The family of ClpB protein is a molecular chaperone which protects cellular proteins from being aggregated upon exposure to severe environmental stresses in association with DnaK/DanJ/GrpE in the ATP-dependent manner. In a psychrophilic bacterium which survives at a subzero temperature, any functional role of cold-active ClpB protein can be rather crucial. In order to identify a ClpB encoding gene from a cold-adapted bacterium whose genome sequence has not been fully discovered, we have employed a series of PCR technologies, including a gradient PCR with homologous primers, an inverse PCR and a cassette PCR. The full sequence of PaclpB gene was successfully identified and compared with those of other psychrophilic species. We have further cloned the gene in E.coli expression systems and were able to induce PaClpB protein expression by IPTG, which help us understand a molecular mechanism for survival against extremely cold environments.
This research was conducted to identify plant regulatory regions by gene tagging method. A promoterless GUS coding sequence was introduced to Populus nigra ${\times}$ P. maximowiczii via Agrobacterium strains(LBA4404/EHA101), and putative transgenic poplars were selected by culturing on medium containing G418($60mg/{\ell}$) and by GUS assay. Among them one positive plant was to amplify the native sequences flanking to the introduced GUS gene in plant genome by inverse PCR method and from this 730 by DNA product was obtained. After subcloning and sequencing, it has 88% homology to the Eucalyptus gunnii CAD(cinnamyl alcohol dehydrogenase) gene. The GUS gene fused with the putative promoter reinserted into poplar leaves by particle bombardment method to test the funtional promoter activity. Upon staining with X-gluc, many blue spots appeared on the leaf segments bombarded by the chimeric gene 2-3 days, thus the isolated DNA fragment contain some possible coding region as well as a putative regulatory sequences of poplar CAD gene.
The DNA sequence of the chitosanase gene (choK) from $\beta$-Proteobacterium KNU3 showed an 1,158-bp open reading frame that encodes a protein of 386 amino acids with a novel 74 signal peptide. The degenerated primers based on the partial deduced amino acid sequences from MALDI- TOF MS analyses yielded the 820 bp of the PCR product. Based on this information, double inverse PCR cloning experiments, which use the two specific sets of PCR primers rather than single set primers, identified the unknown 1.2 kb of the choK gene. Subsequently, a 1.8 kb of full choK gene was cloned from another PCR cloning experiment and it was then subcloned into pGEM T-easy and pUC18 vectors. The recombinant E. coli clone harboring recombinant pUC18 vector produced a clear halo around the colony in the glycol chitosan plates. The recombinant ChoK protein was secreted into medium in a mature form while the intracellular ChoK was produced without signal peptide cleavage. The activity staining of PAGE showed that the recombinant ChoK protein was identical to the chitosanase of wild-type. The comparison of deduced amino acid sequences of choK revealed that there is 92% identity with that of Sphingobacterium multivorum chitosanase. Judging from the conserved module in other bacterial chitosanases, chitosanase of KNU3 strain (ChoK) belongs to the family 80 of glycoside hydrolases.
Agrobacterium-mediated transformation was conducted in order to generate DNA insertional mutants of Flammulina velutipes. Agrobacterium tumefaciens AGL-1 harboring pBGgHg was transformed into gill tissues of Flammulina velutipes strain KACC42777. The transformants resistant on hygromycine ($30\;{\mu}g/ml$) were confirmed by PCR. The targeted insertional sites were amplified by inverse PCR and sequenced. To find the phenotype variation of all generated transformants, bottle cultivation which followed by the standard cultivation protocol were conducted. Color variation was observed on the cultivated fruiting bodies. Furthermore, the transformant pool will be used as a good genetic resources for studying gene function.
