Objective : The brain is dependent on glucose as an energy source. Intricate homeostatic mechanisms have been implicated in maintaining the blood glucose concentration in the brain. The aim of this study is to find the way to identify the metabolic proteins regulating the glucose in rat hypothalamus. Methods : In this study, we analysed the secretome from rat hypothalamus in vivo. We introduced 500 nM of insulin into the rat hypothalamus. The chromatographic patterns of the secretome were identified, after which Mass Spectrometry-Mass Spectrometry (MS-MS) analysis was performed. Results : In Liquid Chromatography-Mass Spectrometry (LC-MS) analysis, 60 proteins were identified in the secretome. Among them, 8 novel proteins were unveiled and were associated with the energy metabolism of insulin signaling in mitochondria of rat hypothalamic neuron. Nineteen other proteins have unknown functions. These ligands were confirmed to be secreting from the rat hypothalmus on insulin signaling by western blotting. Conclusion : The hypothalamus is the master endocrine gland responsible for the regulation of various physiological and metabolic processes. Proteomics using LC-MS analysis offer a efficient means for generating a comprehensive analysis of hypothalamic protein expression by insulin signaling.
The liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS)-based metabolomic and lipidomic methodology has great sensitivity and can describe the fingerprint of metabolites and lipids in pork and beef. This approach is commonly used to identify and characterize small molecules such as metabolites and lipids, in meat products with high accuracy. Since the metabolites and lipids can be used as markers for many properties of a food, they can provide further evidence of the foods authenticity claim. Chromatography coupled to mass spectrometry is used to separate lipids and metabolites from meat samples. The research data usually is compared to lipid and metabolite databases and evaluated using multivariate statistics. LC-MS instruments directly connected to the metabolite and lipid databases software can be used to assess the authenticity of meat products. LC-MS has good selectivity and sensitivity for metabolomic and lipidomic analysis. This review highlighted the combination of metabolomics and lipidomics can be used as a reference for analyzing authentication meat products.
Androgenic anabolic steroids (AASs) are synthetic derivatives of testosterone with a common structure containing cyclopentanoperhydrophenanthrene nucleus. Their use enhances the muscle building capacity and is beneficial during performance. The AASs are one of the most abused group of substances in horse doping. Liquid chromatography tandem mass spectrometry ($LC/MS^n$) has been successfully applied to the detection of anabolic steroids in biological samples. However, the saturated hydroxysteroids viz: nandrolone, $5{\alpha}-estrane-3{\beta}$, $17{\alpha}-diol$ exhibit lower detection responses in electrospray ionisation (ESI) because of their poor ionisation efficiency. To overcome this limitation pre-column chemical derivatization has been introduced to enhance their detection responses in $LC-ESI-MS^n$ analysis. The aim of present study was to develop a sensitive method for identification and confirmation of nandrolone and its metabolite in horse urine incorporating pre-column derivatization using picolinic acid. The method consists of extraction of targeted steroid conjugates by solid phase extraction (SPE). The eluted steroid conjugates were hydrolysed by methanolysis and free steroids were recovered with liquid-liquid extraction. The resulting steroids were derivatized to form picolinoyl esters and identification was done using LC-ESI-MS/MS in positive ionization mode. The picolinated steroid adduct enhanced the detection levels in comparison to underivatized steroids.
A liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS) system was used to identify and distinguish oligostilbene diastereoisomers. A polyphenolic extract from Neobalanocarpus heimii known to be rich in oligostilbenes of various degrees of condensation was used as test material. Fourteen oligostilbenes were isolated from this extract on a fully automated semi-preparative HPLC system. Out of these, two pairs of dimers, one pair of trimers, two pairs of tetramers and a group of four tetramers with similar skeleton were identified as diastereoisomers. Their structures and configurations were established by spectroscopic methods. All isolated compounds were subjected to an LC-MS/MS to study their fragmentation patterns. The experiments were performed on a liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS) with electrospray-ionization (ESI) interface in positive mode. MS/MS spectra of each pure compound were recorded by direct infusion in identical conditions and their product ion spectra were analysed. Some subtle yet significant differences were observed between the spectra of oligostilbenes from the various diastereoisomeric series.
This study aims to validate a fast method of simultaneous analysis of 365 LCamenable and 142 GC-amenable pesticides in hen eggs by liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) and gas chromatography-tandem mass spectrometry (GC-MS/MS), respectively, operating in multiple reaction monitoring (MRM) acquisition modes. The sample preparation was based on quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe (QuEChERS) extraction. Key method performance parameters investigated were specificity, linearity, limit of quantification (LOQ), accuracy, precision and measurement uncertainty. The method was validated at two spiking levels (10 and 50 ㎍/kg), and good recoveries (70%-120%) and relative standard deviations (RSDs) (≤20) were achieved for 92.9% of LC-amenable and 86.6% of GC-amenable pesticide residues. The LOQs were ≤10 ㎍/kg for 94.2% of LC-amenable and 92.3% of GC-amenable pesticides. The validated method was further applied to 100 egg samples from caged hens, and none of the pesticides was quantified.
