A chitinase gene (pCHi58) encoding a 58 kDa chitinase was isolated from the Serratia marcescens KCTC 2172 cosmid library. The chitinase gene consisted of a 1686 bp open reading frame that encoded 562 amino acids. Escherichia coil harboring the pChi58 gene secreted a 58 kDa chitinase into the culture supernatant. The 58 kDa chitinase was purified using a chitin affinity column and mono-S column. A nucleotide and N-terminal amino acid sequence analysis showed that the 58 kDa chitinase had a leader peptide consisting of 23 amino acids which was cleaved prior to the 24th alanine. The 58 KDa chitinase exhibited a $98\%$ similarity to that of S. marcescens OMB 1466 in its nuclotide sequence. The chitinolytic patterns of the 58 kDa chitinase released N,N'-diacetyl chitobiose (NAG2) as the major hydrolysis end-product with a trace amount of N-acetylglucosamine. When a 4-methylumbellyferyl-N-acetylglucosamin monomer, dimmer, and tetramer were used as substrates, the 58 kDa chitinase did not digest the 4-Mu-NAG monomer $(analogue\;of\;NAG_2)$, thereby indicating that the 58 kDa chitinase was likely an endochitinase. The optimum reaction temperature and pH of the enzyme were $50^{\circ}C$ and 5.0, respectively.
A heterologous gene expression and secretion system using a methylotrophic yeast, Hansenula polymorpha was developed for the production of anticoagulant hirudin. Hirudin gene was expressed under the control of a strong and inducible methanol oxidase (MOX or AOX) promoter. The mating factor a pre-pro leader sequence of Saccharomyces cerevisiae was employed for hirudin to be secreted into the extracellular medium. Hirudin expression cassette was introduced into three strains of H. polymorpha, A16, HPBl and DLl which have different genetic backgrounds. This expression cassette was stably integrated into the host chromosomal DNA. Biologically active and mature hirudin was efficiently expressed and secreted into the extracellular medium. About 19 mg/L of hirudin was found in the culture supernatant in the case of a two-copy integrant of the strain HPBl under suboptimal culture conditions.
Previously, we reported that the prothrombin kringle 2 (fragment 2), induced by LPS administration into rabbit, inhibited bFGF-stimulated BCE cell growth (Lee et al., 1998). In this study, we cloned and overexpressed the kringle 2 domain of rabbit and human prothrombin as a fusion protein with the pelB leader sequence in E. coli using the T7 promoter. The fusion protein was cleaved during translocation into the peri plasmic space, and cleaved recombinant protein was readily isolated from whole cell lysate by DEAE-Sepharose and Sephacryl S-200 gel filtration chromatography. Both the recombinant rabbit and human prothrombin kringle 2 showed very similar biochemical and functional characteristics to the rabbit prothrombin kringle 2 purified from rabbit serum, in terms of abnormal electrophoretic migration and endothelial cell growth inhibitory activity.
Insects use chitinolytic enzyme to digest chitin in the exoskelton during the molting process. We have isolated and sequenced a chitinase-encoding cDNA from the silkworm, Bombyx mandarina, compared its sequenced with genes encoding chitinolytic enzymes from other sources. The insert DNA in the clone is 2,675 nucleotides long with an open reading frame of 1,695 uncletides that encodes a protein of 565 amino acids with a molecuar weight of 63.4 kDa. The 3' -untranslated region of 889 nucleotides is AT-rich and contains two putative polyadenylation signals. The N-terminal sequence of the encoded protein contains numerous hydrophobic residues characteristic of a leader peptide. The amino acid alignment revealed that the endo-$\beta$-N-acetylglucosaminidase had 83% and 97% homology with M. sexta and B. mori, respectively. The deduced amino acid had two highly conserved region at the amino acid residues 97-111 and 139-148 that were related to the existing chitinase.
Park, In-Jae;Rhee, Young-Ha;Cho, Nam-Young;Shin, Kwang-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권12호
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pp.1935-1939
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2006
The gene encoding the extracellular medium-chain-length poly(3-hydroxyalkanoate) (MCL-PHA) depolymerase of Pseudomonas luteola Ml3-4, $phaZ_{plu}$, was cloned and analyzed. It was found to be 849 bp, with a deduced protein of 282 amino acids, and was revealed to have a typical leader peptide at its N terminus. The amino acid sequence of $PhaZ_{plu}$ revealed relatively low identity (69 to 72%) with those of other Pseudomonas MCL-PHA depolymerases. In comparison with the amino acid sequences of all available MCL-PHA depolymerases, the depolymerase was found to consist of three domains in sequential order; signal peptide, an N-terminal substrate binding domain, and a catalytic domain, indicating that $PhaZ_{plu}$ belongs to the type IV depolymerases family. The enzyme also contained Asn as an oxyanion hole amino acid.
