Although Mycoplasma pneumoniae pneumonia (MPP) has been generally susceptible to macrolides, the emergence of macrolide-resistant MPP (MRMP) has made its treatment challenging. MRMP rapidly spread after the 2000s, especially in East Asia. MRMP is more common in children and adolescents than in adults, which is likely related to the frequent use of macrolides for treating M. pneumoniae infections in children. MRMP is unlikely to be related to clinical, laboratory, or radiological severity, although it likely prolongs the persistence of symptoms and the length of hospital stay. Thereby, it causes an increased burden of the disease and poor quality of life for the patient as well as a societal socioeconomic burden. To date, the only alternative treatments for MRMP are secondary antimicrobials such as tetracyclines (TCs) or fluoroquinolones (FQs) or systemic corticosteroids; however, the former are contraindicated in children because of concerns about potential adverse events (i.e., tooth discoloration or tendinopathy). A few guidelines recommended TCs or FQs as the second-line drug of choice for treating MRMP. However, there have been no evidence-based guidelines. Furthermore, safety issues have not yet been resolved. Therefore, this article aimed to review the benefits and risks of therapeutic alternatives for treating MRMP in children and review the recommendations of international or regional guidelines and specific considerations for their practical application.
Mazloumi, Mohammad Javad;Akbari, Reza;Yousefi, Saber
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.49
no.3
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pp.449-457
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2021
The aim of the present study was to survey the frequency of inducible and constitutive phenotypes and inducible cross-resistant genes by regulating the methylation of 23S rRNA (ermA, ermB, and ermC) and macrolide efflux-related msrA gene in Staphylococcus aureus and S. epidermidis strains. A total of 172 bacterial isolates (identified based on standard tests), were examined in this study. Antibiotic susceptibility was determined by the disk diffusion method, and all isolates were evaluated with respect to inducible and constitutive phenotypes. The presence of ermA, ermB, ermC, and msrA genes was investigated by a PCR assay. The constitutive resistance phenotypes showed a higher distribution among the isolates. R phenotype was detected more among S. epidermidis isolates (46.25%). ermB, ermC, and msrA genes were detected more in methicillin-resistant S. aureus (MRSA) and methicillin-resistant S. epidermidis (MRSE) isolates that had R and HD phenotypes (>77% strains). The ermA gene had the lowest frequency among MRSA, MRSE, MSSA, and MSSE strains (<14% isolates). Distribution of inducible resistance genes in MRSA and MRSE strains, and possibly other species, leads to increased constitutive resistance to erythromycin, clindamycin, and other similar antibiotics. Therefore, it can be challenging to treat infections caused by these resistant strains.
Sohn Seung Ghyu;Lee Jong Hwa;Lee Jung Hun;Lee Sang Hee
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.177-182
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2005
H. pylori strains were isolated from antral biopsies taken during upper endoscopy in 114 dyspeptic patients with no previous therapy against H. pylori. Rapid urease test, PCR amplification of SSA and cagA gene for H. pylori detection, and Western blot for CagA expression detection were performed. H. pylori infected patients were treated with omeprazole, clarithromycin (a macrolide), and amoxicillin. At 6 weeks after the discontinuation of therapy, the bacterial eradication rate was determined by endoscopy. The resistance rate to clarithromycin and amoxicillin was $20.2\%$ and $0.0\%$, respectively. The clarithromycin resistance was mainly caused by the A2142G mutation in the 23S rRNA gene of H. pylori. MICs of clarithromycin for the A2142G mutant isolates were significantly higher than MICs for the A2143G mutant isolates. H. pylori eradication was obtained in all patients with clarithromycin-susceptible isolates but not in patients with clarithromycin-resistant isolates (P = 0.0001). These results did not appear to be biased by any differences in CagA expression. The resistance of H. pylori to clarithromycin included in the therapeutic regimens is the most important reason for treatment failure. H. pylori antimicrobial susceptibility testing of the gastric biopsy culture should be performed before choosing the first triple therapy in infected patients and the increase in prevalence of clarithromycin resistance in Korea was problematic.
