This study was done to determine whether specific alterations exist in hepatic microsomal function after varying periods of ischemia (IS) and reperfusion (RP) during microsomal lipid peroxidation occurs. Rats were pretreated with $\alpha$-tocopherol to inhibit lipid peroxidation or with vehicle (soybean oil). Control animals were time-matched sham-ischemic animals. Four groups of animals were studied: Group 1 (sham), group 2 (30 mins IS), group 3 (60 mins IS) and group 4 (90 mins IS). After 1, 5 or 24 hr of reperfusion, liver microsomes were isolated and cytochrome P-450s were studied. In all vehicle-treated ischemic rats, serum ALT levels peaked at 5 hr and were significantly reduced by $\alpha$-tocopherol pretreatment. Similarly, microsomal lipid peroxidation was elevated in all vehicle-treated ischemic animal groups, but this elevation was prevented by $\alpha$-tocopherol pretreatment. Cytochrome P-450 content was significantly decreased in both group 3 and group 4. In all vehicle-treated ischemic animal groups, aminopyrine N-demethylase activity was significantly decreased for the entire reperfusion period. $\alpha$-Tocopherol inhibited reductions of cytochrome P-450 content and aminopyrine N-demethylase activity at both 1 hr and 5hr of reperfusion but did not affect the reduced levels of cytochrome P-450 content and aminopyrine N-demethylase activity at 24 hr of reperfusion. Aniline p-hydroxylase activity was significantly decreased in group 4, whereas it was increased in group 3. These decreases and increases were prevented by $\alpha$-tocopherol pretreatment. Our finding suggests that abnormalities in microsomal drug metabolizing function occur during hepatic ischemia and reperfusion in vivo and this is attributed to microsomal lipid peroxidation.
Although hepatocellular dysfunction occurs during sepsis. the mechanism responsible for this remains unclear. Since Kupffer cells provide signals that regulate hepatic response in endotoxin and inflammation. the aim of this study was to investigate the role of Kupffer cells in the alterations in the hepatic microsomal drug metabolizing function during sepsis. Rats were subjected to polymicrobial sepsis by cecal ligation and puncture (CLP)followed by fluid resuscitation. (omitted)
Sepsis remains the leading cause of morbidity and mortality following trauma. Although hepatocellular dysfunction occurs during trauma and sepsis. the mechanism responsible for this remains unclear. We investigated the role of Kupffer cells in the alterations in microsomal drug metabolizing function during trauma and sepsis. Rats were subjected to trauma by femur fracture (FFx). After 72h, polymicrobial sepsis was induced by cecal ligation and puncture(CLP). (omitted)
The effect of imperatorin on hepatic microsomal mixed function oxidases (MF0) was investigated. On acute treatment, imperatorin (30 mg/kg, i.p) caused a significant reduction in activities of hepatic aminopyrine N-demethylase, hexobarbital hydroxylase and aniline hydroxylase as well as cytochrome p0450 content in rats and mice. Kinetic studies on rat liver enzymes revealed that imperatorin appeared to be a competitive inhibitor of aminopyrine N-demethylase (Ki,0.007 mM), whereas a non-competitive inhibitor of hexobarbital hydroxylase (Ki, 0.0148 mM). Imperatorin also inhibited non-competitively aniline metabolism (Ki 0.2 mM). Imperatorin binds to phenobarbital-induced cytochrome p-450 to give a typical type 1 binding sepctrum (max. 388nm, min 422 nm). Multiple administrations of imperatorin (30 mg/kg. i. p. daily for 7 days) to mice shortended markedly the duration of hexobarbital narcosis and increased activities of hepatic aminopyrine N-demethylase and hexobarbital hydroxylase and the level of cytochrome p-450 where as aniline hydroxylase activity was unaffected.
