Analytical method of benzophenone (BP) in sediment and soil was developed by gas chromatography/mass selective detector/selected ion monitoring (GC/MSD/SIM). The ultrasonic extraction of US EPA (method 3550B) method and liquid-liquid extraction for sediment and soil samples were used for the analysis of BP from sediment and soil. BP was extracted with n-hexane. Organic layer was washed with 5% sodium chloride solution. 1∼2 l of the concentrated solution of organic layer was applied to GC/MSD. The retention time of BP peak was 11.10 min. Recovery (%) of BP by ultrasonication from sediment and soil samples was 96.0∼100.6% and 40.0∼83.0%, respectively. Recovery of BP by liquid-liquid extraction was 51∼59% in soil samples. The detection limit of BP in sediment and soil samples were determined to 0.1 ng/g.
We demonstrated the combined applications of online protein digestion using trypsin immobilized enzyme reactor (IMER) and dual tandem mass spectrometry with collisionally activated dissociation (CAD) and electron transfer dissociation (ETD) for tryptic peptides eluted through the trypsin-IMER. For the trypsin-IMER, the organic and inorganic hybrid monolithic material was used. By employing the trypsin-IMER, the long digestion time could be saved with little or no sacrifice of the digestion efficiency, which was demonstrated for standard protein samples. For three model proteins (cytochrome c, carbonic anhydrase, and bovine serum albumin), the tryptic peptides digested by the IMER were analyzed using LC-MS/MS with the dual application of CAD and ETD. As previously shown by others, the dual application of CAD and ETD increased the sequence coverage in comparison with CAD application only. In particular, ETD was very useful for the analysis of highly-protontated peptide cations, e.g., ${\geq}3+$. The combination approach provided the advantages of both trypsin-IMER and CAD/ETD dual tandem mass spectrometry applications, which are rapid digestion (i.e., 10 min), good digestion efficiency, online coupling of trypsin-IMER and liquid chromatography, and high sequence coverage.
Headspace solid phase micro-extraction gas chromatography/flame ionization detection (HS-SPME-GC/FID) method was compared with headspace gas chromatography/mass selective detection (HS-GC/MS). Organic solvent-spiked urine as well as urine samples from workspace was analyzed under optimal condition of each method. Detection limit of each compound by HS-SPME-GC/FID was $3.4-9.5{\mu}g/L$, which enabled trace analysis of organic solvents in urine. Linear range of each organic solvent was $10-400{\mu}g/L$, with fair correlation coefficient between 0.992 and 0.999. The detection sensitivity was 4 times better than HS-GC/MS in selected ion monitoring (SIM) mode. Accuracy and precision was confirmed using commercial reference material, with accuracy around 90% and precision less than 4.6% of coefficient of variance. Among 48 urine samples from workplace, toluene was detected from 45 samples in the range of $20-324{\mu}g/L$, but no other solvents were found. As a method for trace analysis, SPME HS GC/FID showed high sensitivity for biological monitoring of organic solvent in urine.
Organic acid (OA) profiling analysis was performed in culture media from Lactobacillus pentosus K34 (L. pentosus K34) and Pediococcus lolli PL24 (P. lolli PL24) by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) following methoxime/tert-butyldimethylsilyl derivatives. 12 OAs were positively identified in culture media. Most of OA levels from L. pentosus K34 of hetero lactic fermentation were found to be higher when compared with those from P. lolli PL24 of homo lactic fermentation, which may explain different OA metabolism in each strain. In addition, the distorted dodecagonal star patterns were readily distinguishable, and the characteristics of each strain were well represented. The present study demonstrates that the OA metabolic profiling method by GC-MS combined with star pattern recognition is useful for the monitoring study of characteristic OA metabolism in various microorganisms.
Analysis of additives in cured rubber is often a difficult task for analytical chemists because of a wide variety of complex components. Conventional analyses of additives and rubbers have been done in multistep, off-line processes with large sample size and extensive sample preparations. The coumarone-indene resin, resorcinol-formaldehyde resin, and prevulcanization inhibitor have been characterized by their pyrolysis pathways and mass spectra of characteristic pyrolyzates. Pyrolysis Gas Chromatography/Mass Spectrometry (Py-GC/MS) was used in the identification of additives without any sample pretreatment. This result shows that several organic additives in cured rubber can be directly analyzed.
