본 실험은 마우스 초기배의 체외배양에 있어서 배양액 첨가제로서 기초배양액에 RPMI 1640 아미노산, MEM 비타민 및 사람의 성숙 난포액(hFF)을 각각 5가지의 농도로 구분하여 첨가했을 경우, 각 첨가제가 배 발달에 미치는 영향과 각 첨가제의 적정 첨가농도를 검토하고자 수행하였다. 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 배양액에 RPMI 1640 아미노산을 무첨가, 0.25%, 0.5%, 1% 및 2%의 농도로 첨가했을 때 배반포 발생율은 각각 35.5%, 54.5%, 65.4%, 48.2% 및 57.4%로 나타났으며, 0.5% 첨가구에서 유의하게 높았다. 2. 배양액에 MEM 비타민을 무첨가, 0.25%, 0.5%, 1% 및 2%의 농도로 첨가했을 때 배반포 발생율은 각각 12.8%, 22.4%, 31.1%, 21.9% 및 19.0%로 나타났으며, 0.5% 첨가구에서 유의하게 높았다. 3. 배양액에 hFF를 무첨가 2.5%, 5%, 10% 및 20%의 농도로 첨가했을 때 배반포 발생율은 각각 20.6%, 20.9%, 21.2%, 18.9% 및 29.4%로 나타났으며, 20% 첨가구에서 가장 높았다.
The objectives of the present study were improvements in the efficiency of developmental rates to morula and blastocyst stages to produce a large number of genetically identical nuclear transplanted embryos. The oocytes collected from slaughterhouse ovaries were matured 24h in TCM199+10% FBS and exposed to $39^{\circ}C$ or room temperature to allow cytoplasmic maturation and gain activation competence. Donor embryos were treated for 12h with $10{\mu}g/ml$ nocodazole or $0.05{\mu}g/ml$ demicolcine to synchronize the cell cycle stage at 26h after the onset of culture. The blastomeres and recipient oocytes were fused by electrofusion. The cloned embryos were then cultured in various conditions to allow further development. In the treatment of oocyte activation and cell cycle regulation of donor nuclei, the room temperature exposure and nocodazole treatment group had significant effect on the developmental rates to morula/blastocyst(21.7% vs 12.1~16.7%), but had no significant effect on the fusion rates between donor blastomeres and recipient oocytes. The developmental rates of bovine nuclear transplanted embryos appeared to be higher significantly in mTALP medium under 5% $O_2$ condition and in TCM199 with bovine oviduct epithelial cell under 20% $O_2$ condition(22.2%) than other groups. In embryo transfer of nuclear transplanted embryos, there were no significant differences in calving rates between the use of excellent and good grade donor embryos.
This study was carried out to investigate the aggregation rate of isolated mouse 2-, 4- and 8-cell stage blastomeres in phytohemagglutinin(PHA) solution. The morphologically normal embryos were collected from the oviduct of superovulated female mouse by flushing with M2 and the zona pellucida of embryos were removed with 0.5% pronase. The blastomeres were isolated by pipetting after plunging into Ca++-Mg++free PBS for 20 min. The result showed that aggregation rate in 0.5% (84.9~93.1%) was higher than that in 1.0% PHA(76.0~82.1%). Optimal aggregation time was 60min (83.9~100.0%) when compared with 30min (78.8~87.5%). Developmental to blastocyst in recombinated blastomeres was higher under conditions of 0.5% PHA solution and 60-min aggregation than that under other conditions.
