A microbial consortium, TMC7, was enriched for the degradation of natural lignocellulosic materials under high temperature. TMC7 degraded 79.7% of rice straw during 15 days of incubation at $65^{\circ}C$. Extracellular xylanase was effectively secreted and hemicellulose was mainly degraded in the early stage (first 3 days), whereas primary decomposition of cellulose was observed as of day 3. The optimal temperature and initial pH for extracellular xylanase activity and lignocellulose degradation were $65^{\circ}C$ and between 7.0 and 9.0, respectively. Extracellular xylanase activity was maintained above 80% and 85% over a wide range of temperature ($50-75^{\circ}C$) and pH values (6.0-11.0), respectively. Clostridium likely had the largest contribution to lignocellulose conversion in TMC7 initially, and Geobacillus, Aeribacillus, and Thermoanaerobacterium might have also been involved in the later phase. These results demonstrate the potential practical application of TMC7 for lignocellulosic biomass utilization in the biotechnological industry under hot and alkaline conditions.
The purpose of this study was to compare the effect of solid-state fermentation on soybean using three microbial strains under four different fermentation times. Soybean was fermented for 12, 24, 36 or 48 hours with highly proteolytic microbes, either Bacillus amyloliquefaciens (BA), B. subtilis (BS), or B. subtilis var. natto (BN), and levels of total protein concentration, protein distribution, and antioxidant activity were analyzed. Total protein was highest in the BS 12 h group (9.21 ㎍·µL-1) and lowest in BN 48 h (6.80 ㎍·µL-1), respectively (p < 0.001). Furthermore, three microbes decomposed large molecular weight proteins as well as major allergens of soybean such as β-conglycinin, Gly m Bd 30K, and glycinin. Each treatment group showed the highest degradation rate at 48 h fermentation and among the three microbes, BS showed a relatively higher degradation rate. The radical scavenging ability, known as an indicator of antioxidant activity, showed a significant increase in all treatment groups except BA 24 h. The results from this study suggest that protein concentration, and degradation and antioxidant activity were affected by different types of microbial trains and fermentation period and that B. subtilis fermentation might be the most effective way to increase nutritional and functional properties of soybean.
Nonylphenol (NP), which is well known as an endocrine disrupter, has been detected widely in untreated sewage or waste water streams. Given the necessity of discovering an eco-friendly method of degrading this toxic organic compound, this study was conducted to isolate NP-degrading microorganisms from the aqueous environment. NP-degrading microbes were isolated through NP-containing enrichment culture. Finally, a microbial consortium, SW-3, capable of degrading NP with high efficiency, was selected from the mixture sample. The microbial consortium SW-3 was able to degrade over 99% of 100 ppm NP in the culture medium for 40 days at $25^{\circ}C$. The microbial consortium SW-3 seemed to utilize NP as a carbon source, since NP was the sole carbon source in the culture medium. In order to isolate the NP-degrading bacterium, we further conducted single colony isolation using the microbial consortium SW-3. Four strains isolated from SW-3 exhibited lower NP-degradation efficiency than that of SW-3, suggesting that NP was degraded by the co-metabolism of the microbial consortium. We suggest that the microbial consortium obtained in this study would be useful in developing an eco-friendly bioremediation technology for NP degradation.
To isolate a nonylphenol (NP)-degrading bacterium, we isolated a single colony from the NP-degrading microbial consortium SW-3, which was previously isolated from an aqueous environment. Ten colonies that exhibited different cell morphologies were isolated and the strains were named SW-3-A, -B, -C, -D, -E, -F1, -F2, -G, -H, and -I. The ability of isolates to degrade NP was evaluated by kinetic analysis by the constant of NP degradation rate ($k_1$) and the half-life time of NP degradation ($t_{1/2}$). SW-3-F1, -F2, -G, and -I strains were superior at degrading NP. The $k_1$ and $t_{1/2}$ values of the four strains were sixfold higher and one-sixth lower, respectively, than those of the consortium strain. Additionally, SW-3-F1, -G, and -I strains were tested for their ability to degrade NP during coculture. NP degradation by coculture with a combination of all three strains was inferior to that of culture conducted with single isolates, suggesting that the three strains are antagonistic toward each other during NP degradation.
