Optimal media and cultural conditions for the production of prodigiosin-like pigment were established using Serratia sp. KH-95. Glucose and phosphate(K2PO4) stimulated the cell growth, but inhibited the production of pigment at concentration levels of above 10 g/L and 2.0 g/L, respectively. Addition of soy been oil or rice oil to the production medium accelerated cell growth up to more than 2-3 times, but the production of prodigiosin increased about 15-20% in spite of the good cell growth. The effect of pH on the production of pigment was investigated in a 5 liter-bioreactor. When the pH of culture broth was maintained below 8.0, most of pigment was attached to the surface of cells. When the pH of culture broth was above 8.5, however, about 70% of total pigment was suspended in the supernatant of the broth. The cell growth and production of pigment were inhibited at dissolved oxygen concentration of below 10% of air-saturation.
Entomogenous fungi which attack living insects are powerful means for microbiological insecticide. The purpose of this study is to establish the culture conditions and media for mass production of Beauveria sp. C208 which has a broad host range as a potential microbiological pesticide. The temperature and pH range for optimal cultivation of this strain were 28$circ$C and pH 5.0-7.0. For Beauveria sp. C 208, 2% rice straw and 0.6% tryptone were found as the proper carbon and nitrogen sources, considering cell mass, enzyme activities such as chitinase, protease and lipase, and spore concentration.
To determine the optimum mixing conditions of nopal jelly, samples were prepared with various compounding ratios of gelatin(16, 18, 20, 22 and 24g), sucrose(100, 120, 140, 160 and 180g), Citric acid(2, 3, 4, 5 and 6) using a central composite design. Physical and sensory evaluations were performed and considered using a response surface methodology. The optimum mixing rates which meet sensory items is gelatin 20.19g, sucrose 141.52g and citric acid 4.04g.
Lee, Hanbyul;Lee, Young Min;Heo, Young Mok;Hong, Joo-Hyun;Jang, Seokyoon;Ahn, Byoung Jun;Lee, Sung-Suk;Kim, Jae-Jin
Mycobiology
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v.45
no.1
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pp.48-51
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2017
The morphological optimization of Trichoderma harzianum was carried out using several surfactants to achieve increased cellulase production. Addition of the surfactants to the culture medium successfully modified the fungal morphology from an aggregated form to a dispersed form. Optimization of the fungal morphology increased cellulase activity up to 177%. The morphologically optimized conditions enhanced the accessibility of the fungus to substrates and thus promoted cellulase production.
With the aim to produce ascorbic acid-2-phosphate(AsA-2-P) from L-ascorbic acid(AsA, Vitamin C), nine bacteria conferring the ability to transform AsA to AsA-2-P were isolated from soil samples alongside known strains from culture collections. Most isolates were classified to the genus Brevundimonas by 16S phylogenetic analysis. Among them, Brevundimonas diminuta KACC 10306 was selected as the experimental strain because of its the highest productivity of AsA-2-P. The optimum set of conditions for the AsA-2-P production from AsA using resting cells as the source of the enzyme was also investigated. The optimum cultivation time was 16 h and the cell concentration was 120g/l(wet weight). The optimum concentrations of AsA and pyrophosphate were 550mM and 450mM, respectively. The most effective buffer was 50mM sodium formate. The optimum pH was 4.5 and temperature was $40^{\circ}C$. Under the above conditions, 27.5g/l of AsA-2-P was produced from AsA after 36 h of incubation, which corresponded to a 19.7% conversion efficiency based on the initial concentration of AsA.
The purpose of this study was to determine the optimal mixing conditions for two different amounts of turmeric (Curcuma longa L.) powder and olive oil for the processing of chicken sausage. The experiment was designed according to the central composite design of response surface methodology, with ten experimental points, including two replicates for turmeric powder and olive oil. The physicochemical and mechanical analysis of each sample, including water holding capacity, moisture content, lightness, redness, yellowness, hardness, chewiness, gumminess, and cohesiveness, showed significant differences. The results from sensory evaluations also showed very significant differences in color, flavor, tenderness, chewiness, and overall quality. The optimal formulation, calculated by numerical and graphical methods, was 1.89 g of turmeric powder and 9.77 g of olive oil. Under these conditions, the model predicted pH-6.01, salinity-0.20, WHC-94.88, $L^*$ value-61.13, $b^*$ value-37.45, hardness-$36.66{\times}10^2$ (N), springiness-8.70 (mm), chewiness-$26.88{\times}10^3$ ($N{\times}mm$).