Objectives: The development of an useful method for obtaining metaphase chromosomes from a biopsied blastomere would allow differentiation between embryos with balanced and normal chromosome complements in the preimplantation genetic diagnosis for chromosomal translocations. This study was performed to evaluate the effects of microtubule depolymerizing agents (MTDAs) on the blastomeres of mouse and human preimplantation embryos, and to establish an effective method for obtaining metaphase chromosomes of biopsied blastomeres in human early embryos. Materials and Methods: Early embryos (2-4 cell stage) from superovulated mice (ICR strain) were collected and treated with single or mixture MTDAs, such as vinblastine, nocodazole and colcemid. After the treatment of MTDAs for 16 hours, the metaphase aquisition (MA) rates were evaluated by the observation of chromosome status with bis-benzimide or DAPI staining. The optimal condition from the above experiment was applied to human embryos, which were developed from abnormal fertilization (3-pronuclei). Fluorescence in-situ hybridization (FISH) with whole chromosome probes was conducted on the human metaphase chromosomes by the MTDAs. Results: In mouse embryos, the effective concentrations of each MTDAs for obtaining metaphase chromosomes were $1.0{\mu}M$ of vinblastine (20.3%), $5.0{\mu}M$ of nocodazole (28.1%) and $1.0{\mu}M$ colcemid (55.6%), respectively. The highest MA rate (91.2%) in the mouse embryos was obtained by a mixture of vinblastine ($1.0{\mu}M$) and nocodazole ($1.0{\mu}M$). In the human embryos, the metaphase chromosomes of blastomeres were obtained in 44 of 113 blastomeres (38.9%) by treatment of the mixture of vinblastine and nocodazole. FISH signals of the metaphase chromosomes were successfully observed in human individual blastomeres. Conclusions: The treatment of a mixture MTDAs for obtaining metaphase chromosomes was an efficient method, and the MA rate was above 90% in the mouse embryos. However, only a relatively small proportions of the blastomeres yielded metaphase chromosomes by the MTDAs in the human embryos. The inconsistent effects of MTDAs may be related to the variation of different species and the poor developmental potency of abnormally fertilized human embryos. We should develop more reliable and efficient methods for obtaining the metaphase chromosomes in the biopsied blastomeres of human preimplantation embryos.
Faramarzi, Azita;Khalili, Mohammad Ali;Mangoli, Esmat
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제46권3호
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pp.119-124
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2019
Objective: It is widely accepted that aging decreases women's fertility capacity. The aim of this study was to assess correlations between maternal age and the morphokinetic parameters and cleavage pattern of embryos. Methods: The morphokinetics of embryos derived from women < 30, 30-35, 36-40, and > 40 years of age were compared retrospectively in terms of time of second polar body extrusion, time of pronuclei appearance, time of pronuclei fading, and time of two to eight discrete cells (t2-t8). Furthermore, abnormal cleavage patterns such as uneven blastomeres at the two-cell stage, cell fusion (Fu), and trichotomous mitoses (TM) were assessed. Results: Only t5 occurred later in women aged 36-40 and > 40 years when compared with those aged < 30 and 30-35 years (p< 0.001). Other morphokinetic timing parameters, as well the presence of uneven blastomeres, were comparable between the groups (p> 0.05). However, Fu and TM were more common in women aged > 40 years than in younger women (p< 0.001). Conclusion: Maternal age was correlated with the cleavage pattern of embryos. Therefore, evaluating embryo morphokinetics may contribute to optimal embryo selection, thereby increasing fertility in patients with advanced maternal age.
Objective: The aim of this study were to compare the effects of EG and PROH on cryopreservation of mouse and human embryos, and to find the optimal protocol for embryo freezing. Methods: Human embryos derived from fertilized eggs showing 3 pronuclei (PN) and mouse embryos were divided into two groups respectively: dehydrated with 1.5 M EG + 0.2 M sucrose or 1.5 M PROH + 0.2 M sucrose using the slow freezing method. Moreover mouse embryos were controlled the exposure time of cryoprotectant during dehydration or rehydration steps. Results: The survival rates of human embryos were 79.2% (84/106) in EG group and 77.9% (88/113) in PROH group. In mouse embryos, the survival and development rates up to blastocyst were 70.6% (245/347), 44.1% (123/279) in EG group and 62.1% (198/319), 45.1% (123/279) in PROH group, respectively. However, in EG group, partially damaged embryos after thawing were decreased compared to PROH group. In combination group, when the exposure time during dehydration and rehydration were reduced, the survival and embryonic developments were increased slightly, but not significant. Conclusion: Cryopreservation of mouse and human embryos at cleavage stage by using EG or PROH exhibited no statistical difference in the survival rate and/or developmental rate to blastocyst. However, the use of EG for cryopreservation of embryos might reduce the exposure time of the cryoprotectant because of a high permeation of EG and result in lessen its toxic effects.
