This study was attempted to comparative investigate the types and regional distribution of the endocrine cells in several vertebrates immunohistochemically using seven antisera. From carp pancreas could be observed 4 types which are insulin-, glucagon-, som- and BPP-immunoreactive cells. Insulin-immunoreactive cells were mainly distributed at the periphery and a few cells occupied the central region of the islets. Glucagon-immunoreactive cells were distributed at the periphery of the islets, and som - and BPP-immunoreactive cells were located at the central region. From frog pancreas could be observed 4 types which are insulin-, glucagon-, som- and BPP-immunoreactive cells. Insulin-immunoreactive cells were distributed throughout the islets. Som-immunoreactive cells were distributed at the periphery of the islets, and glucagon- and BPP-immunoreactive cells were found as single cell or as small groups located between the pancreatic acini. From snake pancreas could be observed 3 types which are insulin-, glucagon- and som -immunoreactive cells. Insulin-immunoreactive cells were distributed throughout the small islets, and they also were scattered at the periphery of the large islets. Glucagon-immunoreactive cells were distributed at the periphery of the islets, whereas som-immunoreactive cells were occupied the central region. From Ogolgae pancreas could be observed 4 types which are insulin-, glucagon-, som-and BPP-immunoreactive cells. Insulin-immunoreactive cells were distributed throughout the small islets, but at the periphery of the large one. Glucagon- immunoreactive cells were distributed at the periphery of the small islets and in the large islets showed scattering entired. Som-immunoreactive cells were distributed at the periphery of the small islets and in the large islets were located at the central region. A small numbers of BPP-immunoreactive cells were located at the periphery of the small islets and the exocrine regions. From the pancreas of the Korean native goat could be observed 6 types which are insulin-, glucagon-, som-, BPP-, 5-HT- and porcine-CG-immunoreactive cells. Insulin-immunoreactive cells were distributed throughout the islets. Som-immunoreactive cells were located at the periphery of the islets, but a tew were scattered at the central region of islets and in the epithelium of the secretory duct. Glucagon-, BPP-, 5-HT- and porcine CG-immunoreactive cells were distributed at the periphery of the islets. These findings indicated that the regional distribution patterns and cell types of pancreatic endocrine cells in vertebrates varies considerably among phylogenetically different vertebrates.
We studied the viability and function of islet with monomethoxy polyethylene glycol (mPEG) grafted onto its membrane. Islets were isolated from rat and were repeatedly reacted with activated mPEG (mw 5000) in order to increase grafting density. The density of grafted PEG on the islet membrane was confirmed by Fluorescein-PEG-NHS. An assessment of islet viability using AO / PI staining method showed that multiple PEGylation did not reduce islet viability. The function of PEG grafted islets was evaluated by measuring released insulin from islets. Insulin secreted from the PEGylated islets for 1 h did not show any significant difference compared to control (non-PEGylated) islets. In addition, PEGylated islets responded in the same pattern as control islets in the perifusion test.
The regional distribution and relative frequency of the endocrine cells in the pancreas of the bean goose were investigated by immunohistochemical methods using 6 types of the specific antisera. Spindle shaped serotonin-immunoreactive cells were detected in the exocrine portions. Spherical or spindle shaped glucagon-immunoreactive cells were observed in the exocrine and dark and mammalian type islets. In the dark type islets, numerous cells were dispersed throughout whole islets but they were located in the peripheral regions of the mammalian type islets. No glucagon-immunoreactive cells were detected in light type islets. Round or spherical shaped insulin-immunoreactive cells were observed in the exocrine and dark, light and mammalian type islets. They were observed in the exocrine regions with a few numbers. Extremely rare cells were detected in central portion of the dark type islets but moderate to numerous cells were found in the central regions of the mammalian and light type islets, respectively. Spherical or spindle shaped somatostatin-immunoreactive cells were observed in the exocrine and dark, light and mammalian type islets. A few single cells were detected in the exocrine portions. In the dark type islets, numerous cells were dispersed throughout whole islets but a few to moderate numbers of cells were located in the peripheral regions of the light and mammalian type islets. Moderate numbers of the bovine pancreatic polypeptide-immunoreactive cells were found in the exocrine portions with round, spherical or spindle shape. But no bovine Sp-1/chromogranin-immunoreactive cells were observed in this study.
