• Applied Biological Chemistry
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• 제36권6호
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• pp.557-561
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• 1993

Polyethylene glycol(PEG)법 또는 electroporation법으로 제라니움 원형질체에 neomycin phosphotransferase II(nptII) 유전자를 옮기고, 세포내에 도입된 nptII DNA의 존재유무와 발현여부를 조사하였다. Polymerase chain reaction(PCR)을 이용하여 검토한 결과, PEG법을 사용했을 때나 electroporation법을 사용했을 때 모두 세포내에 도입된 nptII DNA가 있음이 확인되었다. 또 이들 세포의 추출물을 전기영동하여 neomycin phosphotransferase 활성을 조사한 결과, 효소활성을 보이는 band가 검출되어 marker gene 으로 도입된 notII 유전자가 세포내에서 발현된다는 것이 확인되었다.

• Bulletin of the Korean Chemical Society
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• 제15권7호
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• pp.568-571
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• 1994

Streptmyces fradiae NRRL B1195 and Streptomyces kanamyceticus IFO 13414 are highly resistant to the antibiotics they produce. The ribosomes of these organisms are found to be susceptible to the antibiotics, but the cell free extract of S fradiae is found to contain a phosphotransferase and an acetyltransferase which inactivate kanamycin and neomycin, and that of S. kanamyceticus an acetyltransferse which inactivates kanamycin and neomycin. The resistance of these organisms against streptomycin is found to be due to the resistant ribosomes; actually streptomycin activates their ribosomal systems for the synthesis of polyphenylalanine.

• Plant Resources
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• 제4권1호
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• pp.36-40
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• 2001

Transgenic Petunia hybrida cv. Rosanpion was produced by Agrobactepium tumefaciens LBA4404 harboring a binary vector pBI 121 containing $\beta$-glucuronidase (gus) and neomycin phosphotransferase (nptII). For genetic transformation, leaf discs were precultured on MS medium supplemented with 0.5 mg/L NAA and 1.0 mg/L BA (MNB) for 2 days and cocultured for 15 mins with A. tumefaciens. For selection of transformant, leaf discs were transferred to fresh MNB containing 50 mg/L kanamycin and 500 mg/L cefotaxime. Eighteen plants were regenerated and four were confirmed by PCR for detection of gus and nptII gene integrated into the nuclear genome of petunia ‘Rosanpion’. Using this transformation system, we expect that transgenic petunia ‘Rosanpion’ incorporating a useful gene can be produced.

• 식물조직배양학회지
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• 제25권5호
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• pp.329-333
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• 1998

Escherichia coli의 $\beta$-glucuronidase (GUS) 유전자를 고구마의 배발생세포괴에 particle bombardment로 도입하여 재분화 식물체에 발현시켰다. CaMV35S-GUS 융합유전자와 선발표지로서 neomycin phosphotransferase유전자가 들어있는 binary 운반체 pBI121 DNA를 텅스텐 입자로 코팅하여 정단분열 조직 유래의 배발생 세포괴에 bombarding하였다. Bombarding된 세포괴를 1mg/L 2,4-D와 100mg/L kanamycin이 첨가된 MS 배지로 옮겨 한달 간격으로 6개월동안 계대배양하였다. Kanamycin 저항성 캘러스를 0.03mg/L 2iP, 0.03 mg/L ABA 및 50 mg/L kanamycin이 들어있는 MS 배지로 옮겨 체세포배를 유도하였고, kanamycin이 첨가되지 않은 MS 기본배지에서 식물체로 발달시켰다. 토양에서 생육중인 6개체의 식물을 대상으로 PCR과 northern분석을 수행한 결과 GUS 유전자가 식물체 genome에 안정적으로 도입, 발현되었음이 확인되었다. 조직화학적 분석으로 GUS 유전자가 형질전환 식물체에서 발현됨을 밝혔다.

• 한국산림과학회지
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• 제86권4호
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• pp.407-414
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• 1997

외래 저항성 유전자, Proteinase inhibitor II가 형질전환된 3계통의 벨기에 포플러를 대상으로 딱정벌레에 대한 유전자 발현정도가 기내에서 조사되었다. 포플러 계통은 선발 유전자로서 Nos-promoter와 Neomycin phosphotransferase gene에 의하여 조절되고 곤충에 대한 저항성 유전자로서 CaMV-35S와 Pin2(Proteinase inhibitor II)에 의한 형질전환체이다. 특히, 형질전환된 포플러의 내충성 저항력을 조기검정하기 위하여, 조직배양을 응용한 새로운 방법으로서 곤충의 알을 표면 살균하여 기내의 조직배양묘와 배양하는 동시배양 방법이 이용되었다. 형질전환된 포플러의 저항성은 기내에서 유충에 의해 섭취된 잎면적, 잎 섭취에 의한 유충의 무게 증감, 유충의 성장단계 등에 의하여 조사되었다. 특히, 잎면적은 각각의 LPI(Leaf plastochron index)별로 측정되었고, 잎면적, 유충의 무게, 곤충의 성장 속도는 형질전환체와 비형질전환체 간에 큰 차이를 보였다. 기내에서 무병상태로 배양된 알들이 부화된 후, 유충의 잎 섭취도는 LPI 4와 5사이에서 가장 높았다. 본 실험의 기내 배양법은 외래유전자를 삽입한 이후에 곧바로 발현을 빠른 시간내에 조기검정 할 수 있는 새로운 방법의 개발이라 할 수 있다.