ErmSF is one of the four antibiotic resistance factor proteins expressed by Streptomyces fradiae, antibiotic tylosin producer, which renders $MLS_B$ (macrolide-lincosamide-streptogramin B) antibiotic resistance through dimethylating A2058 of 23S rRNA, thereby reducing the affinity of antibiotic to ribosome. Unlike other Erm proteins, ErmSF harbors long N-terminal end region. To investigate its role in enzyme activity, mutant ErmSF deleted of 1-38 amino acids was overexpressed and activity in vivo and in vitro was observed. In vitro enzymatic assay showed that mutant protein exhibited reduced activity by 20% compared to the wild type enzyme. Due to the reduced activity of the mutant protein, cells expressing mutant protein showed weaker resistance to erythromycin than cells with wild type enzyme. Presumably, the decrease in enzyme activity was caused by the hindrance in substrate binding and (or) product release, not by defect in the methyl group transfer occurred in active site.
ErmSF is one of the Erm family proteins which catalyze S-adenosyl-$_L$-methionine dependent modification of a specific adenine residue (A2058, E. coli numbering) in bacterial 23S rRNA, thereby conferring resistance to clinically important macrolide, lincosamide and streptogramin B ($MLS_B$) antibiotics. $^{222}FXPXPXVXS^{230}$ (ErmSF numbering) sequence appears to be a consensus sequence among the Erm family. This sequence was supposed to be involved in direct interaction with the target adenine from the structural studies of Erm protein ErmC'. But in DNA methyltarnsferase M. Taq I, this interaction have been identified biochemically and from the complex structure with substrate. Arginine 223 and 227 in this sequence are not conserved among Erm proteins, but because of the basic nature of residues, it was expected to interact with RNA substrates. Two amino acid residues were replaced with Ala by site-directed mutagenesis. Two mutant proteins still maintained its activity in vivo and resistant to the antibiotic erythromycin. Compared to the wild-type ErmSF, R223A and R227A proteins retained about 50% and 88% of activity in vitro, respectively. Even though those arginine residues are not essential in the catalytic step, with their positive charge they may play an important role for RNA binding.
Forty nine clinical isolates of S. aureus showing resistance to erythromycin(EM) were selected from 83 strains isolated recently in Korea. Fourteen strains of S. aureus showing inducible resistance to MLS antibiotics were selected by disc agar diffusion method. Colony hydridization was executed using two MLS inducible resistance genes, ermA and ermC, identified previously from S. aureus as probes. S. aureus 375 and S. aureus 507 whose genes were not homologous to those probes were finally selected. It was confirmed that the resistance genes of S. aureus 375 and S. aureus 507 had no homology with those probes in southern hybridization test using ermA, ermC and ermAM as probes. It was determined that S. aureus 375 had a plasmid whose size was about 35 kb. To know if the plasmid may have the genes related to inducible resistance to MLS antibiotics, it was attempted to transform Bacillus subtillis BR151 and S. aureus RN4220 with the plasmid isolated from S. aureus 375. It was shown that the gene related to inducible resistance to MLS antibiotics did not exist in this plasmid. These results indicate that two clinical isolates of S. aureus showing inducible resistance to MLS antibiotics have novel genes that have no homology with MLS resistance genes identified so far. It is assumed that these genes may exist in chromosomal DNA.
A study on livestock environment improving agents was conducted; top two brands (A and B) in the market, bottom two brands (E and F) based on market shares and two newly developed agents (C and D) were measured for viable count and tested for resistance towards antibiotics prohibited against livestock feeds. Test results revealed that the measured viable count of agents A and B matched those on the labels were identical; however agent E lacked information on viable counts nor the intended usage, while the measured viable count of agent F was less than the label-stated count. No correlation was found between the antibiotic-resistance test and market share, and most of the agents excluding B were found to display resistance case of Lincosimides such as Lincomycine and Clindmycin, resistant bacteria were found, with the except of agent B. Amoxicillin, Ampicillin and Penillin (type-Penecillins) and Erythromycin (type-Macrolide) were shown to contain resistant bacteria, with the except of agents Band E; the same for Norploxacin (type-Quinoline) and Neomycin antibiotics. Aminoglycosides such as Gentamycin and Streptomycin contained resistant bacteria, excluding agent B. Oxytetracyclin (type-Tetracycline), which is banned for use as resistant bacteria showed the highest sensitivity among the 12 antibiotics, revealed positive results in the test for resistant bacteria; again excluding of agents Band E. These results reveal that many agents contained resistant bacteria despite the fact that they were prohibited; this calls for a more accurate display of the facts and specifications, systematic distributions and strict verification processes of environment improving agents.