This experiment was carried out to investigate the influence of Aloe vera in the pancreatic islets of streptozotocin diabetic mice. Experimental diabetes was induced in ICR mice with a single injection of SZ(140mg/kg body weight, ip). The mice demonstrating hyperglycemia 48 hours after SZ injection were treated for 16 days with Aloe vera(300, 800mg/kg). Plasma glucose was measured, and for morphological studies of the islets specimens were stained with hematoxylin-eosin and by immunocytochemical methods. Then we observed the morphological changes of islets. Polymorphonuclear cells were infiltrated at the periphery of the islets 48 hours after SZ injection in SZ-treated ICR mice, but no prominent WBC infiltration was observed throughout the experiment. Blood glucose in mice treated with Aloe vera after SZ injection was higher than that of SZ injected mice, and mononuclear cells were heavily infiltrated at the islets 16 days after Aloe vera treatment(300mg/kg), and significant islets infiltration of mononuclear cells was observed 30 days after Aloe vera treatment(800mg/kg). Islets of ICR mice treated with Aloe vera after SZ injection showed severer insulitis, degranulation and necrosis of B cells than those of SZ injected mice. These studies indicate that Aloe vera in SZ injected mice increases vascular permeability and number of WBC in pancreatic islets, and potentiates destruction of B cells by cell-mediated immune system.
Background: Minor histocompatibility HY antigen, as a transplantation antigen, has been known to cause graft rejection in MHC (major histocompatibility complex) matched donor-recipient. The aim of our study is to investigate the role of male antigen (HY) disparity on MHC matched pancreatic islet transplantation and to examine the mechanism of the immune reaction. Methods: Pancreatic islets were isolated and purified by collagen digestion followed by Ficoll gradient. The isolated islets of male C57BL6/J were transplanted underneath the kidney capsule of syngeneic female mice rendered diabetic with streptozotocine. Blood glucose was monitored for the rejection of engrafted islets. After certain period of time, tail to flank skin transplantation was performed either on mouse transplanted with HY mismatched islets or on sham treated mouse. The rejection was monitored by scoring gross pathology of the engrafted skin. Results: HY mismatched islets survived more than 300 days in 14 out of 15 mice. The acceptance of second party graft (male B6 islets) and the rejection of third party graft (male BALB/c islets) in these mice suggested the tolerance to islets with HY disparity. B6 Skin with HY disparity was rejected on day $25{\pm}7$. However, HY mismatched skin transplanted on the mice tolerated to HY mismatched islets survived more than 240 days. Tetramer staining in these mice indicated the CTL recognizing MHC Db/Uty was not deleted or anergized. Conclusion: The islet transplantation across HY disparity induced tolerance to HY antigen in C57BL6 mouse, which in turn induced tolerance to HY mismatched skin, which otherwise would be rejected within 25 days. The MHC tetramer staining suggested the underlying mechanisms would not be clonal deletion or anergy.
The histological and cytological characteristics of pancreatic islets of chickens were studied along with the distribution and size of islets and weight of chicken pancreas versus body weight. The following is a summarg of the present work. 1. The weight
To investigate morphological changes in the endocrine pancreas of chicken after pancreatic duct ligation, experimental animals were subdivided to control, 12 hours, 1 day, 2 days, 4 days, 7 days and 10 days groupes and all of three pancreatic ducts of chicken were ligated by surgical procedure and then the morphological changes were observed. In pancreatic islets, the vacuolation and invasion of connective tissue were occurred in all experimental groups and dissociation of pancreatic islets was detected in 4 days after pancreatic duct ligation and hold out to 10 days. The peak of the morphological changes in pancreatic islets was detected in 4 days after pancreatic duct ligation. In the results of immunohistochemical methods against glucagon, insulin, somatostatin and bovine pancreatic polypeptide(BPP), the number of immunoreactive pancreatic islets were decreased but the size increased with time, so the number of immunoreactive cells in each pancreatic islets were increased. Glucagon-immunoreactive cells were not changed but insulin-immunoreactive cells were decreased with time(p<0.05). BPP-immunoreactive cells were increased in 2 days after pancreatic duct ligation and then decreased with time(p<0.05). Somatostatin-immunoreactive cells were increased with time(p<0.05) in dark islets.
