In Arabidopsis thaliana, the microtubule-associated protein AtMAP65-1 shows various functions on microtubule dynamics and organizations. However, it is still an open question about whether AtMAP65-1 binds to tubulin dimers and how it regulates microtubule dynamics. In present study, the tubulin-binding activity of AtMAP65-1 was investigated. Pull-down and co-sedimentation exp eriments demonstrated that AtMAP65-1 bound to tubulin dimers,at a molar ratio of 1 : 1. Cross-linking experiments showed that AtMAP65-1 bound to tubulin dimers by interacting with $\alpha$-tubulin of the tubulin heterodimer. Interfering the bundling effect of AtMAP65-1 by addition of salt and monitoring the tubulin assembly, the experiment results indicated that AtMAP65-1 promoted tubulin assembly by interacting with tubulin dimers. In addition, five truncated versions of AtMAP65-1, namely AtMAP65-1 $\Delta$N339 (amino acids 340-587); AtMAP65-1 $\Delta$N494 (amino acids 495-587); AtMAP65-1 340-494 (amino acids 340-494); AtMAP65-1 $\Delta$C495 (amino acids 1-494) and AtMAP65-1 $\Delta$C340 (amino acids 1-339), were tested for their binding activities and roles in tubulin polymerization in vitro. Four (AtMAP65-1 $\Delta$N339, $\Delta$N494, AtMAP65-1 340-494 and $\Delta$C495) from the five truncated proteins were able to co-sediment with microtubules, and three (AtMAP65-1 $\Delta$N339, $\Delta$N494 and AtMAP65-1 340-494) of them could bind to tubulin dimers in vitro. Among the three truncated proteins, AtMAP65-1 $\Delta$N339 showed the greatest activity to promote tubulin polymerization, AtMAP65-1 $\Delta$N494 exhibited almost the same activity as the full length protein in promoting tubulin assembly, and AtMAP65-1 340-494 had minor activity to promote tubulin assembly. On the contrast, AtMAP65-1 $\Delta$C495, which bound to microtubules but not to tubulin dimers, did not affect tubulin assembly. Our study suggested that AtMAP65-1 might promote tubulin assembly by binding to tubulin dimers in vivo.
Despite of importance of integrated events of nucleus and microtubule remodeling in nuclear transferred embryos with somatic cells, little information is available on this subject. In this study we compared chromatin, r-tubulin and microtubule organization in porcine oocytes following somatic cell nuclear transfer and parthenogenetically activation in order to clarify nuclear remodeling process and to demonstrate centrosome inheritance during nuclear transfer. (omitted)
We investigated the microtubule dynamics, including the inheritance of donor centrosomes and the mitotic spindle assembly occurring during the first mitosis of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos in pigs. SCNT embryos were fixed 15 min and 1 h after fusion in order to assess the inheritance pattern of the donor centrosome. The distribution and dynamic of the centrosome and microtubule during the first mitotic phase of SCNT embryos were also evaluated. The frequency of embryos evidencing $\gamma$-tubulin spots (centrosome) was 93.2% in the SCNT embryos 15 min after fusion. In the majority of the SCNT embryos (61.5%), however, no centrosome was observed 1 h after fusion. The frequency of the embryos with no or abnormal mitotic spindles 20 h after fusion was 19.6%. The $\gamma$-tubulin spots were detected near the nuclei of somatic cells regardless of cell cycle phase, whereas $\gamma$-tubulin spots in the SCNT embryos were observed only during the inter-anaphase transition. These results showed that the donor centrosome is inherited into the SCNT embryos, but failed to assemble the normal mitotic spindles during first mitotic phase in some SCNT embryos.
Lu, Li Fang;Kim, Dae Hong;Lee, Ik Hwan;Hong, Ji;Zhang, Peng;Yoon, I Na;Hwang, Jae Sam;Kim, Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.4
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pp.693-699
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2016
Clostridium difficile toxin A is known to cause deacetylation of tubulin proteins, which blocks microtubule formation and triggers barrier dysfunction in the gut. Based on our previous finding that the Clostridium difficile toxin A-dependent activation of histone deacetylase 6 (HDAC-6) is responsible for tubulin deacetylation and subsequent microtubule disassembly, we herein examined the possible effect of potassium acetate (PA; whose acetyl group prevents the binding of tubulin to HDAC-6) as a competitive/false substrate. Our results revealed that PA inhibited toxin A-induced deacetylation of tubulin and recovered toxin A-induced microtubule disassembly. In addition, PA treatment significantly decreased the production of IL-6 (a marker of inflamed tissue) in the toxin A-induced mouse enteritis model. An in vitro HDAC assay revealed that PA directly inhibited HDAC-6-mediated tubulin deacetylation, indicating that PA acted as a false substrate for HDAC-6. These results collectively indicate that PA treatment inhibits HDAC-6, thereby reducing the cytotoxicity and inflammatory responses caused by C. difficile toxin A.
Park, Hae-Chul;Sung, So-Ra;Kim, Dong-Gwan;Koo, Bon-Sung;Jeong, Byeong-Moon;Kim, Jin-Heung;Yoon, Moon-Young
Korean Journal of Microbiology
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v.45
no.2
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pp.228-231
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2009
We have purified Phytophthora capsici alpha and beta tubulin from Escherchia coli BL21(DE3). The recombinant alpha and beta tubulins were assembled into microtubule in vitro with specific conditions. The metagenome library was isolated from soil in the Mt. Yeo-Ki, Suwon, Korea and manufactured with the method mentioned in experiment contents for in vitro screening of microtubule assembly screening. FRET effect was used for microtubule assembly inhibitor screening with metagenome library. We got 2 metagenome clones from in vitro screening, and these 2 hit clones showed P. capsici growth inhibition activity on the growing pepper plants. These results suggest that new development of potent inhibitor for pepper blight disease and new approach to prevention of pepper blight disease.