ERM proteins transfer the methyl group to $A_{2058}$ in 23S rRNA to confer the resistance to MLS (macrolide-lincosamide-streptogramin B) antibiotics on microorganism ranging from antibiotic producers to pathogens. To define the functional role of peptide segment encompassing amino acid residues 1 to 25 in NTER (N-terminal end region) of ErmSF, one of the ERM proteins, DNA fragment encoding mutant protein deprived of that peptide was cloned and overexpressed in E. coli to obtain a purified soluble form protein to the apparent homogeneity in the yield of 12.65 mg per liter of culture. The in vitro activity of mutant protein was found to be 85% compared to wild type ErmSF, suggesting that this peptide interact with substrate to affect the enzyme activity. This diminished activity of mutant protein caused the delayed expression of antibiotic resistance in vivo, that at fIrst cells expressing mutant protein showed the retarded growth due to the antibiotic action but with time cells inhibited by antibiotic gradually recovered the viability to exert the resistance to the same extent as those with wild type protein.
The emergence of antibiotic-resistant pathogens is a Serious clinical problem in the treatment of infectious diseases that increase mortality, morbidity, hospitalization length, and the cost of healthcare. In particular, $Streptococcus$$pneumoniae$ is a major etiologic pathogen of pneumonia, sinusitis, otitis media, and meningitis. As the definition of penicillin resistance to $S.$$pneumoniae$ was recently changed, macrolide-resistant $S.$$pneumoniae$ is a major resistant pathogen in the community. Infections caused by antibiotic-resistant strains are associated with incorrect use of antibiotics and critical clinical outcomes. For the appropriate use of antibiotics to treat infections, physicians always should have up-to-date information on the current epidemiologic status of antibiotic resistance for common pathogens and their susceptibility to antimicrobials. Appropriate selection of antimicrobials, strict control of infection, vaccination, and development of a feasible national policy of infection control are important strategies for the control of antimicrobial resistance. This review article focuses on the current status of antibiotic-resistant $S.$$pneumoniae$ in community-acquired pneumonia in Korea.
Oh, Sang-Ik;Kim, Jong Wan;Kim, Jongho;So, Byungjae;Kim, Bumseok;Kim, Ha-Young
Journal of Veterinary Science
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v.21
no.4
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pp.57.1-57.11
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2020
Background: Streptococcus dysgalactiae subspecies equisimilis (SDSE) acts as an etiological agent for lameness, neurological signs, and high mortality in pigs. Despite its importance in pig industries and zoonotic potential, little is known about the effects of this pathogen. Objectives: This study aimed to determine the molecular characteristics and antimicrobial resistance of SDSE strains isolated from diseased pigs. Methods: A total 11 SDSE isolates were obtained from diseased pigs. Bacterial identification, PCR for virulence genes, emm typing, and antimicrobial resistance genes, multilocus sequence typing, and antimicrobial susceptibility test were performed. Results: Nine isolates were from piglets, and 8 showed lameness, sudden death, or neurological signs. The isolates were PCR-positive for sla (100%), sagA (100%), and scpA (45.5%), and only 1 isolate amplified the emm gene (stL2764). Eight different sequence types were detected, categorized into 2 clonal complexes and 4 singletons. All the isolates in this study were included in a small cluster, which also contained other strains derived from humans and horses. The minimum inhibitory concentrations for the tested beta-lactams were low, while those for macrolides, tetracyclines, and fluoroquinolones were relatively high. PCR analysis of the macrolide and tetracycline resistance genes demonstrated that the isolates carried erm(B) (18.2%, n = 2), mef(A/E) (9.1%, n = 1), tet(M) (18.2%, n = 2), and tet(O) (90.2%, n = 10). Two isolates presented a mutation in parC, which is associated with fluoroquinolone resistance. Conclusion: This study provided insight into swine-derived SDSE, as it is related to veterinary medicine, and elucidated its zoonotic potential, in the context of molecular epidemiology and antimicrobial resistance in public health.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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