The enzyme invertase contributes to sugar unloading, pathogen defense, differentiation and development in plants. We cloned the complete cDNA of a soluble acid invertase from pea seedlings (Pisum sativum) via RT-PCR and the rapid amplification of the cDNA end (RACE) technique. The full-length cDNA of the soluble pea invertase comprised 2237 bp and contained a complete open reading frame encoding 647 amino acids. The deduced amino acid sequence showed high homology to soluble acid invertases from various plants. Northern blot analysis demonstrated the soluble acid invertase gene of P. sativum was strongly expressed in sink organs such as shoot tips and root tips, and induced by abscisic acid, gibberellic acid and jasmonic acid in shoots. Especially, gibberellic acid enhanced the gene expression of the soluble acid invertase in a time-dependent manner. This study presents that the gene expression patterns of a soluble acid invertase from pea are strongly consistent with the suggestion that individual invertase gene product has different functions in the growing plant.
Environmental Sciences Bulletin of The Korean Environmental Sciences Society
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v.2
no.1
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pp.37-48
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1998
Effect of plant hormones on the leaf senescence of mung bean (Phaseolus radiatus) was investigated by measuring the changes of reducing sugar contents and invertase isozyme activities in detached leaves treated with NAA, $GA_3$ or BA. During dark-induced senescence, reducing sugar contents in the detached leaves increased temporarily at 4 d, thereafter decreased rapidly and reached minimum values within 7-14 d. The pattern of soluble acid invertase activity in the senescing leaves kept in the dark was similar to that of reducing sugar accumulation, whereas the activities of alkaline and extracellular invertases were not significantly changed during leaf senescence. Therefore, these results suggest that soluble acid invertase, but not alkaline and extracellular invertases, induces the accumulation of reducing sugar during leaf senescence of mung bean plants. Exogenous NAA application had little or no effect in the increase of soluble acid invertase activity during dark-induced senescence compared to the control. However, exogenous applications of $GA_3$ and BA led to the increase of soluble acid invertase activity in the senescing leaves. Particularly, BA application was very effective in enhancing the activity of soluble acid invertase as well as in delaying chlorophyll breakdown during dark-induced senescence. These results suggest, therefore, that BA regulates the activity of soluble acid invertase, which leads to the accumulation of reducing sugar, and the stability of photosynthetic apparatus to delay leaf senescence.
Effect of plant hormones on the leaf senescence of mung bean (Phseoln radiatus) was investigated by measuring the changes of reducing sugar contents and invertase isozyme activities in detached leaves treated with NAA, $GA_3$ or BA. During dark-induced senescence, reducing sugar contents in the detached leaves increased temporarily at 4 6, thereafter decreased rapidly and reached minimum values within 7-14 6. The pattern of soluble acid invertase activity in the senescing leaves kept in the dark was similar to that of reducing sugar accumulation, whereas the activities of alkaline and extracellular invertases were not significantly changed during leaf senescence. Therefore, these results suggest that soluble acid invertase, but not alkaline and extracellular invertases, induces the accumulation of reducing sugar during leaf senescence of Rung bean plants. Exogenous NAA application had little or no effect In the increase of soluble acid invertase activity during dark-induced senescence compared to the control. However, exogenous applications of $GA_3$ and BA led to the increase of soluble acid invertase activity in the senescing leaves. Particularly, BA application was very effective In enhancing the activity of soluble acid invertase as well as in delaying chlorophyll breakdown during dark-induced senescence. These results suggest, therefore, that BA regulates the activity of soluble acid invertase, which leads to the accumulation of reducing sugar, and the stability of photosynthetic apparatus to delay leaf senescence.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.40
no.9
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pp.1321-1327
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2011
The microorganism producing an invertase (E.C. 3.2.1.26) was isolated from wine and tentatively identified as Saccharomyces cerevisiae by cellular fatty acid analysis. The invertase was purified to homogeneity by ammonium sulfate precipitant, dialysis, ion-exchange chromatography on DEAE-Sephadex A-50, and gel chromatography on Sephadex G-200 from the culture supernatant of Saccharomyces cerevisiae JS59. The specific activity and the purification fold of the purified invertase were 7620.9 unit/mg protein and 13.9, respectively. The molecular weight of the purified invertase was estimated to be 38.5 kDa by SDS-PAGE. The optimum pH and temperature for the invertase activity were pH 5 and $55^{\circ}C$, respectively. The invertase activity was relatively stable at pH 4~6 and temperature $55^{\circ}C$. The activity of invertase was inhibited by $Ag^{2+}$ and $Hg^{2+}$, but on the contrary, activated by $Co^{2+}$ and $Mn^{2+}$. Michaelis constant ($K_m$) for invertase reaction in sucrose solution was 11.5 mM. TLC analysis of the products produced in sucrose solution during invertase reaction showed the progressive presence of glucose and fructose in accordance with sucrose hydrolysis.