Younah Kim;Hyoje Jo;Yelim Lee;Soo Yeon Kang;Sangkyu Lee
Mass Spectrometry Letters
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제14권4호
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pp.141-146
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2023
Liraglutide is a medication prescribed for the management of type 2 diabetes and chronic obesity. A simple, sensitive, and selective liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method was developed and validated for the quantitative analysis of liraglutide in rat plasma. After a simple protein precipitation step, liraglutide was chromatographically separated using the ACQUITY Premier Peptide BEH C18 Column with mobile phases comprising 50% acetonitrile and 50% methanol, and water with 0.3% FA. Positive ion electrospray ionization in multiple reaction monitoring mode was used to achieve detection. Good linearity was observed in the 5-600 ng/mL concentration range (R2 > 0.99). Liraglutide had intra- and inter-day precision values of 2.13%-9.86% and 4.14%-8.36%, respectively. The accuracy ranged from -2.36% to 2.58%. The recovery and matrix effect were within acceptable limits. This selective LC-MS/MS method was used to study the pharmacokinetic properties of liraglutide after subcutaneous administration in rats.
비료제품에는 의도적 혹은 비의도적으로 농약으로 등록된 indole-3-acetic acid (IAA) 및 indole-3-butyric acid (IBA)성분에 대한 잔류 가능성이 꾸준히 제기되고 있으나, 생장조정제가 아닌 비료제품에서 mg/L 수준의 옥신류 잔류분석법이 마련되어 있지 않았다. 따라서, 본 연구에서는 생체시료에 미량 잔류하는 IAA 및 IBA 분석에 사용되어 온 liquid chromatography-mass/mass spectrometry (LC-MS/MS)와 gas chromatography-MS 기기분석법을 활용하여 농축 액상비료제품에 적용할 수 있는지 조사하였으며, 액상 비료제품에 적용 가능한 정밀기기 분석법을 개발하고자 하였다. 수용액 상태의 시료에서 식물 생장호르몬인 IAA와 IBA를 가장 손쉽게 정제할 수 있는 방법으로 hydrophile-lipophile balance (HLB) solid phase extraction를 활용하였으나, 제한된 조건에서 LC-MS/MS를 통한 정량분석은 적합한 회수율을 확보하지 못하였고, 정성분석만 가능함을 확인하였다. 반면, 비료제품 250배 희석액을 사용하여 HLB 정제, trimethylsilyl chloride을 이용한 methylation을 통한 GC-MS 분석에서는 검출한계 1.4 mg/L과 93-107%의 회수율로 액상 비료제품에서 IAA와 IBA 정량분석법을 확립할 수 있었다.
Riboflavin is a water-soluble vitamin, which serves as a precursor to flavin mononucleotide and flavin adenine dinucleotide. This study aimed to develop a simple and rapid liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) analysis for the quantification of riboflavin in the Beagle dog plasma. This method utilized simple protein precipitation with acetonitrile and 13C4, 15N2-riboflavin was used as an internal standard (IS). For chromatographic separation, a hydrophilic interaction liquid chromatography (HILIC) column was used with gradient elution. The mobile phase consisted of 0.1% (v/v) aqueous formic acid with 10 mM ammonium formate and acetonitrile with 0.1% (v/v) formic acid. Since riboflavin is an endogenous compound, 4% bovine serum albumin in phosphate buffered saline was used as a surrogate matrix to prepare the calibration curve. The quantification limit for riboflavin in the Beagle dog plasma was 5 ng/mL. The method was fully validated for its specificity, sensitivity, accuracy and precision, recovery, and stability according to the US FDA guidance. The developed LC-MS/MS method may be useful for the in vivo pharmacokinetic studies of riboflavin.
Lipids play important roles in biological systems; they store energy, play a structural role in the cell membrane, and are involved in cell growth, signal transduction, and apoptosis. Phospholipids (PLs) in particular have received attention in the medical and lipidomics research fields because of their involvement in human diseases such as diabetes, obesity, atherosclerosis, and many cancers associated with lipid metabolic disorders. Here I review experimental strategies for PL analysis based on nanoflow liquid chromatography-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (nLC-ESI-MSn). In particular, discussed are lipid extraction methods, nanoflow LC separation of PLs, effect of ionization modifiers on the ESI of PLs, influence of chain lengths and unsaturation degree of acyl chains of PLs on MS intensity, structural determination of the molecular structure of PLs and their oxidized products, and quantitative profiling of PLs from biological samples such as tissue, urine, and plasma in relation to cancer and coronary artery disease.
Park, Mi-Jung;Park, Mi-Seon;Lee, Tae-Seek;Shin, Il-Shik
Food Science and Biotechnology
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제17권3호
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pp.508-513
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2008
Erythromycin has been used to treat Streptococosis, Edwardsiel1osis, Vibriosis, Bacterial enteritis in the cultured fish. In this study, a rapid and effective erythromycin analysis method with new sample treatment protocol and liquid chromatography/tandem mass spectrometry (LC/MS/MS) system for fish products was developed. For the erythromycin extraction from fish muscle, the solvent mixture composed of 0.2% meta-phosphoric acid and methanol (6:4) showed good recovery rate, and the optimum extraction solvent volume was 20 mL. Erythromycin detection using LC/MS/MS were carried out under electro spray ionization (ESI) positive condition and erythromycin mass value 576.2 and 157.9. And the detection limit of the established method was 0.005 mg/kg in fish products. The recovery rate of the developed method applied to the fish species were as following, olive flounder, $87.6{\pm}5.0%$; black rockfish, $87.2{\pm}6.4%$; eel, $85.2{\pm}4.8%$; and rainbow trout, $86.0{\pm}6.2%$. In the established method in this study, the correlation of coefficient values ($R^2$) of erythromycin calibration curve (n=11) was 0.9998.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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