Inducible MLS resistance gene of Bacillus licheniformis specified by erm K was subcloned in Bacillus subtilis and the DNA sequence corresponding to its control region was determined. The determinant erm K was in Pvu II=Hind III fragment, which was 1.3 kb. The leader region is capable of forming a complex series of inverted complementary repeat sequences (ICRS) centering on at least six axes of symmetry, some of them mutually exclusive, in a way that resulted ultimately in post-transcriptional unmasking of the ribosome loading site for methylase synthesis.
Aster yomena로부터 분리한 오이 모자이크 바이러스(cucumber mosaic virus) (CMV-As)의 RNA4로부터 완전한 길이의 cDNA를 합성하고 그 전체적인 염기서열(1,043 nt`s)을 결정하였다. CMV-As RNA4는 73개의 염기로 구성된 5`말단의 leader 부위, 657개의 염기로 구성된 외피단백질(coat protein) 유전자 부위 및 312개의 염기로 구성된 3` 말단의 비번역 부위로 구성되어 있음을 확인하였다. 외피단백질 유전자 부위의 염기서열을 다른 계통의 CMV와 비교해 볼 때 그 염기서열이 보전적으로 존재하고 있으나 그 외의 부분은 다양함을 확인하였다. 특히 3` 말단부위의 61개의 염기로 구성된 부위(959-1019)는 다른 계통의 CMV에서는 상당히 유사하지만 CMV-As도 다른 CMV처럼 tRNA와 유사한 구조를 역시 형성함을 확인하였다. CMV-As의 RNA4 염기서열을 다른 계통의 CMV와 비교할 때 CMV-I17F와 가장 유사하였으며(91.9%) S형의 CMV-M과는 가장 낮은 동일성을 보였다(71.1%). 외와 같은 염기성열의 비교 결과와 EcoRI 제한효소 인식부위의 존재로 미루어 CMV-As는 WT형으로 분류된다.
Using a methylotrophic yeast Hansenula polymorpha, a heterologous gene expression and secretion system was developed for the production of hEGF(human Epidermal Growth Factor) which has been shown to promote epithelial cell proliferation and to inhibit gastric acid secretion. The hEGF gene was chemically synthesized according to the preferred codon usage in H. polymor- pha and expressed under the control of the strong and inducible methanol oxidase(MOX) promoter. The mating factor $\alpha$ pre-pro leader sequence of Saccharomyces cerevisiae was employed for hEGF to be secreted into the extracellular medium. This expression cassette was stably integrated into the host chromosomal DNA. Mature hEGF was efficiently expressed and secreted into the extracel- lular medium. About 24 mg/l of hEGF was detected in the cuture supernatant of a transformant with pA-EGF3 under the suboptimal culture conditions.
Hyun Joo Youn;Jin-Kyoo Kim;Eun-Jung Sohn;Soo-O Lee;Choon-Taek Lee
Journal of Microbiology
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제38권2호
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pp.109-112
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2000
Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) is a pleiotropic hematopoietic growth factor and an activator of lmature myeloid cells and recombinant GM-CSF is increasingly under clinical studies for the treatment of various diseases including cancer, infectious diseases and hematopoietic diseases. We constructed a reconbinant mouse GM-CSF expression plasmid with pelB leader sequence and His. Tag under T7 promoter control, and showed that the construct produced a 20 kDa recombinant protein in 8M urea. We also showed that the 20 kDa recombinant protein prepared in 8M urea sitmulated colony formation in vitro, indicating that the recombinant mGM-CSF can be renatured to its native form to show the colony stimulating activity.
Lee, Sang Jun;Park, In Suk;Han, Yun Hee;Kim, Young Ok;Reeves, Peter R.
Molecules and Cells
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제26권2호
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pp.140-145
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2008
Expression of olive flounder hepcidin I (HepI) fused with truncated OmpA signal peptides ($OmpASP_{tr}$) as directional signals does not produce soluble fusion proteins. However, by inserting amino acid segments (xxx) varying in pI and hydrophobicity/hydrophilicity into a leader sequence containing a truncated OmpASP ($OmpASP_{tr}$) and a factor Xa cleavage site (Xa) [$OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$], we were able in some cases to express soluble recombinant HepI. Soluble expression of the recombinant protein strongly correlated with (xxx) insertions of high pI and hydrophilicity. Therefore, we modified the $OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$ sequence by inserting Arg and Lys into (xxx) to increase the hydrophilicity of the signal peptide region. These modifications enhanced the expression of soluble recombinant HepI. Hydropathic profile analysis of the $OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$ HepI fusion proteins revealed that the transmembrane-like domains derived from the $OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$ sequence were larger than the internal positively charged domain native to HepI. It should therefore be possible to overcome the obstacle of internal positively charged domains to obtain soluble expression of recombinant proteins by monitoring the hydrophilicity and hydropathic profile of the signal peptide region using a computer program.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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