extracts showed dose-dependent inhibition against ${\alpha}$-melanocyte stimulating hormone-stimulated melanin formation and tyrosinase activity, without cytotoxicity. At $100{\mu}g/mL$, both extracts showed greater inhibition than kojic acid, the positive control. Protein expressions of microphthalmia-associated transcription factor (MITF), tyrosinase (TYR), tyrosinase-related protein 1 (TRP-1), and tyrosinase-related protein 2 (TRP-2) at the transcriptional level were determined by using real-time and semi-quantitative polymerase chain reaction. To complete the mechanistic study, presences of upstream elements of MITF, the phosphorylated-extracellular signal-regulated kinase (p-ERK), and phosphorylated-mitogen-activated protein kinase kinase (p-MEK) were confirmed by using western blot analysis. Expressions of p-TYR, p-TRP-1 and p-TRP-2, downstream factors for p-ERK and p-MITF, were translationally inhibited by both extracts. Art.EtOH.FT induced more potent effects than Art.EtOH.CT, especially signal transduction effects. In summary, Artemisia capillaris extracts appear to act as potent hypopigmentation agents.
The present study was undertaken to investigate the influence of diosgenin on vascular smooth muscle contractility and to determine the mechanism involved. We hypothesized that diosgenin, the primary ingredient of Dioscorea villosa, plays a role in vascular relaxation through inhibition of Rho-kinase in rat aortae. Denuded arterial rings from male Sprague-Dawley rats were used and isometric tensions were recorded using a computerized data acquisition system. Interestingly, diosgenin inhibited fluoride-induced contraction but didn't inhibit phorbol ester-induced contraction suggesting that additional pathways different from endothelial nitric oxide synthesis such as inhibition of Rho-kinase might be involved in the vasorelaxation. Furthermore, diosgenin didn't inhibit thromboxane $A_2$-induced increases in pERK1/2 levels suggesting the mechanism excluding inhibition of thromboxane $A_2$-induced increases in ERK1/2 phosphorylation. This study provides evidence that diosgenin induces vascular relaxation through inhibition of Rho-kinase in rat aortae.
Background: Protease-activated receptor 2 (PAR2) belongs to a family of G protein coupled receptors activated by proteolytic cleavage. Trypsin-like serine proteases interact with PAR2 expressed by a variety of tissues and immune cells. The aim of our study was to investigate whether PAR2 stimulation can lead to the activation of human mac rophages. Methods: PAR2-mediated proliferation of human macrophage cell line THP-1 was measured with MTT assay. We also examined the extracellular regulated kinase (ERK) phosphorylation and cytokine production induced by trypsin and PAR2-agonist using western blot and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), respectively. Results: Treatment of trypsin or PAR2-activating peptide increased cell proliferation in a dose-dependent manner, and induced the activation of ERK1/2 in THP-1 cells. In addition, trypsin-induced cell proliferation was inhibited by pretreatment of an ERK inhibitor (pD98059) or trypsin inhibitor (SBTI). Moreover, PAR2 activation by trypsin increased the secretion of TNF-${\alpha}$ in THP-1 cells. Conclusion: There results suggest that P AR2 activation by trypsin-like serine proteases can induce cell proliferation through the activation of ERK in human macrophage and that PAR2 may playa crucial role in the cell proliferation and cytokine secretion induced by trypsin-like serine proteases.