This experiment was carried out to develop an in vitro culture system for rabbit embryos. The zygotes or 2-cell embryos were collected from the oviducts of the superovulated and mated does with D-PBS/10% FCS at 24 hours after hCG injection. The in vitro developmental rate of blastocyst formation and the number of nuclei in the embryos were examined under the following treatments; 1) TCM-199 with 10% FCS, 2) EBSS with 10% FCS, 3) rabbit vitreous humor(VH), 4) TCM-199 with 10% FCS+BOEC, 5) TCM-199 with 10% FCS+ROEC, 6) EBSS with 10% FCS+BOEC and 7) EBSS with 10% FCS+ROEC. For a comparative study of in vivo and in vitro development, the fresh blastocysts, which were developed in vivo for 96 hours after hCG injection, were collected from the uterus and their numbers of nuclei were counted. 1. The zygotes or 2-cell embryos developed to the blastocyst stage in TCM-199, EBSS and VH at the rates of 93, 92 and 89%, respectively. 2. The higher developmental rates 95~98% of blastocyst formation was achieved when the embryos were co-cultured with a monolayer of bovine or rabbit oviductal epithelial cells in TCM-199 or EBSS. No significant difference in developmental rates was shown between bovine and rabbit oviductal epithelial cells. 3. In a comparative study of in vivo and in vitro development, the total numbers of nuclei were significantly less in the in vitro cultured embryos(104~224) than the in vivo developed embryos(1, 0090 at 96 hours after hCG injectin. 4. The mean cell cycle numbers in the embryos cultured for 72 hours in TCM-199 with 10% FCS, EBSS with 10% FCS, TCM-199 with 10% FCS+BOEC, TCM-199 with 10% FCS+ROEC, EBSS with 10% FCS+BOEC and in vivo was 7.38, 6.63, 7.76, 7.69, 7.01 and 9.92, respectively. From these results, it can be suggested the optimal culture system for in vitro culture of rabbit embryos is a co-culture system with bovine or rabbit oviductal epithelial cells in TCM-199 with 10% FCS. Considering the significant reduction in total numbers of nuclei in the in vitro cultured embryos, the advanced research on development of in vitro culture system for rabbit embryos is expected.
본 연구는 제외생산된 돼지 수정란의 처1외발생율을 제고하기 위하여 각종 배양액파 돼지난구세포 혹은 생 쥐태아간세포와의 공동배양 효과플 조사하였다 m-KRB, BECM 및 TCM-HEPES 배양액을 공시하 여 제외수정란을 배양한 결과 배반포기까지 발달하는 비율은 전처리구에서 0~1.0%로써 극히 저조하였다. 특히 대부분의 수정란은 4-세포기 단계에서 발달이 정지되었다. 한편, 단층세포가 유도된 돼지 난구세포나 생쥐 태아간세포와 함께 제외수정란을 공동배양한 결파 2, 4-, 8~16-, 32-세포기, 상실배가 빛 배반포로 받달하는 비율은 각각 61.1~67.0%, 59.0~58.0%, 42.5~43.1%, 28.4~30.2% 및 20.4~21.0%였다 이러한 결파는 단순배양액에서 체외배양한 수정란의 발탄 성적 보다유의하게 높은 것이었다. 이상의 결과를 종합하여 볼 때 1세포기 수정란을 체외에서 배양할때 체세포와의 공동배양은 수정란의 체외발달을 촉진하는 것으로 생각된다.
Sewon Oh;Byeonghyeon Yun;Se Hee Kim;Sang-Yun Cho;Namhee Jung;Kyung Ran Do;Kang Hee Cho;Hyun Ran Kim
한국자원식물학회지
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제37권3호
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pp.263-269
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2024
Embryos of early-ripening peaches could not achieve physiological maturation or undergo abortion before harvest. Embryo rescue is an effective strategy to rescue embryos from early-ripening peaches. Thus, the current study was carried out to determine the appropriate developmental stage and optimal medium composition for embryo rescue in early-ripening peach. Development of open-pollinated 'Yumi' fruit was investigated from 20 to 90 days after full bloom (DAFB) to explore period occurring endocarp hardening. After endocarp hardening, embryo development was observed by light microscopes. Shoot and root meristems were observed at 65 DAFB and embryo size rapidly increased at 75 DAFB. Embryos collected at 75, 80, 85, and 90 DAFB were cultured on four media based on Driver and Kuniyuki (DKW) medium. Germination rate of embryos cultured on four media gradually increased from 75 to 90 DAFB and reached 100% at 90 DAFB. Notably, M3 medium (0.5 DKW supplemented with 6-benzylaminopurine (BAP) 1.0 ㎎/L) displayed the highest germination rate at 75 and 80 DAFB stages. Growth and development of shoot and root were pronounced in plantlet cultured at 90 DAFB stage. While delayed shoot growth was evident in plantlets cultured at 75, 80, and 85 DAFB stages, this retardation could be overcome through the application of growth regulators, particularly in M3 and M4 (0.5 DKW supplemented with BAP 1.0 ㎎/L and indole-3-butyric acid 0.5 ㎎/L) media. Remarkably, roots of plantlet grown in M4 medium exhibited limited elongation. In conclusion, germination rate of embryo and growth of embryo cultured plantlet can be enhanced by collecting seeds from early-ripening 'Yumi' at the 90 DAFB stage and conducting embryo culture using the M3 medium.