The distributions and relative frequencies of insulin-, glucagon-, and somatostatin-immunoreactive cells in the pancreas of the duck(Anas platyrhynchos platyrhyncos, Linne) were investigated immunohistochemically on 23 days of incubation, at hatching, 1 week, 2 weeks, 3 weeks, 5 weeks, 6 weeks, 7 weeks, 9 weeks, 10 weeks, and 32 weeks after hatching. In the duck pancreas on 23 days of incubation and at hatching, mammalian type islets(mixed type) were only observed, thereafter three type's islets(mamalian, A and B type's islets) were identified. Insulin-immunoreactive cells were detected in central region of the islets, while glucagon- and somatostatin-immunoreactive cells were detected in marginal region of light(B type) or mammalian type islets, and in central region of dark islets(A type). Insulin-, and somatostatin-immunoreactive cells were also detected in the exocrine regions. In this region the insulin-immunoreactive cells were detected from 23 days of incubation to 6 weeks, however not detected after 7 weeks. At hatching the relative numbers of somatostatin-immunoreactive cells were more frequent than those of other groups, and then decreased with ages.
이자섬은 이자를 구성하는 외분비조직에 둘러싸여 존재하는 내분비세포의 집단으로, 이자섬에서 분비되는 인슐린은 $\beta$세포에서 분비되는 호르몬이며, 세포질의 리보좀에서 합성되고 골지체를 경유하여 세포질로 방출되는 기작을 가지고 있다. 충분한 양의 이자섬 이식은 인슐린 의존형 당뇨병인 제1형 당뇨병에서 정상혈당을 회복시키고, 당뇨 합병증을 방지할 수 있는 치료방법으로 사용되고 있다. 하지만 당뇨병 환자에게 이식을 위한 이자섬의 양에 비해 공여자로부터 증여된 이자섬의 양은 제한적이다. 이러한 문제점은 이자섬의 증식으로 연구되고 있으나, 배양된 이자섬이 정상 조직내의 이자섬과 형태적 기능적으로 동일한 것인지에 관한 연구는 미비하였다. 따라서 본 연구에서는 분리된 이자섬과 배양된 이자섬을 구성하는 세포들의 내부구조의 변화를 주사전자현미경, 투과전자현미경을 이용하여 세포의 미세구조를 확인하고, 인슐린 항체를 이용한 $\beta$세포 내의 인슐린 분포양상을 확인하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 분리된 이자섬의 $\beta$세포는 일반적인 핵 미토콘드리아, 세포질세망 그리고 인슐린 과립이 분포하고, 배양된 이자섬 $\beta$세포의 경우 분리된 이자섬에 비하여 일반적인 핵의 모습과 부피가 증가한 세포질과 미토콘드리아, 세포질세망 그리고 골지체의 발달이 이루어지는 것으로 관찰되었다. 인슐린 과립의 경우 분리된 이자섬에 비해 감소하며, 세포막 주위에 분포하는 것으로 관찰되었다. 배양된 이자섬에서 관찰되는 인슐린 과립 분포의 변화, 세포질세망의 증가, 골지체의 발달은 배양된 이자섬 $\beta$세포의 인슐린 생성 분비 기능의 향상과 부피의 증가가 이루어지기 위한 세포 내부의 형태적 변화가 이루어지는 것으로 추측된다.
The distribution of glucagon-immunoreactive cells in the pancreas during various developmental stages (fetus, neonate, 1-month-old, 6-month-old and adult) of the Korean native goat was investigated by immunohistochemical methods. The varying distribution and frequency of glucagon-immunoreactive cells in the pancreas of the Korean native goat were observed. The glucagon-immunoreactive cells were detected in both exocrine and endocrine portions (pancreatic islets) at all developmental stages and also in ducts of the 6-month-old and adult. The relative frequencies of glucagon-immunoreactive cells increased in the pancreatic islets and ducts with age, but decreased in the exocrine portions. Generally, they were distributed in the interacinar spaces or marginal zone of the pancreatic islets during all stages of development. However, the cell distributions of the pancreatic islets in the neonate divided into two types: 1) ones which were distributed in the inner zone, and 2) others in the peripheral zone.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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