A bacterial strain producing intracellular phytase was isolated from cultivable soil near cowsheds and identified as a fluorescent Pseudomonas sp. BUN1. The BUN1 phytase, partially purified by cation and anion exchange chromatography, exhibited its optimal activity at $40^{\circ}C$ and pH 5.5. As for substrate specificity, it was very specific for phytate and showed little activity on other phosphorylated conjugates. Its activity was greatly inhibited by metal ions such as $Cu^{2+}$, $Cd^{2+}$, and $Zn^{2+}$. Addition of corn starch to PSM (phytasesynthetic medium) [0.5% sodium phytate, 0.5% $(NH_4)_2SO_4$, 0.5% KCl, 0.01% $MgSO_4\cdot7H_2O$, 0.01% $CaCl_2\cdot2H_2O$, 0.01% NaCl, 0.001% $FeSO_4\cdot7H_2O$, 0.001% $MnSO_4\cdot4H_2O$; pH 6.5] for the phytase production significantly induced its enzyme activity in comparison with other carbon sources tested.
Penicillium sp.-L4, a causative fungus of rot in citrus fruits, was isolated and its mode of hydrolytic enzyme production was investigated. Carboxymethylcellulase (CMCase), polygalacturonase(PGase), extra- & intra-cellular $\beta$-glucosidase and cellobiase were produced drastically by addition of substrates in minimal media. Production of the hydrolytic enzymes were induced efficiently by cellobiose and cellooligosaccharides which were the products of cellulose hydrolysis, but repressed by addition of mono-saccharide such as glucose, raffinose, galacturonic acid. The relative activity of p-nitrophenyl-$\beta$-D-glucopyranoside(PNPG) hydrolysis was higher than that of cellobiose hydrolysis in extracellular enzymes, and reverse is true in intracellular enzymes. Intact enzyme production of P. sp.-L4 on lemon peel lesion was sequential. $\beta$-Glucosidase and CMCase were produced first and followed by PGase. The enzyme productivities and pH in lesions were coincident with optimal pH of each enzyme activities.
Allan S. Hoffman;Patrick S. Stayton;Oliver-Press;Niren-Murthy;Chantal A. Lackey;Charles-Cheung;Fiona-Black;Jean Campbell;Nelson Fausto;Themis R. Kyriakides;Paul-Bornstein
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.6
no.4
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pp.205-212
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2001
One of the important characteristics of biological systems os their ability to change im-portant properties in response to small environmental signals. The molecular mechanisms that biological molecules utilize to sense and respond provide interesting models for the development of "smart" polymeric biomaterials with biomimetic properties. An important example of this is the protein coat of viruses, which contains peptide units that facilitate the trafficking of the virus into the cell via endocytosis, then out of the endosome into the cytoplasm, and from there into the nucleus, We have designed a family of synthetic polymers whose compositions have been de-signed to mimic specific peptides on viral coats that facilitate endosomal escape. Our biomimetic polymers are responsive to the lowered pH whinin endosomes, leading to distruption of the en-dosomal membrane and release of important biomolecular druges such as DNA, RNA, peptides and proteins to the cytoplasm before they are trafficked to lysosomes and degraded by lysosomal en-zymes. In this article, we review our work on the design, synthesis and action of such smart, pH-sensitive polymers.
Byeong Jun Chae;Kyung-Seo Lee;Inhwa Hwang;Je-Wook Yu
IMMUNE NETWORK
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v.23
no.3
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pp.23.1-23.17
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2023
Inflammation is a series of host defense processes in response to microbial infection and tissue injury. Inflammatory processes frequently cause extracellular acidification in the inflamed region through increased glycolysis and lactate secretion. Therefore, the immune cells infiltrating the inflamed region encounter an acidic microenvironment. Extracellular acidosis can modulate the innate immune response of macrophages; however, its role for inflammasome signaling still remains elusive. In the present study, we demonstrated that macrophages exposed to an acidic microenvironment exhibited enhanced caspase-1 processing and IL-1β secretion compared with those under physiological pH. Moreover, exposure to an acidic pH increased the ability of macrophages to assemble the NLR family pyrin domain containing 3 (NLRP3) inflammasome in response to an NLRP3 agonist. This acidosis-mediated augmentation of NLRP3 inflammasome activation occurred in bone marrow-derived macrophages but not in bone marrow-derived neutrophils. Notably, exposure to an acidic environment caused a reduction in the intracellular pH of macrophages but not neutrophils. Concordantly, macrophages, but not neutrophils, exhibited NLRP3 agonist-mediated translocation of chloride intracellular channel protein 1 (CLIC1) into their plasma membranes under an acidic microenvironment. Collectively, our results demonstrate that extracellular acidosis during inflammation can increase the sensitivity of NLRP3 inflammasome formation and activation in a CLIC1-dependent manner. Thus, CLIC1 may be a potential therapeutic target for NLRP3 inflammasome-mediated pathological conditions.
In vivo $^31p$ Nuclear Magnetic Resonance ($^31p$NMR) and metabolic studies were carried out on an acetic acid tolerant mutant, Zymomonas mobilis $ZM4/Ac^R$, and compared to those of the parent strain, Z. mobilis ZM4, to evaluate possible mechanisms of acetic acid resistance. This investigation was initiated to determine whether or not the mutant strain might be used as a suitable recombinant host far ethanol production from lignocellulose hydrolysates containing various inhibitory compounds. $ZM4/Ac^R$ showed multiple resistance to other lignocellulosic toxic compounds such as syringaldehyde, furfural, hydroxymethyl furfural, vanillin, and vanillic acid. The mutant strain was resistant to higher concentrations of ethanol or lower pH in the presence of sodium acetate, compared to ZM4 which showed more additive inhibition. in vivo $^31p$ NMR studies revealed that intracellular acidification and de-energization were two mechanisms by which acetic acid exerted its inhibitory effect. For $ZM4/Ac^R$, the internal pH and the energy status were less affected by sodium acetate compared to the parent strain. This resistance to pH change and de-energization caused by acetic acid is a possible explanation for the development of resistance by this strain.