Invertase (${\beta}$-D-fructofuranosidase; EC 3.2.1.26) catalyzes the conversion of sucrose into glucose and fructose and is involved in an array of important processes, including phloem unloading, carbon partitioning, the response to pathogens, and the control of cell differentiation and development. Its importance may have caused the invertases to evolve into a multigene family whose members are regulated by a variety of different mechanisms, such as pH, sucrose levels, and inhibitor proteins. Although putative invertase inhibitors in the Arabidopsis genome are easy to locate, few studies have been conducted to elucidate their individual functions in vivo in plant growth and development because of their high redundancy. In this study we assessed the functional role of the putative invertase inhibitors in Arabidopsis by generating transgenic plants harboring a putative invertase inhibitor gene under the control of the CaMV35S promoter. A transgenic plant that expressed high levels of the putative invertase inhibitor transcript when grown under normal conditions was chosen for the current study. To our surprise, the stability of the invertase inhibitor transcripts was shown to be down-regulated by the phytohormone ABA (abscisic acid). It is well established that ABA enhances invertase activity in vivo but the underlying mechanisms are still poorly understood. Our results thus suggest that one way ABA regulates invertase activity is by down-regulating its inhibitor.
Changes of contents of reducing sugar and sucrose and activities of sucrose-phosphate synthase, sucrose synthease and invertase from the leaves of barley (Hordeum vulgare L. cv. Chalssal) seedlings grown at $4^{\circ}C$ were investigated, and the property of acid invertase were also examined. In the seedlings grown at $4^{\circ}C$ for 3 days, the contents of reducing sugar and sucrose were increased to 1.3 and 2.4 times, respectively. Activity of acid invertase was decreased markedly by cold treatment while the activities of sucrosephosphate synthase, sucrose synthase, and alkaline invertase were not changed. In acid phosphatase purified partially by ammonium sulfate fractionation and DEAE-Sephacel column chromatography, the $K_m$ value for sucrose was 9.5 mM and the optimum pH and temperature was 5.5 and $35^{\circ}C$ respectively. This enzyme was supposed to be ${\beta}-fructosidase$ by studies on the substrate specificity and the molecular weight was estimated to be 63 Kd by Sephadex G-200 gel chromatography.graphy.
The extracellular invertase (EC 3.2.1.26) (Candida utilis) preparation was obtained from the liquid medium after desalting and freeze drying. This prepared enzyme was used for the comparative purification on 4 activated matrices by liquid column affinity chromatography method. In this method there were used controlled porous glass (CPG) silanized covalently activated by keratin, silanized silica gel and silica gel covalently covered by keratin. It was found that the invertase purification process was better using both CPG matrices (silanized CPG and keratin activated CPG) than these with two silica gel supports. Also the elution coefficient of the invertase from the two CPG columns was about 93 to 94%. Two silica gel supports found to be superior in terms of purification efficiency. The invertase purification process was confirmed by PAGE electrophoresis.
The effects of medium pH and culture temperature on the expression and secretion of inulinase and invertase were investigated with recombinant Saccharomyces cerevisiae cells. These cells were obtained by transformation of 2$\mu$-based plasmids pYI10 and pYS10 which contain Kluyveromyces marxianus inulinase gene (INU1A) and S. cerevisiae invertase gene (SUC2), respectively, in the downstream of GAL1 promoter. The expression level and localization of inulinase and invertase were not affected significantly by the initial medium pH: secretion efficiencies of inulinase and invertase into the medium were about 90% and 60%, respectively, in the pH ranges of 4.0 to 6.5. However, the expression and secretion of both enzymes were strongly dependent on the culture temperature. The highest expression (7.7 units/mL) and secretion (6.7 units/mL) of inulinase were observed at 28$\circ$C and 30$\circ$C. As a consequence of decreased localization of inulinase in the periplasmic space, the secretion efficiency increased from 68% at 20$\circ$C, to 95% at 35$\circ$C,. The total expression level and secretion efficiency of invertase increased from 19 units/mL and 55% at 20$\circ$C to 25 units/mL and 68% at 35$\circ$C, respectively. Irrespective of the culture temperature, the invertase activity in the cellular fraction (periplasmic space and cytoplasmic fractions) was kept constant at around 33-45%.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.21
no.6
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pp.725-730
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1992
The internal invertase was purified from cell free extract of Rhodosporidium toruloides IFO 0559-M-919 by acid precipitation, ion-exchange chromatography and gel filtration to the unique enzyme protein on disc electrophoresis. We have found out that molecular weight of purified internal invertase was 90,000 by gel filtration and the purified enzyme was protein with 4 homogeneous subunits appearing as single band of 22,000daltons on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis.
This study was conducted to determine invertase activity in persimmon during the drying process and characterize the purified enzyme. As drying proceeded, invertase activity increased until 10 days and decreased gradually afterwards. Invertase in persimmon fruit was extracted with 250 mM potassium phosphate sulfate buffer at pH 7.4. The enzyme was purified by means of ammonium sulfate fractionation, column chromatography on DEAE-cellulose and gel filtration on Sephadex G-200 column. The optimal temperature of enzyme was $40^{\circ}C$ and optimal pH was 5.0 and 6.0 for sucrose and raffinose, respectively. The enzyme was stable up to $50^{\circ}C$ and pH 3-6. The Km value of the enzyme, with sucrose as a substrate, was 2.5mM. Electrophoretic pattern of purified enzyme solution showed a single band.
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