Kim Young-Hoon;Ko Minsu;Woo Dae-Gyun;Choi Donchan;Lee Kyung-Ah
Development and Reproduction
/
v.7
no.2
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pp.119-126
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2003
In the previous study, we obtained list of differentially expressed genes between postnatal day 1 and day 5 mouse ovaries using suppression subtractive hybridization(SSH) and found that MT Oansposon-like element, clone MTi7(MTi7) was one of the highly expressed genes in the day 5 mouse ovary(Park et at., 2002). Results of in situ hybridization and RNA interference revealed that the expression of MTi7 is oocyte-specific in the ovary and may be involved in the regulation of oocyte maturation(Park et at., 2003). At present, MTi7 sequence has been known only in the mouse. Therefore, the present study was accomplished 1) to identify MTi7 sequence in the other mammalian species, such as bovine, porcine, rat, and human, and 2) to evaluate the flanking sequence of the mouse MTi7 since it has transposon characteristics. Using ovarian cDNAs derived from low different species, we cloned and identified new MTi7 sequence showing a high degree of sequence homology with the mouse MTi7(87∼98%). By using inverse PCR, we found that the mouse MTi7 may intercalated the beta-carotene 15, 15'-monooxygenase(Bcdo) gene and/or serine protease inhibitor, Kunitz Dpe I(Spint 1) gene. By finding the MTi7 sequences in the other mammalian species and the flanking gene of the MTi7 in mouse, it is expected to reveal the role(s) of MTi7 in the oogenesis as well as folliculogenesis in the near future.
Decreased porin-mediated outer membrane penetration of hydrophilic antibiotics is a common mechanism of antibiotic resistance in Gram-negative bacteria. This study was undertaken to determine whether a null mutation in Pseudomonas putida would suppress porin synthesis, and therefore reduce the susceptibility of the organism to streptomycin, norfloxacin, and tetracycline. Inverse PCR amplification and double-stranded DNA sequencing were used to identify chromosomal genes carrying TnphoA'-1 inserts. Genome database available was used to identify putative homologue genes, one of which encodes protein with homology to domains of the MutS of P. putida, suggesting a crucial role in the multidrug resistance. Increased resistance to streptomycin, norfloxacin, and tetracycline might be due to accumulation of compensatory mutations. Either no growth or slow growth was observed in P. putida KH1027 when grown in minimal medium containing gluconate, glucose, or citrate; however, it is not clear whether the growth patterns contributed to the multidrug resistance.
Various constituents in clinical specimens, particularly feces, can inhibit the PCR assay and lead to false-negative results. To ensure that negative results of a diagnostic PCR assay are true, it should be properly monitored by an inhibition control. In this study, a cloning vector harboring a modified target DNA sequence (${\approx}375bp$) was constructed to be used as a competitive internal amplification control (IAC) for a conventional PCR assay that detects ${\approx}550bp$ of the Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP) gene sequence in human feces. Modification of the native PCR target was carried out using a new approach comprising inverse PCR and restriction digestion techniques. IAC was included in the assay, with the estimated optimum concentration of 1 fg per reaction, as duplex PCR. When applied on fecal samples spiked with variable oocysts counts, ${\approx}2$ oocysts were theoretically enough for detection. When applied on 25 Cryptosporidium-positive fecal samples of various infection intensities, both targets were clearly detected with minimal competition noticed in 2-3 samples. Importantly, both the analytical and the diagnostic sensitivities of the PCR assay were not altered with integration of IAC into the reactions. When tried on 180 randomly collected fecal samples, 159 were Cryptosporidium-negatives. Although the native target DNA was absent, the IAC amplicon was obviously detected on gel of all the Cryptosporidium-negative samples. These results imply that running of the diagnostic PCR, inspired with the previously developed DNA extraction protocol and the constructed IAC, represents a useful tool for Cryptosporidium detection in human feces.