The effect of twenty two spices on liver microsomal monooxygense activity was tested as measured by alteration of hexobarbital (HB) narcosis and strychnine mortality in mice. Oral administration of seven spices for 7 consecutive days caused a significant shortening of the duration of HB-induced sleeping time. The treatment of mice with a single i. p. injection of 9 spices resulted in a significant prolongation of the sleeping time. White pepper, dill and fennel reduced the toxicity of strychnine. These results strongly indicated that some spices might affect the activity of liver microsomal drug metabolizing enzyme (DME) function.
This study examined the role of Kupffer cells in altering the hepatic secretory and microsomal function during ischemia and reperfusion (ls/Rp). Rats were subjected to 60 min of hepatic ischemia, followed by 1 and 5 h of reperfusion. Gadolinium chloride ($GdCl_{3}$, 7.5 mg/kg body weight, intravenously) was used to inactivate the Kupffer cells 1 day prior to ischemia. Is/Rp markedly increased the serum aminotransferase level and the extent of lipid peroxidation. $GdCl_{3}$ significantly attenuated these increases. Is/Rp markedly decreased the bile. flow and cholate output, and $GdCl_{3}$ restored their secretion. The cytochrome P450 content was decreased by Is/Rp. However, these decreases were not prevented by $GdCl_{3}$. The aminopyrine N-demethylase activity was decreased by Is/Rp, while the aniline p-hydroxylase activity was increased. $GdCl_{3}$ prevented the increase in the aniline p-hydroxylase activity. Overall, Is/Rp diminishes the hepatic secretory and microsomal drug-metabolizing functions, and Kupffer cells are involved in this hepatobiliary dysfunction.
The present study was done to determine the effect of trolox C, a hydrophilic analogue of vitamin E, on hepatic injury, especially the alteration in cytochrome P-450 (CYP)-dependent drug metabolism during ischemia and reperfusion (I/R). Rats were subjected to 60 min of hepatic ischemia and 5 h of reperfusion. Rats were treated intravenously with trolox C (2.5 mg/kg) or vehicle (PBS, pH 7.4), 5 min before reperfusion. Serum alanine aminotransferase and lipid peroxidation levels were markedly increased after I/R. This increase was significantly suppressed by trolox C. Cytochrome P-450 content was decreased after I/R but was restored by trolox C. There were no significant differences in ethoxyresorufin O-dealkylase (CYP 1A1) and methoxyresorufin O-dealkylase (CYP 1A2) activities among any of the experimental groups. Pentoxyresorufin O-dealkylase (CYP 2B1) activity was decreased and aniline p-hydroxylase (CYP 2E1) activity was increased after I/R. Both these changes were prevented by trolox C. Our findings suggest that trolox C reduces hepatocellular damage as indicated by abnormalities in microsomal drug-metabolizing function during I/R, and that this protection is, in part, caused by decreased lipid peroxidation.
This study was done to investigate the effect of vitamin C on hepatic biliary and microsomal function during ischemia and reperfusion. Rats were treated with vitamin C(20, 100, 400, 1600 mg/kg) or with vehicle(saline) and then subjected to 60 min no-flow hepatic ischemia in vivo. Control animals were time-matched sham ischemic animals. After 1 or 5 hr of reperfusion, bile was collected, blood was obtained from the abdominal aorta, and liver microsomes were isolated. In vehicle-treated ischemic rats, serum ALT and AST levels peaked at 5 hr and were significantly attenuated by vitamin C 20 mg/kg and 100 mg/kg treatment. Similarly, hepatic wet weight-to-dry weight ratio was decreased in the vehicle-treated ischemic group. Vitamin C 20 mg/kg and 100 mg/kg treatment minimized the increase in this ratio. Lipid peroxidation was elevated in vehicle-treated ischemic group, but this elevation was also inhibited by vitamin C 20 mg/kg and 100 mg/kg treatment. Bile flow and cholate output, but not bilirubin output, were markedly decreased by ischemia/reperfuzion. Vitamin C 20 mg/kg and 100mg/kg treatment restored the secretion but vitamin C 1600 mg/kg reduced the cholate output. Cytochrome P-450 content was decreased by ischemia/reperfusion and restored by vitamin C 20 mg/kg and 100 mg/kg treatment to the level of sham operated group but decreased by vitamin C 1600 mg/kg. Aminopyrine N-demethylase activity was decreased and aniline p-hydroxylase activity was increased by ischemia/reperfusion. The changes in the activities of aminopyrine were prevented by vitamin C 20 mg/kg and 100 mg/kg treatment, but not by 400 mg/kg and 1600 mg/kg treatment. Our findings suggest that ischemia/reperfusion diminishes hepatic secretory functions as well as microsomal drug metabolizing systems, small doses(20, 100 mg/kg) of vitamin C significantly ameliorates and large doses(400, 1600 mg/kg) of vitamin C aggravated these ischemia/reperfusion-induced changes.
