Protein methylase II (S-adenosyl-L-methionine:protein carboxyl-O-methyltransferase; EC 2.1.1.24., PM II) was purified from chicken pancreas by subcellular fractionation, DEAE-cellulose chromatography, QAE-Sephadex A-50 chromatography, Sephadex G-75 chromatography, and Sephadex G-75 rechromatography. The purified PM II gave a single band upon polyarcrylamide gel electrophoresis both in the presence of SDS and in Tris glycine buffer without SDS. The pI value of purified PM II was identified as 5.7 on isoelectric focusing gel. Properties and activities of PM II were studied and the following results were obtained. 1) PM II from chicken pancreas was purified approximately 221-fold with a yield of 1.3%. 2) The purified PM II appear constituted of a single polypeptide chain of a molecular weight 46,800 daltons. 3) Hemoglobin exhibited the highest of methyl-accepting activity among the substrates tested. 4) The purified PM II has a $K_m$ of $4.67{\times}10^{-6}M$ and a $V_{max}$ of 37.5 pmoles of $methyl-^{14}C/min./mg$ enzyme for $SAM^{-14}CH_3$ as methyl donor in the presence of histone type II-As. 5) It is found that S-adenosyl-L-homocysteine is a competitive inhibitor for PM II with $K_i$ value of $3.23{\times}10^{-5}M$.
Protein methylase II (S-adenosyl-L-methionine : protein O-methyl-transferase, EC 2.1.1.24; PM II) was purified approximately 1250-fold from porcine testis by fractional precipitation and DEAE-cellulose chromatography, followed by gel filtration on a Sephadex G-75 column and HPLC on a Protein Pak 125 column. The molecular weight of the enzyme was estimated to be 33,000 daltons by SDS-PAGE, which agreed with the value determined by gel filtration. Isoelectric focusing of purified PM II showed a single protein species with an isoelectric point of 6.2. The optimum pH for the reaction was 6.0. The $K_m$ value of the enzyme was $1{\times}10^{-5}M$ with a $V_{max}$ value of 769 pmol/min/mg of enzyme. S-adenosyl-L-homocysteine is a competitive inhibitor of PM II with a $K_i$ value of $1.38{\times}10^{-6}M$.
We established an efficient transformation method for thermophile Geobacillus kaustophilus HTA426 using conjugative transfer from Escherichia coli of host-mimicking plasmids that imitate DNA methylation of strain HTA426 to circumvent its DNA restriction barriers. Two conjugative plasmids, pSTE33T and pUCG18T, capable of shuttling between E. coli and Geobacillus spp., were constructed. The plasmids were first introduced into E. coli BR408, which expressed one inherent DNA methylase gene (dam) and two heterologous methylase genes from strain HTA426 (GK1380-GK1381 and GK0343-GK0344). The plasmids were then directly transferred from E. coli cells to strain HTA426 by conjugative transfer using pUB307 or pRK2013 as a helper plasmid. pUCG18T was introduced very efficiently (transfer efficiency, $10^{-5}-10^{-3}\;recipient^{-1}$). pSTE33T showed lower efficiency ($10^{-7}-10^{-6}\;recipient^{-1}$) but had a high copy number and high segregational stability. Methylase genes in the donor substantially affected the transfer efficiency, demonstrating that the host-mimicking strategy contributes to efficient transformation. The transformation method, along with the two distinguishing plasmids, increases the potential of G. kaustophilus HTA426 as a thermophilic host to be used in various applications and as a model for biological studies of this genus. Our results also demonstrate that conjugative transfer is a promising approach for introducing exogenous DNA into thermophiles.
We purified a protein carboxyl O-methyltransferase (protein methylase II) from porcine spleen to homogeneity. The molecular weight of the porcine spleen protein methylase II (ps-PM II) was estimated to be 27,500 daltons on SDS-PAGE. Amino acid sequence of N-terminal 28 residues for ps-PM II was identified. Amino-terminal three amino acid residues of ps-PM II were deleted when compared to those of other protein carboxyl methytransferase. S-Adenosyl-L-homocysteine competitively inhibits ps-PM II with a K, value of $1.63{\times}10^{-7}M$. Myelin basic protein exhibited the highest methyl-accepting capacity among the proteins tested.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1993.04a
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pp.167-167
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1993
신물질의 면역독성 평가방법을 체계화하고 독성기작을 규명하고저 기존 면역독성 유발물질을 대상으로 in vivo 및 in vitro 실험을 수행하였다. 먼저 비장세포-간세포 공동배양 시스템을 대사를 요구하는 물질의 면역독성 평가에 in vitro system으로 사용하고저 DMN을 대상으로 공동배양 조건 및 배지에 대한 연구를 수행하였다. 비장세포원으로 BALB/c 마우스를 사용하였고, 간세포원으로 Spraque-Dawley 랫드를 사용하였다. DMN은 홀몬이 첨가된 배지에서 항체 형성반응을 크게 저하시켰으나 배지의 종류에 따른 DMW의 대사에는 큰 영향이 없었다. 또한 procarcinogen인 DMBA에 의한 면역독성은 DMBA의 대사물에 의해 유도되며 DNA가 primary target 임을 규명하였으며, 2-acetylaminofluorene (AAE)에 의한 면역 억제작용의 기작에서 인터루킨의 영향에 대해 연구하였다. Protein methylase inhibitor인 SF와 SIBA웨 면역억제 작용을 연구한 결과 lymphoproliferative response에서 protein methylase 가 직접 또는 간접적으로 관여함이 입증되었다.