The objective of this study was to elucidate the dynamics of microtubules in post-ovulatory aging in vivo and in vitro of mouse oocytes. The fresh ovulated oocytes were obtained from oviducts of superovulated female ICR mice at 16 hours after hCG injection. The post-ovulatory aged oocytes were collected at 24 and 48 hours after hCG injection from in vivo and in vitro, respectively. Immunocytochemistry was performed on ${\beta}$-tubulin and acetylated ${\alpha}$-tubulin. The microtubules were localized in the spindle assembly, which was barrel-shaped or slightly pointed at its poles and located peripherally in the fresh ovulated oocytes. The frequency of misaligned metaphase chromosomes were significantly increased in post-ovulatory aged oocytes after 48 hours of hCG injection. The spindle length and width of post-ovulatory aged oocytes were significantly different from those of fresh ovulated oocytes, respectively. The staining intensity of acetylated ${\alpha}$-tubulin showed stronger in post-ovulatory aged oocytes than that in the fresh ovulated oocytes. In the aged oocytes, the spindles had moved towards the center of the oocytes from their original peripheral position and elongated, compared with the fresh ovulated oocytes. Microtubule organizing centers were formed and observed in the cytoplasm of the aged oocytes. On the contrary, it was not observed in the fresh ovulated oocytes. The alteration of spindle formation and chromosomes alignment substantiates the poor development and the increase of disorders from the post-ovulatory aged oocytes. It might be important to fertilize on time in ovulated oocytes for the developmental competence of embryos with normal karyotypes.
Kim, Bong-Ki;Lee, Yun-Jung;Cui, Xiang-Shun;Kim, Nam-Hyung
Proceedings of the KSAR Conference
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2001.03a
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pp.41-41
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2001
Chromatin configuration and microtubule assembly were determined in porcine maturing and activated oocytes following intracytoplasmic sperm injection. Microtubule localization was confirmed using a mouse monoclonal antibody to $\alpha$-tubulin and detected using a fluorescent labeled goat anti-mouse secondary antibody. DNA was stained with propidium iodide. The image of microtubules and chromatin was captured using laser scanning confocal microscope. In germinal vesicle stage oocyte, sperm chromatin remained condensation and sperm derived microtubules were not observed at 8 to 12 h after sperm injection. At 24 h after injection, the sperm nucleus developed to the metaphase chromatin along the metaphase structure of female nucleus. In some metaphase I stage oocytes, sperm chromatin decondensed at 8 h to 12 h after injection, sperm aster was seen soon after sperm injection. At 24 h after sperm injection into metaphase I stage oocyte, male chromatin developed to the metaphase chromatin while female chromatin extruded first polar body and formed the metaphase chromatin. At 12 to 15 h after sperm injection into preactivated oocytes, condensed sperm nucleus was located in close proximity of female pronucleus. However, the condensed nucleus did not fuse with female pronucleus. In preactivated ocytes, injected sperm remained condensation, a few sperm organized small microtubular aster. Instead, maternal derived microtubules were organized near the female chromatin, which seem to move condensed male chromatin near to the female pronucleus. These results suggest that sperm nuclear decondensing activity and nucleation activity of centrosome during fertilization are cell cycle dependent. In absence of male functional centrosome, female origin centrosome takes over the role of microtubule nucleation for nuclear movement.
Chung, H. M.;Kim, N. H.;Kim, J. W.;J. M. Lim;Park, C.;J. J. Ko;K. Y. Cha;Kim, J. M.;K. S. Chung
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.24
no.2
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pp.143-154
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2000
Most eggs initiated the fertilization processes but arrested at specific stages. The stages included failure of the oocyte to exit from the meiotic metaphase-II with or without sperm penetration, failure of appropriate sperm aster formation, inability to form proper male and female pronuclei, failure of suitable pronuclear apposition, and failure to form proper number of either male or female pronuclei. Various images of defective microtubule organization and chromatin configuration during IVF and ICSI procedures were observed. We discussed the data with previous research results during normal fertilization in humans and other mammals. In conclusion, various aberrant patterns in microtubule assembly and chromatin configuration, which were assessed in the present study, could be used as criteria to improve assisted reproductive technology in clinics. However, further cellular and molecular characterization is needed to clarify these aberrant patterns of cytoskeletal assembly.
The objective of this study was to determine the microtubule assembly and chromatin configuration during the first cell cycle in bovine oocytes following injection of spermatozoon, sperm head and tail. The microtubule and chromatin configuration was imaged with fluorescent labeled monoclonal ${\alpha}$-tubulin antibody and propidium iodide under laser scanning confocal microscope. Microtubule and chromatin dynamics in bovine oocytes following intracytoplasmic sperm injection (ICSI) were not different from those observed during in vitro fertilization (IVF). Following ICSI, the microtubular aster was observed around sperm midpiece. During pronuclear formation, the sperm aster was enlarged and seen around male and female pronuclei. At mitotic metaphase, the microtubular spindle assemble astral poles and chromosomes were aligned on the spindle equator. At mitosis, asters were concentrated to each spindle pole and they filled the cytoplasm. After injection of the isolated sperm head, the microtubular aster was not seen around sperm head in any cases (0/18). Instead, microtubules were organized from the cytoplasm, which filled the whole cytoplasm during pronuclear apposition. These microtubules seem to move male and female pronuclei. These results suggest that isolated sperm head can develop into normal pronucleus in mature bovine oocytes, and competent to participate syngamy with the ootid chromatin. The functional microtubules following isolated sperm head injection in bovine oocytes appeared to be organized solely from maternal stores.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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