Follicular oocytes of Grade I and II were collected from 2~6 mm ovarian follicles and matured in vitro (IVM) for 24 hrs in TCM-199 su, pp.emented with 35$\mu\textrm{g}$/ml FSH, 10$\mu\textrm{g}$/ml LH, and 1$\mu\textrm{g}$/ml estradiol-17$\beta$ at 39$^{\circ}C$ under 5% CO2 in air. They were fretilized in vitro (IVF) by epididymal spermatozoa capacitated with heparin for 12 hrs. The zygotes were then co-cultured in vitro with bovine oviducted epithelial cells (BOEC) for 7 to 9 days. The optimal time for IVM, the successful enucleation of IVM oocytes by micromanipulation at different oocyte ages after IVM, and the ideal culture system for IVM for effective IVF and in vitro development of IVM-IVF embryos was examined for in vitro production of nuclear recipient oocytes and nuclear donor embryos. To improve the efficiency of nuclear transplantation (NT) of IVF embryo into IVM follicular oocytes, this study evaluated the optimal electric condition and oocytes age for activation of IVM oocytes and in vitro development of NT embryos. In vitro development of NT embryos with preactivation or non-preactivation in enucleation oocytes, cell number of IVN-IVF embryos, and NT embryos wre also examined. The results obtained were as follows; 1. The most suitable enucleation time was at 24 hpm (83.3%) rather than that of 28 hpm(69.6%) and 32 hpm(50.0%). 2. There was no difference among the fusion rates of NT embryos at the voltages of 0.75, 1.0 and 1.5 kV/cm, but the in vitro development rates to morule and blastocyst were significantly (P<0.05) higher at the voltage of 0.75(12.5%) and 1.0kV/cm (12.6%) compared to 1.5kV/cm(0%). 3. No significant difference in activation rates were seen in NT embryos stimulated for 30, 60 and 120 $\mu$sec (71.7, 85.2 and 71.9%, respectively), but the in vitro development rates to morulae and blastocyst were significantly (P<0.05) higher in the oocytes stimulated for 30 $\mu$sec (11.6%) and 60 $\mu$sec(10.7%) than 120 $\mu$sec(0.0%). 4. The fusion rates (71.0 and 87.3%) and the in vitro development rates (9.1 and 12.7%) to morula and blastocyst were seen in the NT embryos stimulated at 28 and 32 hpm under the condition of 1.0 kV/ml, 60 $\mu$sec. However, at 24 hpm the fusion rates were 64.8% and the in vitro development to morula and blastocyst were not seen. 5. The fusion rates between the 8~12, 13~17 and 18~22-cell stage of IVM-IVF embryos were not significantly different. The in vitro development rates of the fused embryos to morula and blastocyst which were received from a blastomere of 8~12, 13~17 and 18~22-cell stages of IVM-IVF embryos were 14.9, 8.3 and 6.5%, respectively. 6. The in vitro development rate of the enucleated recipient oocytes with preactivation (24.2%) to morula and blastocyst was significantly (P<0.05) higher than that of non-preactivation (12.8%). 7. The cell numbers of NT blastocyst and IVM-IVF blastocyst cultured during 7~9 days were 63$\pm$11 and 119$\pm$23, and then their the mean cell cycle number were 5.98 and 6.89, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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