The objectives of this study were to analyze mutant lines of Chinese cabbage ($Brassica$$rapa$ ssp. $pekinensis$) using gene tagging system (plasmid rescue and inverse polymerase chain reaction) and to observe the phenotypic characteristics. Insertional mutants were derived by transferring DNA (T-DNA) of $Agrobacterium$ for functional genomics study in Chinese cabbage. The hypocotyls of Chinese cabbage 'Seoul' were used to obtain transgenic plants with $Agrobacterium$$tumefaciens$ harboring pRCV2 vector. To tag T-DNA from the Chinese cabbage genomic DNA, plasmid rescue and inverse PCR were applied for multiple copies and single copy insertional mutants. These techniques were successfully conducted to Chinese cabbage plant with high efficiency, and as a result, T-DNA of pRCV2 vector showed distinct various integration patterns in the transgenic plant genome. The polyploidy level analysis showed the change in phenotypic characteristics of 13 mutant lines was not due to variation in somatic chromosome number. Compared with wild type, the $T_1$ progenies showed varied phenotypes, such as decreased stamen numbers, larger or smaller flowers, upright growth habit, hairless leaves, chlorosis symptoms, narrow leaves, and deeply serrated leaves. The polyploidy level analysis showed the change in phenotypic characteristics of 13 mutant lines was not due to variation in somatic chromosome number. To tag T-DNA from the Chinese cabbage genomic DNA, plasmid rescue and inverse PCR were applied for multiple copies and single copy insertional mutants. Mutants that showed distinct phenotypic difference compared to wild type with 1 copy of T-DNA by Southern blot analysis, and with 2n = 20 of chromosome number were selected. These selected mutant lines were sequenced flanking DNA, mapped genomic loci, and the genome information of the lines is being recorded in specially developed database.
To examine the feasibility of using a sperm vector system for gene transfer, we have investigated the binding and the uptaking of foreign DNA into the sperm nucleus by PCR, in situ hybridization and LSC. We have also examined the transportation of exogenous DNA into oocytes by immunofluorescene via PCR. Sperm cells were incubated with DNA/liposome complexes (1:4 ratio) in fertilization medium with BSA or without BSA. In situ hybridization demonstrated that the transfection rate of sperm cells with and without BSA was 41 and 68% respectively, when the cells were treated with liposome/DNA complexes and 13% for DNA alone. LSC analysis showed that the binding of exogenous DNA was greatly reduced by DNase I treatment which digests DNA bound onto spermatozoa, suggesting that some of the DNA was internalized into the sperm membrane. To find out whether transfected DNA was internalized into sperm intracytomembrane, sperm DNA was amplified by inverse PCR. No PCR products were detected from sperm cells, indicating that the foreign DNA was simply bound onto the sperm membrane. To investigate transfer rates of exogenous DNA into oocytes via sperm cells, we used immunofluorescene method to follow the distribution of foreign DNA via spermatozoa: a few exogenous DNA was located in the cytoplasm of early embryos (13/60, 21.7% for DNA+/liposome+/BSA) and was not located in the pronucleus and/or nucleus. These results suggest that most of the transfected sperm cells could carry the foreign DNA into the egg by in vitro fertilization, but that the transferred DNA is degraded in the developing embryos without stable integration into the zygote genome. Therefore, we have directly injected with transfected sperm cell into oocyte cytoplasm and observed that some of the exogenous DNA was detected in preimplantation embryonic cytoplasm and expressed at preimplantation stages, suggesting that exogenous DNA in early zygote has their integrity. In this study, we have not identified a noble mechanism that interfering transportation of foreign DNA into zygote genome via spermatozoa. Our data, however, demonstrated that inverse PCR and immunofluorescene methods would be used as a new tool for follow-up of gene distribution in oocyte via sperm cells.
DNA uptake in dry embryos of rice by DNA imbibition was detected by monitoring the expression of chimeric vectors. The selective markers of expression vectors used were ${\beta}-glucuronidase$ ronidase (GUS) and hygromycin phosphotransferase (HPT) genes under the control of CaMV35 S promoter. Frequency of transient expression of the foreign gene was generally 30-50% varying according to the types of vectors and rice cultivars. Dot blot analysis and DNA sequence analysis of inverse polymerase chain reaction products showed that selected rice in hygromycin B (HmB) medium had HPT gene and CaMV35S promoter DNA sequence in genomic DNA of rice. To investigate what ratio of rice having two marker genes simultaneously as rice embryos imbibed the vector DNA having two HPT and GUS gene, transform ants selected in lImB medium were subjected to PCR for GUS gene. It was shown that about 90 percentage of surviving ones in HmB medium had GUS gene.S gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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