The aim of this study was to investigate the effects of trauma on alterations in cytochrome P450 (CYP 450)-dependent drug metabolizing function and to determine the role of Kupffer cells in hepatocellular dysfunction. Rats underwent closed femur fracture (FFx) with associated soft-tissue injury under anesthesia, while control animals received only anesthesia. To deplete Kupffer cells in vivo, gadolinium chloride (GdCl$_3$) was injected intravenously via the tail vein at 7.5 mg/kg body wt., 1 and 2 days prior to FFx surgery. At 72 h after FFx, serum alanine aminotransferase (ALT) activity was increased, and this increase was attenuated by GdCl$_3$ pretreatment. Serum aspartate aminotransferase (AST) and lipid peroxidation levels were not changed by FFx. Hepatic microsomal CYP 450 content and aniline p-hydroxylase (CYP 2E1) activity were significantly decreased; decreases that were not prevented by GdC1$_3$. The level of CYP 2B1 activity was decreased by Kupffer cell inactivation, but not by FFx. There were no significant differences in the activities of CYP 1A1, CYP 1A2 and NADPH-CYP 450 reductase among any of the experimental groups. Our findings suggest that FFx trauma causes mild alterations of hepatic CYP 450-dependent drug metabolism, and that Kupffer cells are not essential for the initiation of such injury.
The focus of this study was to investigate the influences of enzymatic scavengers of active oxygen metabolites and phospholipase $A_2$ inhibitor on hepatic secretory and microsomal function during hepatic ischemia/reperfusion. Rats were pretreated with free radical scavengers such as superoxide dismutase (SOD), catalase, deferoxamine and phospholipase $A_2$ inhibitor such as quinacrine and then subjected to 60 min. no-flow hepatic ischemia in vivo. After 1, 5 hr of reperfusion, bile was collected, blood was obtained from the abdominal aorta, and liver microsomes were isolated. Serum aminotransferase (ALT) level was increased at 1 hr and peaked at 5 hr. The increase in ALT was significantly attenuated by SOD plus catalase, deferoxamine and quinacrine especially at 5 hr of reperfusion. The wet weight-to-dry weight ratio of the liver was significantly increased by ischemia/reperfusion. SOD and catalase treatment minimized the increase in this ratio. Hepatic lipid peroxidiltion was elevated by ischemia/reperfusion, and this elevation was inhibited by free radical scavengers and quina crine. Bile flow and cholate output, but not bilirubin output, were markedly decreased by ischemia/reperfusion and quinacrine restored the secretion. Cytochrome $P_{450}$ content was decreased by ischemia/reperfusion and restored by free radical scavengers and quinacrine to the level of that of the sham operated group. Aminopyrine N-demethylase activity was decreased and aniline p-hydroxylase was increased by ischemia/reperfusion. The changes in the activities of the two enzymes were prevented by free radical scavengers and quinacrine. Our findings suggest that ischemia/reperfusion diminishes hepatic secretory functions as well as microsomal drug metabolizing systems by increasing lipid peroxidation, and in addition to free radicals, other factors such as phospholipase $A_2$ are involved in pathogenes of hepatic dysfunction after ischemia/reperfusion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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