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway controls intestinal epithelial barrier permeability by regulating tight junctions (TJs) and epithelial cells damage. Heme oxygenase-1 (HO-1) and carbon monoxide (CO) protect the intestinal epithelial barrier function, but the molecular mechanism is not yet clarified. MAPK activation and barrier permeability were studied using monolayers of Caco-2 cells treated with tissue necrosis factor α (TNF-α) transfected with FUGW-HO-1 or pLKO.1-sh-HO-1 plasmid. Intestinal mucosal barrier permeability and MAPK activation were also investigated using carbon tetrachloride (CCl4) administration with CoPP (a HO-1 inducer), ZnPP (a HO-1 inhibitor), CO releasing molecule 2 (CORM-2), or inactived-CORM-2-treated wild-type mice and mice with HO-1 deficiency in intestinal epithelial cells. TNF-α increased epithelial TJ disruption and cleaved caspase-3 expression, induced ERK, p38, and JNK phosphorylation. In addition, HO-1 blocked TNF-α-induced increase in epithelial TJs disruption, cleaved caspase-3 expression, as well as ERK, p38, and JNK phosphorylation in an HO-1-dependent manner. CoPP and CORM-2 directly ameliorated intestinal mucosal injury, attenuated TJ disruption and cleaved caspase-3 expression, and inhibited epithelial ERK, p38, and JNK phosphorylation after chronic CCl4 injection. Conversely, ZnPP completely reversed these effects. Furthermore, mice with intestinal epithelial HO-1 deficient exhibited a robust increase in mucosal TJs disruption, cleaved caspase-3 expression, and MAPKs activation as compared to the control group mice. These data demonstrated that HO-1-dependent MAPK signaling inhibition preserves the intestinal mucosal barrier integrity by abrogating TJ dysregulation and epithelial cell damage. The differential targeting of gut HO-1-MAPK axis leads to improved intestinal disease therapy.
Bone morphogenetic protein (BMP) 2 is a potent osteogenic factor. Although both Smad1/5 and mitogenactivated protein kinases (MAPKs) are activated by BMP2, the hierarchical relationship between them is unclear. In this study, we examined if BMP2-stimulated MAPK activation is regulated by Smad1/5 or vice versa. When C2C12 cells were treated with BMP2, the activation of extracellular signal-regulated kinase (ERK), p38 MAPK and c-Jun-N-terminal kinase was evident within 5 min. The knockdown of both Smad1 and Smad5 by small interfering RNA did not affect the activation of these MAPKs. In addition, neither the overexpression of Smad1 nor Smad5 induced ERK activation. When ERK activation was induced by constitutively active MEK1 expression, the protein level and activation of Smad1 increased. Furthermore, the inhibition of constitutively active BMP receptor type IB-induced ERK activation significantly suppressed Smad1 activation. These results indicate that Smad1/5 activation is not necessary for BMP2-induced MAPK activation and also that ERK positively regulates Smad1 activation.
Zhang, Lijun;Park, Jeoung Yun;Zhao, Dong;Kwon, Hak Cheol;Yang, Hyun Ok
Biomolecules & Therapeutics
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제29권6호
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pp.615-629
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2021
An active compound, triterpene saponin, astersaponin I (AKNS-2) was isolated from Aster koraiensis Nakai (AKNS) and the autophagy activation and neuroprotective effect was investigated on in vitro and in vivo Parkinson's disease (PD) models. The autophagy-regulating effect of AKNS-2 was monitored by analyzing the expression of autophagy-related protein markers in SH-SY5Y cells using Western blot and fluorescent protein quenching assays. The neuroprotection of AKNS-2 was tested by using a 1-methyl-4-phenyl-2,3-dihydropyridium ion (MPP+)-induced in vitro PD model in SH-SY5Y cells and an MPTP-induced in vivo PD model in mice. The compound-treated SH-SY5Y cells not only showed enhanced microtubule-associated protein 1A/1B-light chain 3-II (LC3-II) and decreased sequestosome 1 (p62) expression but also showed increased phosphorylated extracellular signal-regulated kinases (p-Erk), phosphorylated AMP-activated protein kinase (p-AMPK) and phosphorylated unc-51-like kinase (p-ULK) and decreased phosphorylated mammalian target of rapamycin (p-mTOR) expression. AKNS-2-activated autophagy could be inhibited by the Erk inhibitor U0126 and by AMPK siRNA. In the MPP+-induced in vitro PD model, AKNS-2 reversed the reduced cell viability and tyrosine hydroxylase (TH) levels and reduced the induced α-synuclein level. In an MPTP-induced in vivo PD model, AKNS-2 improved mice behavioral performance, and it restored dopamine synthesis and TH and α-synuclein expression in mouse brain tissues. Consistently, AKNS-2 also modulated the expressions of autophagy related markers in mouse brain tissue. Thus, AKNS-2 upregulates autophagy by activating the Erk/mTOR and AMPK/mTOR pathways. AKNS-2 exerts its neuroprotective effect through autophagy activation and may serve as a potential candidate for PD therapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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