Intracerebroventricular (ICV) infusion of morphine (MOR) produces strong analgesia in man and animals. The analgesic effect is thought to be mediated by the centrifugal inhibitory control. But neural mechanisms of the analgesic effect of ICV morphine are not well understood. In the present study, we found that ICV MOR had dual actions on the activity of dorsal horn heurons: it produced both inhibition and excitation of dorsal horn neurons. Since MOR exerts its action via three different types of opioid receptors, we further sought to investigate if there are differential effects of opioid receptor agonists on dorsal horn neurons when administered intracerebroventricularly. Effects of ICV MOR were tested in 28 dorsal horn neurons of the spinal cord in the cat. ICV MOR inhibited, excited and did not affect the heat responses of dorsal horn neurons. ICV DAMGO and DADLE, $\mu$- and $\delta$-opioid agonist, respectively, exhibited the excitation of dorsal horn neurons. In contract, U-50488, a k-opioid agonist, exhibited both the inhibition and excitation of dorsal horn neurons. These results suggest that opioid receptors have different actions on activity of dorsal horn neuron and that the inhibitory action of k-opioid agonist may subserve the analgesia often produced by ICV MOR.
Whole-body $\gamma$-irradiation(WBI), which produces an oxidative stress, is reported to attenuate the acute antinociceptive action of morphine (a $\mu$-opioid receptor agonist), but not DPLPE (a $\delta$-opioid receptor agonist), in mice. Recently, we also reported that antinociceptive effect of morphine, but not $\beta$-endorphin (a novel $\varepsilon$-opioid receptor agonist), was attenuated by oxidative stress. These findings prompted us to investigate the effect of WBI on the antinociception of morphine and $\beta$-endorphin in mice. Mice were exposed to WBI (5 Gy) from a $^{60}Co$ gamma-source and tested 2 hours later for antinociception produced by intracerebroventricular administration of morphine or $\beta$-endorphin using the hot water tail-immersion and the writhing tests. WBI significantly attenuated the antinociception produced by morphine only in the hot water tail-immersion test, whereas the antinociception of $\beta$-endorphin was significantly potentiated by WBI in both tests. These results demonstrate a differential sensitivity of $\mu$- and $\varepsilon$-opioid receptors to WBI, and support the hypothesis that morphine and $\beta$-endorphin administered supraspinally produce antinociception by different neuronal mechanisms.
Kim, Jin-Sook;Kim, Dae-Kyung;Kwon, Tae-Hyub;Yong, Chul-Soon;Ha, Jeoung-Hee;Huh, Keon;Kim, Jung-Ae
Biomolecules & Therapeutics
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v.7
no.3
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pp.278-284
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1999
DK1001 is a thebain derivative, which is newly synthesized as an alkaloid analgesic. This study was designed to study effects of DK1001 on the ligands binding to the opioid receptor subtypes, and general pharmacology of DK1001. DK1001 inhibited the binding of [$^3H$]DAMGO, a selective mu-subtype agonist, to the opioid receptor of rat forebrain in a concentration-dependent manner. $EC_{50}$ of DK1001 was significantly lower than that of morphine. DK1001 inhibited the binding of 〔$^3$H〕DPDPE, a selective delta-subtype agonist concentration-dependently. DK1001(0.5 mg/kg) had no effects on behavior, body temperature, blood pressure. respiratory rate, and intestinal charcoal propulsion of mice. In addition, DK1001 did not affect on the contractilities of isolated muscle strips of aorta, ileum, and trachea of rats. These results suggest that DK1001 might be a potent analgesic without serious side effects.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1994.04a
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pp.305-305
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1994
It has been shown that there are several subtypes of $\kappa$ opioid receptor, We have evaluated the properties of non-${\mu}$, non-$\delta$ binding of 〔$^3$H〕DIP, a nonselective opioid antagonist, in rat cortex membranes. Binding to ${\mu}$ and $\delta$ sites was inhibited by the use of an excess of competing selective agonists (DAMGO, DPDPE) for these sites. (-)Ethylketocyclazocine(EKC) inhibited 〔$^3$H〕DIP binding with Ki. of 70 nM. However, arylacetamides (U69593 and U50488H) gave little inhibition. Also, we have examined the opioid modulation of K$\^$+/(30 mM)-induced histamine release in rat frontal cortex slices labeled with 1-〔$^3$H〕histidine. The 〔$^3$H〕histamine release from cortex slices was inhibited by EKC, a $\kappa$$_1$-and $\kappa$$_2$-agonist, in a concentration-dependent manner(10 to 10,000 nM). The IC$\sub$50/ of EKC was 107 ${\pm}$ 6 nM. However, the $\delta$ receptor selective agonists, DPDPE and deltorphine II, ${\mu}$ receptor agonists, DAMGO and TAPS, $\kappa$$_1$-agonists, U69593 and U50488H, and $\varepsilon$-agonist, ${\beta}$-endorphin, did not inhibit histamine release even in micromoiar dose, indicating that ${\mu}$, $\delta$ or $\kappa$$_1$ receptors are not involved. The concentration-response curve of EKC was shifted to right in the presence of naloxone (300 nM), a ${\mu}$ preferential antagonist, norbinaltorphimine(300 nM), a $\kappa$$_1$ preferential antagonist and bremazocine(1 nM), a $\kappa$$_1$-agonist and $\kappa$$_2$-antagonist. These results suggest that $\kappa$$_2$ opioid receptor regulates histamine release in the frontal cortex of the rat.