We have examined the chromatin structure of the HMRE/HSP82 and HMRa/HSP82 allels using three complementary approaches : DNase I chromating footprinting, micrococcal nuclease (MNase) nucleosome-protected ladder assay, and an in vivo E. coli dam methylase accessibility assay. The footprinting results indicate that the promoter and silencer sequences are assembled into nucleoprotein complexes which exhibit no detectable change in structure, despite a 70-fold range in expression levels. In addition, the promoter region of the HMRa/HSP82 allele is cleaved randomly by MNase in all cases, indicating the absence of anonical nucleosomes over this region irrespective of SIR4 or heat-shock. Finally, no discernible difference in the accessibility of the HMRE/HSP82 locus to dam methylase in SIR4 vs. sir4 cells was seenm which again suggests that the chromatin structure of HMRE/HSP82 allele is identical regardless of SIR4. Altogether, our results indicate that in contrast to other observations of the silent mating-type loci, no discernible structural alteration is detected at either HMR/HSP82 allele regardless of SIR genetic background or transcriptional state of the gene.
The synthesis and methylation in vivo of myleline basic protein(MBP) during the mouse brain devlopment was found to be the highest in youngest brain and declined progressively in mature brains. The relative rate of protein synthesis and methylation was a maximal ration in the youngest brain, This high ratio was wdll correlated with the higher protein methylase I (PM I) activity in younger brains. The jimpy mouse is the most severely affected dysmyelinating mutant and is characterized by failure to incorporate MBP into myelin. sheath. The MBP-specific PM I activity in 15-, 18-, and 21-days old hemizygous jimpy mice(jp/y)brains decreased by 20, 50 and 75%, respectively. Myelin fraction with different degrees of compaction were isolated from bovine brain, the most compact myelin fraction exhibited higher methylaccepting activity than the less compact dense fractions.
A 245 bp segment of E. coli chromosomal replication origin, oriC, contains 11 repeats of the GATC sequence in which adenine is methylated by Dam methylase. Newly replicated oriC is hemimethylated. The parental strand of the newly replicated oriC is methylated, but the nascent strand is not yet methylated until methylated by Dam methylase. The hemimethylated oriC plays an important role in the regulation of chromosomal replication. Activity in the seqA mutant was identified to bind preferentially to hemimethylated DNA, but not to fully-methylated DNA. This activity may participate in the sequestration of initiation of chromosomal replication.
Among the many protein modifications methylation is being investigated actively with regard to bacterial chemotaxis, gene regulation, muscle contraction, cytochrome c methylation, and the synthesis of the acyl transporter, carnitine. In this study the activities of protein methylase I, II, and III in pancreatic tissues of rat, mouse, and guinea pig were examined. Furthermore, the effect of cholinergic agents on the activity of protein methylases in pancreatic fragment of guinea pig was also examined in order to test the relationship between protein methylation and pancreatic secretion. The results are as follows. 1) The activities of protein methylases were generally high in pancreatic tissues of guinea pig and mouse but low in the tissue of rat. 2) The cholinergic stimulants, acetylcholine and carbachol at a concentration of $10^{-5}M$ decreased the activities of protein methylase I, II, and III compared with unstimulated control. 3) The inhibitory effect of the cholinergic stimulant on the activities of protein methylases was not blocked by atropine at a concentration of $10^{-5}M$.
It is reasonably well known that there is a relationship between myelin formation and methylation of myelin basic protein in nerve cells. One of the suggestions is that arginine methylation of myelin basic protein could be of aid in the conjugation of myelin protein with the nonpolar lipid to form myelin. Abnormality in methylation of myclin basic protein might induce the neurological diseases in experimental animals as well as in human being. In the biological system, the methylation reaction is catalyzed by protein methaylse I using S-adenosyl-L-methionine as methyl donor. In this study, we examined the changes of S-adenosyl-L-methionine concentration and protein methylase I activity in developing rat brain tissues. The results are sumraerized as followings: (1) In brain tissues of fetus rat, the concentration of S-adenosyl-L-methionine was gradually decreased until to birth. However, the concentration in brain tissues of infant rat was suddenly increased at 7th day(just before myelination occur) birth. (2) Protein methylase I activity was decreased until to birth in brain of fetus rat and increased temporally just after birth, However, the enzyme activity showed no changes around 7th day after birth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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