Whole lupinus albus seeds were pressure toasted at temperatures of 100, 118 and $136^{\circ}C$ for 3, 7, 15 and 30 min to study rumen degradation and post-rumen digestion and to determine optimal heating conditions for the Dutch dairy feed industry. In sacco nylon bag and mobile bag techniques were employed for rumen and intestine incubations to determine ruminal degradation characteristics and intestinal digestion of crude protein (CP) in 4 lactation rumen cannulated and 4 lactating intestinal cannulated Dutch dairy cows fed 47% hay and 53% concentrate according to Dutch dairy requirements. Measured rumen degradation characteristics were soluble fraction (S), undegradable fraction (U), potentially degradable fraction (D), lag time (T0) and rate of degradation (Kd) of insoluble but degradable fraction. Percentage bypass feed protein (BCP), ruminal microbial protein synthesized based on available nitrogen (N_MP) and that based on available energy (E_MP), true protein supplied to the small intestine (TPSI), truly absorbed BCP (ABCP), absorbed microbial protein (AVP) in the small intestine, endogenous protein losses in the digestion (ENDP), true digested protein in the small intestine (TAP or DVE in Dutch) and degraded protein balance (PDB or OEB in Dutch) were totally evaluated using the new Dutch DVE/OEB System. Pressure toasting decreased (p<0.001) rumen degradability of CP. It reduced S (p<0.05) and Kd (p=0.06), increased D (p<0.05) and U (p<0.01) but did not alter T0 (p>0.05), thus resulting in dramatically increased BCP (p<0.001) with increasing time and temperature from 73.7 (raw) up to 182.5 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). Although rumen microbial protein synthesized based on available energy (E_MP) was reduced, true protein (microbial and bypass feed protein) supplied to the small intestine (TPSI) was increased (p<0.001) from 153.1 (raw) to 247.6 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). Due to digestibility of BCP in the intestine not changing (p>0.05) average 87.8%, the absorbed BCP increased (p<0.001) from 62.3 (raw) to 153.7 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). Therefore DVE value of true digested protein in the small intestine was significantly increased (p<0.001) from 118.9 (raw) to 197.0 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$) and OEB value of degraded protein balance was significantly reduced (p<0.001) from 147.2 (raw) to 63.1 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). It was concluded that pressure toasting was effective in shifting degradation of CP of lupinus albus from the rumen to small intestine without changing intestinal digestion. Further studies are required on the degradation and digestion of individual amino acids and on the damaging effects of processing on amino acids, especially the first limiting amino acids.
In order to obtain acetaminophen, a popular analgesic-antipyretic, though microbial p-hydroxylation and N-acetylation of aniline, various Streptomyces strains were screened. Aniline N-acetylation activity was rather ubiquitous but-hydroxylation activity was selective. Microbial conversion pathway of aniline to acetaminophen was considered to be through N-acetylation and p-hydroxylation or vice versa. However, depending on species used, o-hydroxylation and its degradation activity (S. fradiae) and acetaminophen degradation activity (S. coelicolar) were also detected. Among the screened Streptomyces strains, S fradiae NRRL 2702 showed the highest acetanilide p-hydroxylation activity (203% conversion rate). Furthermore, in S. fradiae carbon source and its concentration, phosphate ion concentration and pH of growth medium were found to play the crucial roles in p-hydroxylation activity. Through the proper combination of factors mentioned above, the ten times more activity (26-30% conversion rate) was attained.
Proceedings of the Korean Society of Soil and Groundwater Environment Conference
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1999.10a
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pp.19-22
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1999
A microbial consortium derived from a gasoline-contaminated sites was enriched on toluene in 100-mL serum bottle and was found to degrade benzene(B), toluene(T), ethylbenzene(EB), and xylenes(X). Studies conducted to determine the temperature effects and BTEX concentration on BTEX degradation. The results indicated that lowering temperature significantly decreased BTEX degradation rates and varing the BTEX concentration also changed substrate degradation patterns.
Shifts in the activity and diversity of microbes involved in aliphatic and aromatic hydrocarbon degradation in contaminated soil were investigated. Subsurface soil was collected from a gas station that had been abandoned since 1995 owing to ground subsidence. The total petroleum hydrocarbon content of the sample was approximately 2,100 mg/kg, and that of the soil below a gas pump was over 23,000 mg/kg. Enrichment cultures were grown in mineral medium that contained hexadecane (H) or naphthalene (N) at a concentration of 200 mg/l. In the Henrichment culture, a real-time PCR assay revealed that the 16S rRNA gene copy number increased from $1.2{\times}10^5$to $8.6{\times}10^6$with no lag phase, representing an approximately 70-fold increase. In the N-enrichment culture, the 16S rRNA copy number increased about 13-fold after 48 h, from $6.3{\times}10^4$to $8.3{\times}10^5$. Microbial communities in the enrichment cultures were studied by denaturing gradient gel electrophoresis and by analysis of 16S rRNA gene libraries. Before the addition of hydrocarbons, the gas station soil contained primarily Alpha- and Gammaproteobacteria. During growth in the H-enrichment culture, the contribution of Bacteriodetes to the microbial community increased significantly. On the other hand, during N-enrichment, the Betaproteobacteria population increased conspicuously. These results suggest that specific phylotypes of bacteria were associated with the degradation of each hydrocarbon.
The degradation of phenanthrene, a model PAH compound, by microorganisms either in the mixed culture or individual strain, isolated from oil-contaminated soil in oil refmery vicinity sites, was examined. The effects of pH, temperature, initial concentration of phenanthrene, and the addition of carbon sources on biodegradation potential were also investigated. Results showed that soil samples collected from four oil refinery sites in Korea had different degrees of PAH contamination and different indigenous phenanthrene-degrading microorganisms. The optimal conditions for phenanthrene biodegradation were determined to be 30$^{circ}C$ and pH 7.0. A significantly positive relationship was observed between the microbial growth and the rate of phenanthrene degradation. However, the phenanthrene biodegradation capability of the mixed culture was not related to the degree of PAH contamination in soil. In low phenanthrene concentration, the growth and biodegradation rates of the mixed cultures did not increase over those of the individual strain, especially IC10. High concentration of phenanthrene inhibited the growth of microbial strains and biodegradation of phenanthrene, but was less inhibitory on the mixed culture. Finally, when non-ionic surfactants such as Brij 30 and Brij 35 were present at the level above critical micelle concentrations (CMCs), phenanthrene degradation was completely inhibited and delayed by the addition of Triton X100 and Triton N101.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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