Kim, Jin-Hyuk;Koh, Young-Ik;Chin, He-Min;Lee, Yong-Sung;Cho, Yeul-Hee;Kim, Kee-Soon
The Korean Journal of Physiology
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v.29
no.2
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pp.301-307
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1995
To explore electrophysiological properties of the ${\delta}-Opioid$ receptors artificially expressed in the mammalian cell, effect of an opioid agonist DPDPE $(1\;{\mu}M)$ on the voltage-sensitive outward currents was examined in the HEK293 (human embryonic kidney) cells transfected with ${\delta}-Opioid$ receptor cDNA cloned from NG-108-15 $(neuroblastoma\;{\times}\;glioma\;hybrid)$ cDNA library. Also studied were effects of 8-bromo-cyclic AMP and naloxone on DPDPE-induced changes in the voltage sensitive outward current. The voltage sensitive outward currents were recorded using perforated patch technique at room temperature. In the non-transformed HEK293 cells, DPDPE did not alter voltage sensitive outward current, indicating that no native ${\delta}-Opioid$ receptor had been developed. However, $(1\;{\mu}M)$ DPDPE remarkably increased the voltage sensitive outward current in the transformed HEK293 cells. The increment in voltage sensitive outward current peaked in $7{\sim}10\;minutes$ after DPDPE application, and the maximum DPDPE-activated outward current $(313.1{\pm}12.3\;pA)$ was recorded when the membrane potential was depolarized to +70mv. Following pretreatment of the transformed HEK293 cells with 1 mM 8-bromo-cyclic AMP, DPDPE failed to increase the voltage sensitive outward currents. On the other hand, naloxone completely abolished DPDPE-activated voltage sensitive outward current in the transformed HEK293 cells. The results of present study suggest that in the transformed HEK293 cells an activation of the ${\delta}-Opioid$ receptors by an opioid agonist DPDPE increases the voltage-sensitive potassium current as a result of decrement in cyclic AMP level.
Effects of Panax ginseng on the morphine toxicity were studied in relation to its effects on the opioid receptor-G protein interactions. Morphine treatments (3 days) reduced the body weight increment rate and the weight of the thymus and spleen. These changes were usually recovered by the concomitant administration of ginseng total saponin (GTS) but occasionally further deteriorated. This discrepancy was studied in relation to the opioid receptor coupling to G protein, that is, the effects of morphine and GTS on the opioid receptors were studied using the antagonist-agonist competitive binding studies. When GTS recovered the morphine toxicity, morphine shifted the striatal $\delta$ receptors to slightly higher affinity state, and this was partly recovered by the GTS treatment. However, morphine did not have any effect on the affinity state of $\delta$ receptor from NG108-15 cells, suggesting that additional factors were needed for the modulation of the affinity states of $\delta$ receptor. Effects of morphine and GTS on $\mu$ receptor were complicate and variable, and we could not reach a clear conclusion. The morphine toxicity might accompany complicate biological involvements, and the modulation of the affinity states of the opioid receptors might explain a part of the effects of GTS on the morphine toxicity.
Morphine or butorphanol was continuously infused into cerebroventricle (i.c.v.) with the rate of $26\;nmol/{\mu}l/h$ for 3 days, and the withdrawal from opioid was rendered 7 hrs after the stopping of infusion. The expression of physical dependence produced by these opioids was evaluated by measuring the naloxone-precipitated withdrawal signs. The withdrawal signs produced in animals dependent on butorphanol (kappa opioid receptor agonist) were similar to those of morphine (mu opioid receptor agonist). Besides the behavioral modifications, opioid withdrawal affected G protein expression in the central nervous system. The G-protein ${\alpha}-subunit$ has been implicated in opioid tolerance and withdrawal. The effects of continuous infusion of morphine or butorphanol on the modulation of G protein ${\alpha}-subunit$ mRNA were investigated by using in situ hybridization study. In situ hybridization showed that the levels of $G\;{\alpha}s$ and $G\;{\alpha}i$ were changed during opioid withdrawal. Specifically, the level of $G\;{\alpha}s$ mRNA was decreased in the cortex and cerebellar granule layer during the morphine and butorphanol withdrawal. The level of $G\;{\alpha}i$ mRNA was decreased in the dentate gyrus and cerebellar granule layer during the morphine withdrawal. However, the level of $G\;{\alpha}i$ mRNA was significantly elevated during the butorphanol withdrawal. These results suggest that region-specific changes of G protein ${\alpha}-subunit$ mRNA were involved in the withdrawal from morphine and butorphanol.