Single smooth muscle cells of the rabbit pulmonary artery were isolated by treatment with collagenase and elastase. Using the patch clamp technique, potassium channel activity was recorded from the inside-out membrane patch. The channel had a sin히e channel conductance of about 360 pS in symmetrical concentration of K on both sides of the patch, 150 mM, and had a linear current-voltage relationship. During the application of 10 mM tetraethylammonium (TEA) to the intracellular membrane surface, the amplitude of single channel current was reduced and very rapid flickering appeared. The open probability $(P_0)$ of this channel was increased by increasing positivity of the potential across the patch membrane, with e-fold increase by 20 mV depolarization, and by increasing the internal $Ca^{2+}$ concentration. These findings are consistent with those of large conductance Ca-activated K channels reported in other tissues. But the shortening of the mean open time by increasing $[Ca^{2+}]_i$, was an unexpected result and one additional closed state which might be arisen from a block of the open channel by Ca binding was suggested. The $P_0-membrane$ potential relationship was modulated by internal pH. Decreasing pH reduced $P_0$. Increasing pH not only increased $P_0$ but also weakened the voltage dependency of the channel opening. The modulation of Ca-activated K channel by pH was thought to be related to the mechanism of regulation of vascular tone by the pH change.
This study was performed to investigate the effect of mixed rearing of male and female chickens on the stress response in Korean native chickens. To identify the degree of the stress response, heterophil-lymphocyte ratio (H/L ratio), heat shock protein genes (HSPs) expression, and intracellular nuclear DNA damage rate were analyzed before and after the mixed rearing of male and female chickens. The results showed that the H/L ratio of chickens after mixing males and females was more than thrice as higher than before mixing (P<0.001), but the differences between males and females were not significant. HSP-70, HSP90-α, and HSP90-β expression levels were 2.5 to 3.4 times higher after mixing male and female chickens, compared to before mixing (P<0.01). In the mixed rearing of male and female chickens, the increase in HSPs expression in females was higher than in males. Comet indicators in intracellular DNA damage rate analysis showed a significant increase after mixing male and female chickens compared to before mixing (P<0.001). However, there was no significant difference between males and females with respect to DNA damage rate. Taken together, these results suggest that male and female mixed rearing acts as a strong external stressor in both male and female chickens.
The aim of this investigation was to resolve the contradiction between the results of Sternberg and Mandels (1980, 1982)and those of Nisizawa et al., (1971) in cellulase induction by sophorose, and furthermore to study the conditional effects in sophorose-induced cellulase induction in Trichoderma reesei QM 9414. Sophorose could induce the synthesis of CMCase and ${\beta}-glucosidase$ simultaneously. Optimal induction medium by sophorose had the potassium citrate buffer solution of pH 3.0-4.0 for CMCase, but one of pH 5.0-6.0 for ${\beta}-glucosidase$. At this time, two different types of ${\beta}-glucosidase$ could be induced by sophorose: one was extracellular and had maximum at pH 5.0, the other was intracellular and had maximum activity at pH6.5. Induction study showed that $methyl-{\beta}-glucoside$ was not a true inducer of ${\beta}-glucosidase$ and that large ${\beta}-glucosidase$ induction could be obtained only by the addition of sophorose into the induction medium. Glucose repressed the induction of cellulase by sophorose. The repression of glucose could not be overcome by the addition of cyclic AMP into the induction medium.
The present experiment was performed to investigate the protective effects of paeonol isolated from Moutan Cortex Radicis on primary cultured rat hepatocytes exposed to Br-A23187 ($Ca^{2+}$ ionophore). Br-A23187 is frequently used as a model of cell killing as inducing both necrotic and apoptotic cell death. Hepatocytes were isolated by collagenase perfusion from livers of fasted male Sprague Dawley rats and cultured overnight. Cell viability was determined by propidium iodide using fluorocytometry in Krebs-Ringer-HEPES buffer at pH 7.4. In addition, intracellular calcium was measured by excitation at 340 and 380 nm and emission at 505 nm using a luminescence spectrophotometer. Paeonol (20-100 ${\mu}M$) inhibited cell killing induced by 10 ${\mu}M$ Br-A23187, in a dose-dependent manner. Paeonol also reduced increased intracellular calcium level when hepatocytes were exposed to Br-A23187. Therefore, the present results suggest that paeonol protects the hepatocytotoxicity induced by Br-A23187, via inhibiting the influx of calcium into into rat hepatocytes.
An optimal composition of medium for hyaluronic acid production and some characteristics of its from Streptococcus zooepidemicus were investigated. The hyaluronic acid from S. zooepidemicus was reached maximum level in the BY-medium containing 0.1% beef extract, 0.1% yeast extract, 3.0% glucose, 2.0% peptone, 0.1% NaCl and $0.5%CaCO_3$ (pH 7.5) at $37^{\circ}C$ for 36 hours with shaking. Addition of $CaCO_3$ to the medium was necessary to neulralize the lowered pH which was resulted from hyaluronic acid production. Molecular weights of extracelluar and cellular hyaluronic acid produced by the strain were $1-1.4{\times }10^6$ and $5{\times}10^6$, respectively. The amount of extracellular hyaluronic acid was 91.9% of total hyaluronic acid produced and the vest was all intracellular.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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