Through the output of brain waves during muscle operation, this paper checks whether it is possible to find characteristic vectors of brain waves that are capable of dividing left and right movements by extracting brain waves in specific areas of muscle signal output that include the motion of the left and right muscles or the will of the user within EEG signals, where uncertainties exist considerably. A typical surface EMG and noninvasive brain wave extraction method does not exist to distinguish whether the signal is a motion through the degree of ionization by internal neurotransmitter and the magnitude of electrical conductivity. In the case of joint and motor control through normal robot control systems or electrical signals, signals that can be controlled by the transmission and feedback control of specific signals can be identified. However, the human body lacks evidence to find the exact protocols between the brain and the muscles. Therefore, in this paper, efficiency is verified by utilizing the results of application of CSP (Common Spatial Pattern) filter to verify that the left-hand and right-hand signals can be extracted through brainwave analysis when the subject's behavior is performed. In addition, we propose ways to obtain data through experimental design for verification, to verify the change in results with or without filter application, and to increase the accuracy of the classification.
The correct distinction of carbapenem-resistant Enterobacteriaceae (CRE) and ccarbapenemase producing Enterobacteriaceae (CPE) and the rapid detection of CPE are important for instituting the correct treatment and management of clinical infections. Screening protocols are mainly based on cultures of rectal swab specimens on selective media followed by phenotypic tests to confirm a carbapenem-hydrolyzing activity, the rapid carbapenem inactivation method, lateral flow immunoassay, the matrix-assisted laser desorption ionization-time-of-flight test and molecular methods. The CPE is accurate for detection, and is essential for the clinical treatment and prevention of infections. A variety of phenotypic methods and gene-based methods are available for the rapid detection of carbapenemases, and these are expected to be routinely used in clinical microbiology laboratories. Therefore, to control the spread of carbapenemase, many laboratories around the world will need to use reliable, fast, high efficiency, simple and low cost methods. Optimal effects in patient applications would require rapid testing of CRE to provide reproducible support for antimicrobial management interventions or the treatment by various types of clinicians. For the optimal test method, it is necessary to combine complementary test methods to discriminate between various resistant bacterial species and to discover the genetic diversity of various types of carbapenemase for arriving at the best infection control strategy.
Kim, Hyunsang;Kim, Younghun;Kim, Younghee;Lee, Sangku
Clean Technology
/
v.22
no.2
/
pp.89-95
/
2016
The nanotoxicity of ZnO nanoparticles used in cosmetics and tire industry is one of emerged issues. Herein, the removal of ZnO nanoparticles dispersed in aqueous phase and its ecotoxicity were investigated. In the short-term exposure for fertilized eggs (O. latipes), the deformity was observed at 5 mg L−1 of ZnO nanoparticles in some individuals and delayed hatching of eggs by retarded growth was observed at 10 mg L−1 of ZnO nanoparticles. This result show that ZnO nanoparticles have cytotoxic effect to the organisms lived in water phase. Therefore, herein, the removal of ZnO nanoparticles in aqueous phase by chemical precipitation was investigated. After addition of Na2S and Na2HPO4, the precipitated ZnO was transformed to ZnS and Zn3(PO4)2 particles, respectively. The removal efficiency of ZnO was reached to almost 100% for two cases. In addition, the toxicity tests about ZnS and Zn3(PO4)2 particles showed no acute toxicity for D. magna. This implies that transformation of ZnO to ZnS and Zn3(PO4)2 particles with very low ionization constant might decrease effectively the toxicity of ZnO.
In this study, we described the production of an antibody to living modified organisms (LMOs) containing the gene encoding for 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase (EPSPS) from Agrobacterium tumefaciens strain CP4 EPSPS provides resistance to the herbicide glyphosate (N- (phosphonomethyl) glycine). These LMOs were approved and have recently been used in the feed, food production, and processing industries in South Korea. Highly efficient monoclonal antibody (mAb) production is crucial for developing assays that enable the proper detection and quantification of the CP4 EPSPS protein in LMOs. This study describes the purification and characterization of recombinant CP4 EPSPS protein in E. coli BL21 (DE3) based on sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and matrixassisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry. The production of mAbs was undertaken based on the standard operating procedure of Abclon, Inc.(South Korea), and the purity of the mAbs was assessed using SDS-PAGE. The following five mAb clones were produced: 2F2, 4B9, 6C11, 10A9, and 10G9. To verify the efficiency and specificity of the five developed mAbs, we performed Western blotting analysis using the LM (living modified) cotton crude extracts. All mAbs could detect the CP4 EPSPS protein in the LM cotton traits MON1445 and MON88913 with high specificity, but not in any other LM cottons or non-LM cottons. These data indicate that these five mAbs to CP4 EPSPS could be successfully used for the further development of antibody-based detection methods to target CP4 EPSPS protein in LMOs.
To establish and validate a liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method for the rapid and accurate quantitation of diarrhetic shellfish poisoning (DSP) toxins, we compared the results from different mobile phases and columns used for their analysis and collision energies for MS/MS experiments. Clear peaks of okadaic acid (OA) and dinophysistoxin-1 (DTX1) were obtained by using a mobile phase comprising aqueous acetonitrile containing 2 mM ammonium formate and 50 mM formic acid. The collision energies were optimized to facilitate the most sensitive detection for each toxin, namely, OA, DTX1, pectenotoxin-2 (PTX2), or yessotoxin (YTX). Further, the maximum ion response was obtained at a collision energy of 48 V for OA and DTX1. We compared the analytical performance of $C_8$ and $C_{18}$ columns. A wide range of toxins namely, OA, DTX1, PTX2, and YTX, except DTX3, were detected by both the columns. Although DTX3 was only detected by the $C_8$ column, we found that the $C_{18}$ column was also suitable for the quantitation of OA and DTX1 the toxins responsible for inducing diarrhea. The limit of detection of OA and DTX1 by the established LC-MS/MS conditions was 1 ng/g, and the limit of quantitation of the toxins under the same conditions was 3 ng/g. The process efficiencies were 91-118% for oysters (Crassostrea gigas) and 96-117% for mussels (Mytilus galloprovincialis) further, we observed no significant effect of matrix during the ionization process in LC-MS/MS. The comparison between mouse bioassay (MBA) and LC-MS/MS yielded varying results because low concentrations of OA and DTX1 were detected by LC-MS/MS in some shellfish samples, which provided positive results on MBA for DSP. The analysis time required by MBA for DSP analysis can be reduced by LC-MS/MS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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