Park, Tae-Won;Kim, Jin-Kyu;Jeong, Jae-Soo;Kim, Tae-Wan;Cho, Young-Kyung;Kim, Kyung-Nyun;Chung, Ki-Myung
International Journal of Oral Biology
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v.37
no.1
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pp.1-7
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2012
Opioid receptors have been pharmacologically classified as ${\mu}$, ${\delta}$, ${\kappa}$ and ${\varepsilon}$. We have recently reported that the antinociceptive effect of morphine (a ${\mu}$-opioid receptor agonist), but not that of ${\beta}$-endorphin (a novel ${\mu}/{\varepsilon}$-opioid receptor agonist), is attenuated by whole body irradiation (WBI). It is unclear at present whether WBI has differential effects on the antinociceptive effects of ${\mu}-$, ${\delta}-$, ${\kappa}-$ and ${\varepsilon}$-opioid receptor agonists. In our current experiments, male ICR mice were exposed to WBI (5Gy) from a $^{60}Co$ gamma-source and the antinociceptive effects of opioid receptor agonists were assessed two hours later using the hot water ($52^{\circ}C$) tail-immersion test. Morphine and $D-Ala^2$, $N-Me-Phe^4$, Gly-olenkephalin (DAMGO), [$D-Pen^2-D-Pen^5$] enkephalin (DPDPE), trans-3,4-Dichloro-N-methyl-N-[2-(1-pyrrolidinyl)-cyclohexyl]-benzeneacetamide (U50,488H), and ${\beta}$-endorphin were tested as agonists for ${\mu}$, ${\delta}$, ${\kappa}$, and ${\varepsilon}$-opioid receptors, respectively. WBI significantly attenuated the antinociceptive effects of morphine and DAMGO, but increased those of ${\beta}$-endorphin. The antinociceptive effects of DPDPE and U50,488H were not affected by WBI. In addition, to more preciously understand the differential effects of WBI on ${\mu}-$ and ${\varepsilon}$-opioid receptor agonists, we assessed pretreatment effects of ${\beta}$-funaltrexamine (${\beta}$-FNA, a ${\mu}$-opioid receptor antagonist) or ${\beta}$-$endorphin_{1-27}$ (${\beta}$-$EP_{1-27}$, an ${\varepsilon}$-opioid receptor antagonist), and found that pretreatment with ${\beta}$-FNA significantly attenuated the antinociceptive effects of morphine and ${\beta}$-endorphin by WBI. ${\beta}$-$EP_{1-27}$ significantly reversed the attenuation of morphine by WBI and significantly attenuated the increased effects of ${\beta}$-endorphin by WBI. The results demonstrate differential sensitivities of opioid receptors to WBI, especially for ${\mu}-$ and ${\varepsilon}$-opioid receptors.
Literature has revealed that the delta opioid receptor (DOR) exhibited diverse pharmacological effects on neuron and skin. In the present study, we have investigated whether the activation of DOR has hair-growth promotion effects. Compared with other opioid receptor, DOR was highly expressed in epidermal component of hair follicle in human and rodents. The expression of DOR was high in the anagen phase, but it was low in the catagen and telogen phases during mouse hair cycle. Topical application of UFP-512, a specific DOR agonist, significantly accelerated the induction of the anagen in C3H mice. Topical application of UFP-512 also increased the hair length in hair organ cultures and promoted the proliferation and the migration of outer root sheath (ORS) cells. Similarly, pharmacological inhibition of DOR by naltrindole significantly inhibited the anagen transition process and decreased hair length in hair organ cultures. Thus, we further examined whether Wnt/β-catenin pathway was related to the effects of DOR on hair growth. We found that Wnt/β-catenin pathway was activated by UFP-512 and siRNA for β-catenin attenuated the UFP-512 induced proliferation and migration of ORS cells. Collectively, result established that DOR was involved in hair cycle regulation, and that DOR agonists such as UFP-512 should be developed for novel hair-loss treatment.
Buprenorphine, one of the mixed agonist-antagonist opioid drugs was used to inverstigate the opioid receptor on frog sciatic nerve A fibers. Action potentials were recorded for 4 hrs by a sucrose gap apparatus which were separated by four rubber membranes. To examine the one of the mechanism of action of buprenorphine, meperidine or naloxone was added after or before the treatment of buprenorphine. The results of this experiment were as follows: 1. Buprenorphine suppressed significantly the compound action potentials of frog sciatic nerve, and the maximal effects were shown both at $10^{-4}\;M$ and at $10^{-8}\;M$. 2. The dose-response relationship of buprenorphine on the depressant effect in frog sciatic nerve was biphasic and inverted U-shaped. 3. Buprenorphine blocked the effect of Meperidine $(10^{-3}\;M)$ on this preparation. 4. The depressant effcct of Buprenorphine on frog sciatic nerve was blocked by $10^{-8}\;M$ naloxone. From the above results, buprenorphine acts as one of agoinist-antagonistic effect on frog sciatic nerve, and the opioid receptor on this preparation is located on or near the intracellular opening of the sodium channels, which are sensitive to naloxone.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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