• 식물조직배양학회지
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• 제21권5호
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• pp.315-318
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• 1994

CaMV35S promoter-$\beta$-glucuronidase (GUS) 유전자와 선발 표지로서 neomycin phosphotransferase 유전자를 가진 pBI121 binary 벡터를 도입한 Agrobacterium turmfaciens LAB4404와 더덕 유식물체의 자엽 절편을 1 mg/L BA가 첨가된 MS 배지에서 48시간 동안 공동배양한 후 1 mg/L BA, 250 mg/L carbenicillin 100 mg/L kanamycin sulfate을 첨가한 고체배지에 옮겨 명조건에서 배양하였다. 배양 2주 후 절편의 절단면 부근으로부터 수많은 부정아가 형성되기 시작하였다. 이들 부정아의 GUS 활성을 조사한 결과 15%가 양성반응을 나타내었다. 배양 6주 후 절편이 형성한 수많은 부정아로부터 56.7% 빈도로 shoot이 발달하였다. 이들 shoot은 기본배지에 옮겨서 4주 경과되었을 때 대부분 발근하였으며, 재분화된 개체는 토양에 이식하였다. Southem 분석결과 GUS양성을 보인 재분화 개체의 게놈 DNA에 GUS 유전자가 삽입되었음이 확인되었다.

• 한국작물학회지
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• 제46권5호
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• pp.375-379
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• 2001

Transgenic plants from hypocotyl segments of buckwheat were produced with the Agrobacterium strain LBA4404 harboring the binary vector pBI121 containing chimeric genes of neomycin phosphotransferase II (npt II) and $\beta$-glucuronidase (gus). Two weeks after co-cultivation with Agrobacterium, most of the hypocotyl segments gradually became brown and died on the selection medium containing 100mg/$\ell$ of kanamycin. Plants regenerated from the hypocotyl explants grown on selection medium were GUS-positive in the leaf, stem and vascular tissues by histochemical assay, and varied in gus activity (440-2568 pmol, 4-MU/mg protein) by fluorimetry. The plants showing GUS activity were confirmed of containing GUS and NPT-II genes by polymerase chain reaction (PCR). Within 3 months, transgenic buckwheat plants were able to obtained from the hypocotyl segments.

• 한국생물공학회:학술대회논문집
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• 한국생물공학회 2003년도 생물공학의 동향(XIII)
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• pp.220-222
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• 2003

Legislation enacted worldwide to regulate the content of genetically modified organisms (GMOs) in crops, foods, and ingredients, reliable and sensitive methods for GMO detection have been developed. Proteins produced in GMO plants can be determined by qualitative and quantitative analyses and thus GMO designation has performed exactly. Target proteins selected in this study were neomycin phosphotransferase II (NPTII), 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase (CP4 EPSPS), cucumber mosaic virus(CMV), and phosphinothricin acetyltransferase (PAT). Analytical method employing western blotting was used for final characterization.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제14권4호
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• pp.783-788
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• 2004

Marker proteins of genetically-modified organisms (GMO) and their antibodies were prepared and characterized as major components of an analytical system. We selected two GMO markers, neomycin phosphotransferase II and 5- enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase, and produced them from E. coli employing genetic recombination technology. After purification, their structural conformation and binding affinities to the respective antibodies were characterized. The results showed that the recombinant proteins were identical with commercially obtained reference proteins. We further used them as immunogens to raise polyclonal antibodies capable of discriminating GMO containing protein from non-GMO. Well-characterized marker proteins and antibodies will be valuable as immunoreagents in constructing analytical systems such as biosensors and biochips to measure quantities of GMO.

• 식물조직배양학회지
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• 제22권2호
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• pp.95-99
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• 1995

본 연구는 이미 확립되어 있는 고려인삼의 체세포배발생을 통한 식물체 재분화와 Agrobacterium을 매개로 한 형질전환 시스템을 이용하여 항곰팡이성 인삼을 개발하고자 염기성인 강낭콩 키틴가수분해효소 유전자를 인삼으로 도입하였다. CaMV 35S promoter-강낭콩 키틴가수분해효소 유전자와 선발표지로서의 neomycin phosphotransferase II (NPT II) 유전자를 가진 pChi/748 binary 벡터를 pGA748로부터 제조하여 이를 도입한 A. tumefacience LBA4404와 인삼 접합배의 자엽절편을 1 mg/L 24-D, 0.1 mg/L kinetin이 첨가된 MS 액체배지에서 48시간 동안 공동배양한 후 동일배지에 100 mg/L kanamycine 500 mg/L carbenicillin을 첨가한 고체 배지에 옮겨 배양하였다. 배양 한달 후부터 절편의 절단면 부근으로부터 캘러스가 유도되기 시작하였으며 이어서 수많은 체세포배가 형성되었다. 이들 체세포배를 BA와 GA3가 각각 1 mg/L 첨가된 배지로 옮겨서 5주 경과되었을 때 식물체로 전환되었다. 재분화된 개체 중 선발된 8개의 식물체로부터 PCR과 이 산물의 Southern분석 결과 6개의 재분화 개체에서 강낭콩 키틴가수분해효소 유전자가 도입되었음을 확인하였다.