A novel bacterium isolated from Cheonggukjang was identified as a glutamate-dependent Bacillus subtilis HA with 98.3% similarity to Bacillus subtilis Z99104. Optimization of poly-$\gamma$-glutamic acid ($\gamma$-PGA) production by modulating fermentation factors including carbon sources, nitrogen sources, inorganic salts and fermentation time was investigated. Optimum culture broth for $\gamma$-PGA production consisted of 3% glutamate, 3% glucose and various salts, resulting in the PGA production of 22.5 g/L by shaking culture for 72 hr at $37^{\circ}C$. Average molecular weight of $\gamma$-PGA was determined to be 1,220 kDa through MALLS analysis. The $\gamma$-PGA solution showed a typical pseudoplastic flow behavior, and a great decrease in consistency below pH 6.0 regardless of the same molecular weight of $\gamma$-PGA. The molecular weights of isolated $\gamma$-PGA were drastically decreased by heat treatment in various acidic conditions, resulting in different hydrolysis of $\gamma$-PGA. The consistency of $\gamma$-PGA solution was greatly decreased with increase heating time in acidic conditions.
The purpose of this study was to establish the best optimized extraction condition for the optimal development of fresh maca beverage using low temperature extraction and enzyme treatment. Low temperatures were applied to prevent heat-related nutritional loss during the extraction process. Best extraction conditions were investigated based on the ratio of maca to water, the ratio of enzymes, extraction temperature and time, and agitation. The optimal enzyme conditions were also examined after the treatment of cellulase:pectinase mixture to maintain the original color and flavor, as well as to increase the extraction yield. When cellulase:pectinase was 1:1, the extraction rate ranged from 77.84 to 79.29%. In addition, the best extraction rate was found when maca was mixed with twice volume of water and incubated at $45^{\circ}C$ ($84.05{\pm}0.32%$) with 90 rpm ($87.13{\pm}0.46%$) agitation for 3 hours ($84.73{\pm}0.29%$). Furthermore, sensory evaluation showed a high score in flavor, sweetness, and overall acceptability after adding 3% jujube concentrate into a fresh maca beverage.
Ma Xingyuan;Zheng Wenyun;Wang Tianwen;Wei Dongzhi;Ma Yushu
Journal of Microbiology
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v.44
no.3
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pp.293-300
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2006
The Escherichia coli heat-labile enterotoxin B subunit (HLT-B) is one of the most powerful mucosal immunogens and known mucosal adjuvants. However, the induction of high levels of HLT-B expression in E. coli has proven a difficult proposition. Therefore, in this study, the HLT-B gene was cloned from pathogenic E. coli and expressed as a fusion protein with GST (glutathion S-transferase) in E. coli BL2l (DE3), in an attempt to harvest a large quantity of soluble HLT-B. The culture conditions, including the culture media used, temperature, pH and the presence of lactose as an inducer, were all optimized in order to obtain an increase in the expression of soluble GST-rHLT-B. The biological activity of the purified rHLT-B was assayed in a series of GMI-ELISA experiments. The findings of these trials indicated that the yield of soluble recombinant GST-rHLT-B could be increased by up to 3-fold, as compared with that seen prior to the optimization, and that lactose was a more efficient alternative inducer than IPTG. The production of rHLT-B, at 92 % purity, reached an optimal level of 96 mg/l in a 3.7 L fermentor. The specific GM1 binding ability of the purified rHLT-B was determined to be almost identical to that of standard CTB.
We optimized dextranase culture conditions by batch fermentation using Lipomyces starkeyi KCTC 17343. Furthermore, dextranase was purified by an ultra-membrane, and then dextran hydrolyzates were characterized. Cell growth and dextranase production varied depending on the initial culture pH and temperature. The conditions of optimal dextranase production were met in a pH range of 4-5 and temperature between $25-30^{\circ}C$. At optimal fermentation conditions, total enzyme activity and specific enzyme activity were about 4.85 IU/ml and 0.79 IU/g cells, respectively. The specific growth rate was examined to be $0.076\;hr^{-1}$. The production of dextranase in culture broth was very stably maintained after mid-log phase of growth. The enzyme hydrolyzed dextran into DP (degree of polymerization) 2 to 8 oligodextran series. Analysis of the composition of hydrolysates suggested that the enzyme produced is an endo-dextranase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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