• 제목/요약/키워드: microinjection of spermatozoa

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정자 미세주입에 의한 소 난포란의 체외수정 (In Vitro Fertilization of Bovine Oocytes Matured In Vitro by Microinjection of Spermatozoa)

  • 김선구;곽대오;박충생;쿠란티;메틀러
    • 한국가축번식학회지
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    • 제16권3호
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    • pp.239-246
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    • 1992
  • 미성숙 나포란을 20% FCS가 첨가된 TCM-199으로써 24시간 동안 5% CO2, 8% O2의 공기 조건하에서 체외성숙시킨 다음 난자의 위란강내로 정자를 미세주입하여 체외수정을 실시하였다. 미세주입 하기전 정액을 0.75% BSA가 첨가된 Ham's F-10 배양액으로 2시간 동안 5% CO2, 8% O2의 공기 조건하에서 배양함으로써 수정능 획득을 하도록하였으며 이어 30분 동안 12mM의 dbcGMP와 10mM의 imidazol이 함유된 Ham's F-10 배양액으로 배양함으로써 첨체반응을 유도하였다. 본 실험에서 정자의 미세주입 후 제 2극체와 전핵형성이 일어난 난자의 비율은 각각 9.5, 5.4%였으며 2세포기 이후로 발달한 난자의 비율은 4.1%이었다.

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물리.화학적 처리에 의한 소 정자세포구성분의 분리 (Isolation of Bovine Spermatozoal Components by Physical or Chemical Treatments)

  • 최승철;천장혜;이상호
    • 한국가축번식학회지
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    • 제17권4호
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    • pp.339-346
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    • 1994
  • 정자의 구조와 기능을 이해하기 위해서는 정자세포구성분의 분리가 필요하다. 본 실험은 동결융해된 한우정액에 다양한 물리·화학적 처리를 하여 효과적인 정자세포구성분의 분리방법을 확립하고자 실시하였다. 물리적 분리방법으로는 vortexing 처리, 26 gauge needle 또는 strained 26 gauge needle을 1ml 주사기에 부착시킨 후 반복된 pumping, 동결보존액없이 반복된 동결융해처리등을 시행하였다. 또한, 화학적인 분리를 위해 trypsin, dithiothreitol, sodium dodecylsulfate, mercaptoethanol 등을 사용하였다. 모든 처리구중에서 가장 효과적인 정자두부와 미부의 절단을 strained 26 gauge needle이 부착된 주사기를 사용한 반복된 pumping에 의해 얻어졌다. 이러한 처리에 의해 95∼100%의 높은 정자구성분의 분리가 이루어졌다. 분리된 정자구성분의 두부표면의 보존여부를 알아보기 위해 250g/ml FITC-UEA 1 염색을 실시하였지만 특별한 두부표면변화는 관찰되지 않았다. 다른 물리적 처리방법들도 높은 정자구성분의 분리결과를 보여주었지만, strained 26 gauge needle를 사용한 방법에 비해서는 분리효율, 시간등 여러면에서 비효율적이었다. 화학적 처리에 의한 정자구성분의 분리결과는 물리적 처리에 비해 효과적이지 못했다. 분리된 정자두부와 미부를 각각 회수하기 위해 sucrose 용액을 2M, 1M, 0.5M, 0.25M 순으로 시험관에 넣은 후 1,000rpm에서 15분간 원심분리한 결과, 1M과 2M의 경계부분에 형성된 정자두부층을 얻을 수 있었다. 정자구성분의 효과적이고 간편한 분리방법이 본 실험에 의해 확립되어졌으며, 위의 방법에 의해 분리, 회수된 정자구성분은 생화학적 연구, 난자활성화기작의 이해등 다양한 응용연구의 기초자료로서 이용될 수 있을 것이다.

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Fertilization Processes in Porcine Oocytes Following Intracytoplasmic Injection of Porcine and Mouse Spermatozoa

  • Lee, Youn-Jeung;Kim, Bong-Ki;Park, Chang-Sik;Kim, Nam-Hyung
    • 한국동물번식학회:학술대회논문집
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    • 한국동물번식학회 2001년도 춘계학술발표대회
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    • pp.12-12
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    • 2001
  • To get insight into the nature of foreign mitochondria and syngamy during mammalian fertilization we compared fertilization processes in porcine oocytes following microinjection of porcine or mouse spermatozoa. Pronuclear movement, sperm mitochondria, and DNA synthesis were imaged with propidium iodide, mitotracker, and BrdU under confocal laser scanning microscope. Intracytoplasmic injection of either porcine or mouse spermatzoon activated porcine oocytes without additional parthengenetic stimulation. Foreign mitochondria in either mouse or porcine sperm midpiece were introduced into porcine oocytes following sperm injection, but rapidly disappeared from the actively developing porcine oocytes. BrdU experiment showed new DNA synthesis in porcine oocytes following injection of mouse spermatozoon or sperm head. At 24 h after injection of mouse isolated sperm head or a spermatozoon, mitoic metaphase was seen in oocyte, but they did not go to normal cell division (Table). These results suggest that pronuclear formation, foreign mitochondria disruption, DNA synthesis and syngamy formation during fertilization are not species specific processes.(Table Omitted).

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Involvement of Nitric Oxide During In Vitro Fertilization and Early Embryonic Development in Mice

  • Kim, Bo-Hyun;Kim, Chang-Hong;Jung, Kyu-Young;Jeon, Byung-Hun;Ju, Eun-Jin;Choo, Young-Kug
    • Archives of Pharmacal Research
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    • 제27권1호
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    • pp.86-93
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    • 2004
  • Nitric oxide (NO) has emerged as an important intracellular and intercellular messenger, controlling many physiological processes and participating in the fertilization process via the autocrine and paracrine mechanisms. This study investigated whether nitric oxide synthase (NOS) inhibitior (L-NAME) and L-arginine could regulate in vitro fertilization and early embryonic development in mice. Mouse epididymal spermatozoa, oocytes, and embryos were incubated in mediums of variable conditions with and without L-NAME or L-arginine (0.5, 1, 5 and 10mM). Fertilization rate and early embryonic development were significantly inhibited by treating sperms or oocytes with L-NAME (93.8% vs 66.3%,92.1% vs 60.3%), but not with L-arginine. In contrast, fertilization rate and early embryonic development were conspicuously reduced when L-NAME or L-arginine was added to the culture media for embryos. Early embryonic development was inhibited by microinjection of L-NAME into the fertilized embryosin a dose-dependent manner, but only by high concentrations of L-arginine. These results suggest that a moderate amount of NO production is essential for fertilization and early embryo development in mice.