A systematic isolation and characterization study for Cassia auriculata (CA) seeds resulted in identifying antidiabetic compounds 1,3,8-trihydroxyanthraquinone and quercetin, quercetin-3-O-rutinoside, gallic acid, caffeic acid, ferulic acid, and ellagic acid. The ultra-high-performance liquid chromatography based triple quadrupole mass spectrometry methodology was developed and validated for simultaneous identification and confirmation of these compounds from CA seeds. Multiple reaction monitoring (MRM) based quantification method was developed with MRM optimizer software for MS1 and MS2 mass analysis. The method was optimized on precursor ions and product ions with the ion ratio of each compound. The calibration curves of seven bioactive analytes showed excellent linearity (r2 ≥ 0.99). The quantitation results found precise (RSD, < 10 %) with good recoveries (84.58 to 101.42%). The matrix effect and extraction recoveries were found within the range (91.66 to 102.11%) for the CA seeds. This is the first MS/MS-based methodology applied to quantifying seven antidiabetic compounds in CA seeds and its extract for quality control purposes.
Choi, Mira;Choi, A Young;Ahn, Soo-Yeon;Choi, Kwon-Young;Jang, Kyoung-Soon
Mass Spectrometry Letters
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v.9
no.3
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pp.81-85
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2018
In this study, the chemical composition of bacterial melanin isolated from the Streptomyces glaucescens strain was elucidated by ultra-high-resolution Fourier transform ion cyclotron resonance (FT-ICR) mass spectrometry. Ultra-high-resolution mass profiles of the microbial melanin product were acquired using a 15 Tesla FT-ICR mass spectrometer in positive and negative ion modes via electrospray ionization to obtain more complete descriptions of the molecular compositions of melanin-derived organic constituents. A mass resolving power of 500,000 (at m/z 400) was achieved for all spectra while collecting 400 scans per sample with a 4 M transient. The results of this analysis revealed that the melanin pigment isolated from S. glaucescens predominantly exhibits CHON and CHO species, which belong to the proteins class of compounds, with the mean C/O and C/N ratios of 4.3 and 13.1, thus suggesting that the melanin could be eumelanin. This analytical approach could be utilized to investigate the molecular compositions of a variety of natural or synthetic melanins. The compositional features of melanins are important for understanding their formation mechanisms and physico-chemical properties.
Protein glycosylation, a highly significant and ubiquitous post-translational modification (PTM) in eukaryotic cells, has attracted considerable research interest due to its pivotal role in a wide array of essential biological processes. Conducting a comprehensive analysis of glycoproteins is imperative for understanding glycoprotein bio-functions and identifying glycosylated biomarkers. However, the complexity and heterogeneity of glycan structures, coupled with the low abundance and poor ionization efficiencies of glycopeptides have all contributed to making the analysis and subsequent identification of glycans and glycopeptides much more challenging than any other biopolymers. Nevertheless, the significant advancements in enrichment techniques, chromatographic separation, and mass spectrometric methodologies represent promising avenues for mitigating these challenges. Numerous substrates and multifunctional materials are being designed for glycopeptide enrichment, proving valuable in glycomics and glycoproteomics. Mass spectrometry (MS) is pivotal for probing protein glycosylation, offering sensitivity and structural insight into glycopeptides and glycans. Additionally, enhanced MS-based glycopeptide characterization employs various separation techniques like liquid chromatography, capillary electrophoresis, and ion mobility. In this review, we highlight recent advances in enrichment methods and MS-based separation techniques for analyzing different types of protein glycosylation. This review also discusses various approaches employed for glycan release that facilitate the investigation of the glycosylation sites of the identified glycoproteins. Furthermore, numerous bioinformatics tools aiding in accurately characterizing glycan and glycopeptides are covered.
Park, So-Young;Chun, Man-Seog;Song, Jin-Su;Kim, Hie-Joon
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.26
no.4
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pp.575-578
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2005
Electrospray ionization mass spectrometry (ESI MS) was used, along with gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS), to monitor Paal-Knorr synthesis of 2,5-dimethyl-1-phenylpyrrole by condensation of aniline with 2,5-hexanedione. In addition to 2,5-dimethyl-1-phenylpyrrole observed as a single spot by TLC, unexpected dimer size compounds were observed by GC-MS. Dimers and trimers were observed by ESI MS. ESI tandem mass spectrometry was used to select plausible structures for the dimer. ESI MS with or without liquid chromatographic separation is useful for observing oligomeric byproducts with low volatility produced in organic reactions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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